常用的血标本收集方法有

A. 血气分析标本采集方法及影响结果的一些因素

血气分析标本采集方法及影响结果的一些因素

血气测定采血套装(含橡皮塞和针头)、无菌棉签、安尔碘、无菌棉球、治疗盘。愿意自己配制抗凝采血针的用户，可以用0.9%NS50ml+肝素钠针剂2支(12500U)配制成肝素稀释液备用，并做好无菌储藏。下面是我为大家带来的血气分析标本采集方法及影响结果的一些因素，欢迎阅读。

一、动脉血气标本采集方法

1.穿刺方法

1.1 用物准备

血气测定采血套装(含橡皮塞和针头)、无菌棉签、安尔碘、无菌棉球、治疗盘。愿意自己配制抗凝采血针的用户，可以用0.9%NS50ml+肝素钠针剂2支(12500U)配制成肝素稀释液备用，并做好无菌储藏。每抽血气前，用2ml注射器抽取肝素稀释液2ml，完全湿润整个针管后弃去肝素液，残留在针头及针管头部死腔内的肝素液即可起到抗凝作用。抗凝剂少了会使血液凝集，堵塞血气分析仪的流路系统，抗凝剂多了会影响血气和离子的检测结果，大剂量的抗凝剂会严重使离子钙偏低，误导临床。

1.2患者准备

患者要处于自然状态，活动后应休息15min，抽血前30min应停止吸氧。由于患者对采集动脉血了解少，易产生恐惧心理，护士应有针对性的做好解释工作，消除患者的心理顾虑，稳定其情绪，避免各种因素致呼吸过度或屏气而引起的血气误差。

1.3 评估病人动脉并选择血管

多选用动脉搏动明显、弹性好，易于固定、穿刺部位无硬结的血管，常用的采血部位依次为：桡动脉、肱动脉、股动脉和足背动脉，桡动脉最适宜动脉穿刺采血。一般选择桡动脉，因为此处动脉固定，易暴露，不受体位和操作地点的限制;其次选择股动脉和肱动脉，患者容易接受，且成功率高，不易误入静脉或误刺深层神经。

1.3.1成人：用肝素化的玻璃注射器或一次性注射器穿刺，采血部位首选桡动脉，次选股动脉

1.3.2小儿:

1.3.2.1、首选用颞浅动脉或头皮小动脉，严格消毒后，用肝素化的5号头皮针连接2ml注射器，待动脉血流至注射器乳头时，立即用小止血钳分别夹住头皮针塑料软管首尾两端(约0.5ml血)，然后拔出针头立即混匀送检。

1.3.2.2、用肝素化的.注射器穿刺，采血部位首选小儿桡动脉，小婴儿可用颞浅动脉取血，取完血一定要密封。

1.3.2.3、因技术条件限制，不能反复动脉穿刺时，早产儿与小婴儿可在足后跟用肝素化毛细管采取动脉化毛细血管的血亦可。动脉化毛细血管采血，用不超过42～45℃的湿巾热敷采血部位皮肤5～15分钟，使血液增加，血流加速，达到动脉化，然后穿刺，穿刺要深，使血流快速自动流出，弃去第一滴血，不能挤压，用肝素化的毛细管吸取(建议采用厂家配套提供的专用毛细管)，吸满后一定要密封，混匀后立即送检。未充分动脉化的毛细管血的PO2偏低，对PH、PCO2和HCO3-的测定结果影响不明显。

1.4 定位

传统的取血部位以桡动脉搏动最强处作为定标点行穿刺术。取血进针点以操作者的感受来确定，由于桡动脉较细，搏动点为条索状，在较长一段均能触及搏动，取血位置误差较大。杨兰杰报道定位是以桡骨茎突为基点，向尺侧移动1cm，再向肘的方向上移0.5cm即为进针点，本科采用此种方法定位，穿刺成功率明显提高。

1.5 操作方法

协助患者取舒适体位，暴露并用软枕垫高穿刺部位。严格消毒穿刺部位，打开血气测定采血套装包装，拉动活栓至1cm处，消毒操作者的左手食指及中指，按上述定位方法找到动脉搏动最明显处并固定动脉，右手持注射器，针头与皮