A. 实验小白鼠2怎么生产血清
同一只小鼠需要多次采血
由于小鼠体重限制，一次取血后需要一定的恢复期以保证下次血液样本的质量，严格遵守动物福利也是操作者的基本要求。小鼠的总血量一般是占体重的6-7%，一次性取血10%不会引起造血系统过度活化及血液成分的重建。（例：若20克小鼠，它的总血量约占1.2-1.4毫升，即每次取120ul-140ul血液不会对小鼠有太大的影响）。
小鼠只需采单次采血
但如果想取小鼠的全血，一般能取体重的4%已经很不错了。具体的参考计算：小鼠体重*6-7%（血液占体重百分比）*70%（循环血量占全部血盯链量百分比）*90%（可以取到的循环血量比例）
常用的采血的方法
眼眶后静脉丛采血
（大鼠 0. 4~0. 6 mL,小鼠 0. 2~0. 3 mL）取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，临用前折断成2～2.5cm长的毛细管段，浸入1％肝素溶液中，干燥后用。取血时左手抓住鼠两耳之间的颈背部皮肤以固定头部，轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难使眼眶静脉丛充血，右手持毛细管由内眦部插入结膜，再轻轻向眼底部方向推进，轻轻旋转毛细管以划破静脉丛，让血液顺毛细管流出，接收入事先准备的容器中。采血后纱布轻压眼部止血。
摘眼球采血
此法常用于鼠类大量采血。采血时,用左手固定动物,压迫眼球，尽量使眼球突出，右手用镊子或止血钳迅速摘除眼球，眼眶内很快流出血液。
尾尖采血
（小鼠可每次采血约0.1ml，大鼠约0.4ml）剪断尾巴进行取血。注意，剪下来一点就可以，小鼠1-2mm，大鼠3-5mm，流出血液基则轿收集即可。过程中可以捋尾巴。血液可以用于涂片，试纸检测血糖等。
心脏采血
（大鼠 1~1. 5 mL,小鼠 0. 5~0. 8 mL）心脏采血为无菌采血，采血量大，此方法需在麻醉状态下进行，操作时，选择胸部左侧心脏博动最强处进针，缓慢回抽针筒可见血液流入针管。
后肢隐静脉采血
隐静脉采血常用于大小鼠的少量血液采集,单次采血的搏肆安全采血量为动物体重的0. 5%,间隔一天多次采血采血量为动物体重的0. 05%,隐静脉采血无需麻醉,待动物固定后,后腿外侧区域剃毛后暴露采血点,采血针刺入采血点,即可获得血液样本。图片为隐静脉的位置。
断头采血
左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，右手用剪刀剪断鼠颈部约1/2-4/5，让血液流入试管。但有由于过于血腥加上动物福利的原因，此方法不建议使用。
血清及血浆的制备
血清分离
经上述的方法取得血液后，在EP管中室温静置一小时以上（或37°水浴1小时，4°冰箱静置2小时或者过夜）以3000rpm离心10分钟，上清即为血清。可在-80°保存
B. 小白鼠采血三种方法的优缺点，谢谢！
1.采血部位：眼眶采血
采血方法：将鼠固定在实验台边缘，左手抓紧鼠颈部皮肤固定头部，并轻轻向下压迫颈两侧，使眼球充血。用事先准备好的10号金属针头顶端(针尖斜面朝内)垂直插入内眦并向眼底方向转动以便切开静脉丛，血液便会连续不断地滴入采血管。用此法大约可取3~5mL血液。取血完毕，立刻用脱脂棉压迫止血。坦稿
优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。血流较快，采血量多，能在较短时间内采到3~5mL血。伤口较小，愈合较快。成功率高，死亡率低。
缺点：不能避免组织液的混入，对于血样要求较高的研究应谨慎使用。另外，多次使用易引起大鼠的感染。对后续试验结果存在一定影响。
2.摘眼采血：鼠可以眼球取血，需要多多练习。一般来说，可以三人配合取血。取血前不需麻醉，用眼科剪剪掉大鼠的胡须（胡须过长，血液滴下的时候容易沾在胡须上，既浪费，又造成溶血，故应剪掉）。
所需器械：眼科小剪、眼科弯镊、止血钳。
一人抓大鼠并用眼科弯镊摘眼球，一人用止血钳夹住大鼠的嘴部以固定大鼠头部，另一个人拿试管接血。
大鼠在挣扎过程中，很容易导致血液丢失，因此固定头部很重要，否则只有眼看着血液乱飞，却不入试管。摘眼球也需要技巧，否则眼球摘下来了，而血液却不流出来，应多多练习
优缺点不太清楚啊，只知道我一个学长摘眼球的时候被咬了一口，挺残忍的
3.采血部位：心脏取血（其实这个一般用在家兔）
采血方法：将实验动物做仰卧有助手固定，术者在其左前肢腋下处剪毛及消毒。在胸部心脏跳动最明显处，用一寸长的12好针头直刺心脏，感到以针头跳动或有血液内流动时。即可抽血。一次可采血15-20ml
优点：抽血快，血液不易凝集，心区面积大, 进针准确性较高, 易一针见血, 且采血量能满足大量试验需要
缺点：心脏损伤较大，难以迅速愈合，不利于短期连续采血。
3‘.采血部位：心脏采血（剪开皮肤）
采血方法：从胸部正中剪开皮肤2.0~2.5cm。暴露肋骨和肌肉。左手拇指和食指从胸廓两则挤压，以确定心脏的位置，此时可触摸到心尖的搏动。然后拇指松开，右手持注射器（7号针头），在胸骨左侧（对操作者来说是右侧），离胸骨0.5cm的第三肋和第四肋之间进针，并使针头与肋骨侧成90°左右的夹角。进针的深度为2cm左右（根据动物大小而定）。进针时用左手拇指和食指夹住心脏博动的位置，使之固定，进针要快。若针头清游进入心室，由于压力的原因血液会自动进入针管，抽起来很容易。若进针过深，就一边回退一边抽。若进针过浅，可感觉到针头随心脏的博动而摇动，这时可再进深一些。
优点：采血量大，样本质量可靠。
缺点 ：不能保证完全是动脉血，因进针的方向或操作问题亦可采出静脉血。另外，应用本采血方法后，有部分鼠可造成死亡，因此不适合对动静脉血有严格要求的实验研究，亦不适用于试验中间过让正孝程的采样。
C. 小鼠眼球采血和眼眶采血是一样的吗
一样的，
我根据自己的经验给你回答一点，可能不全，但常用的应该就是这几种。
对小白鼠来说最常用的方法是眼眶取血，即用毛细管刺入小鼠眼眶。由于眼球下有大量毛细血管首仿逗，而且眼附近毛较少，这样可以取得较多的比较干净的血液，而且一只眼睛没做好还可以用另一只，小白鼠不会很快死亡，有需要的话还可以做点别的实验，但这种方法的采血量有限，一般一次就几毫升而且如果做的不是很好的话，血液很容易凝固而且可能搞得小鼠“面目全非”。
第二种方法是尾部采血，即用剪刀剪断小鼠的尾巴采血，这种方法没我怎么用过，对其不好做评价。
第三种方法是断头采血，用这种方法最大者卖的优点是采血量大而快速，血液不易凝固，但这样的话，小鼠再就不能做别的了，当然有可能的话我们可以在做完别的操作后再来做这个。
不大穗同的动物有不同的采血方法，如对兔子来说我们可以用耳缘静脉采血、心脏采血的方法，但对小鼠来说主要的应该就是上面说的三种了。
D. 如何给鹦鹉抽血
脉和心脏采血法，前者所采血量一般能够满足检测所需要的量，后一种方法的技术要求比较高，因此禽类翼下静脉采血法是一种比较常用的采血方法。禽类翼下静脉采血：
1.由助手将禽固定好，并使禽翅膀展开，露出腋裤含窝部，拔去该部羽毛，即可见到由翼根进入腋窝的一条较粗的静脉，这就是翼根静脉。其远心端有一条较细的静脉，即翼下静脉。消毒后，术者用左手拇指压迫翼下静脉的近心端，使血管怒张，右手持带6号或7号针头的采血器，由翼根的肌肉处进针，向翅膀方向斜向刺入翼下静脉，即可抽取血液。
2.抽胡绝笑血时，一定要缓慢、轻柔，否则会使静脉瘪陷而采不出来。采血完毕，拔出采血针，采血部位以酒精棉按压片刻即可，由于肌肉自身的收缩压迫止血，一般不会出血或者是形成出血性水肿。
此种方法克服了传统由皮肤直接刺向血管，拔出针头后一般都会出血或形成宏孝皮下出
E. 动物抽血抽什么部位
大型动物，如牛马可以抽颈下静脉血，鸡鸭可以抽翅膀下血管
F. 怎么给牛采血方法及需要的东西~
牛的采血方法多种多样,根据不同的状况采取不同的方法。笔者现将多年来的采血经验总结如下,供大家在工作中参考。1采样的一般原则1.1凡是血液凝固不良、鼻孔流血的动物不应采血。1.2采血时做好个人防护,预防人畜共患病感染及牛的踢撞。1.3免疫效果监测时,应在牛免疫21d后随机采集同群牛血清。1.4疫情监测或流行病学调查时,根据区域内牛场户数量和分布,按一定比例随机抽取养殖场户名单,然后每个牛场户按预算的感染率计算采样的数量,随机采取。1.5用于病毒检验样品,在牛发病初体温升高期间采集;对于没有症状的带毒牛,一般在进入隔离场后7d内采样。1.6防止污染环境,防止疫病传播,做好环境消毒和废气物的处理。1.7用于寄生虫检验样品,因不同的血液寄生虫在血液中出现的时机及部位各不相同,因此,需要根据各种血液寄生虫的特点,在相应时机取相应部位的血,制成血涂片,送实验室。2采血的物品准备采样箱、9号针头、塑料试管、5ml注射器、离心管、酒精棉球、干棉球、牛鼻钳子或绳子、不干胶标签、签字笔、记号笔、采样单、乳胶手套、线手套、防护服、防护帽、一次性手套、一次性鞋帽、试管架、易封口样
G. 生物 实验动物非洲爪蟾如何取血要不杀死，可重复取血的方法
一般青蛙蟾拿薯蜍类少量采血都是腹壁静脉采血，当然本人认为心脏采血也可以。但是活体不损伤采血有点困难，腹壁静脉需要开腹腔。体外心脏采血的话对慎指试验手法要求比较高。
实消孝者验器材和药品
手术剪、镊子、蛙板、探针、蛙钉1 mL注射器
实验方法
1破坏蟾蜍脑和脊髓用探针从蛙枕骨大孔进
入,捣毁脑和脊髓,使骨骼肌松弛。
2固定蟾蜍将蟾蜍仰卧在蛙板上。用蛙钉固
定蛙体四肢,打开其胸腔和心包膜,暴露心脏。
3 采血 用注射器向心方向插入腹壁静脉进行采血
H. 对实验动物采血的要求
1.小鼠和大鼠采血
（1）眼眶取血：将小鼠抓牢固定，用拇指和食指将眼部皮肤扒开，使眼球充分突出，眼窝内眦处为眼静脉窦。将毛细管由此刺入，捻转，轻轻外提，使血液充满毛细管，采血后用一块干纱布将眼合上数分钟以止血。小鼠每次采血0.2～0.3mL，大鼠为0.5～1.0mL。
（2）剪尾采血：固定动物，将尾尖剪掉1～2mm（小鼠）或5～10mm（大鼠），然后自尾根部向尖部按摩，血即自尾尖流出。如需较多血也可先将尾浸于近50℃的热水中，再剪去尾尖。采血后用胶布包扎尾尖进行压迫止血。由于鼠血凝集快，需要全血应事先置抗凝剂于采血管中，如用血球悬液，应立即与生理盐水混合。小鼠可取血0.1mL，大鼠可取0.3～0.5mL。
（3）断头取血：断头时，左手抓鼠，右手持剪刀于颈部迅速剪掉鼠头，立即将鼠颈向下，血液即可流入已准备好的容器中
（4）腹主动脉采血：将动物麻醉，仰卧固定，从腹中线切开皮肤，暴露腹主动脉，用注射器抽取血液。
（5）股动（静）脉采血：将动物麻醉固定后，进行一侧腹股沟动、静脉分离手术，血管下方分别穿一根丝线，左手提起血管，右手持注射器将针平行刺入血管内取血。
（6）心脏采血：动物麻醉后，仰卧固定于鼠板上，在左胸侧第三、四肋间，用左手食指触摸到心搏动处，右手持注射器垂直刺入心脏，抽取所需血量。小鼠取0.5～0.6mL，大鼠取0.8～1.2mL。
2.家兔采血
（1）耳中央动脉采血：将兔固定后，在兔耳中央有一条粗而鲜艳的中央动脉。左手固定兔耳，右手持注射器，在中央动脉末端向心方向刺入动脉，慢慢回抽针芯，动脉血立即进入针筒，一次可取血15 mL。
（2）耳缘静脉采血：拔去耳缘部被毛，用灯泡照射加热耳朵或以75%酒精涂擦局部，使静脉扩张，再用石蜡油涂擦耳缘，防止血液凝固。耳受热后用小血管夹夹紧耳根部，用粗号针头逆静脉回流方向刺破静脉或用刀片切开静脉，血液可自动流出，一般可采血2～3mL。取血后棉球压迫止血。
（3）心脏采血：操作同鼠类。兔一次最多采血25mL。
（4）股静脉、颈静脉采血：做股静脉、颈静脉分离术，然后采血。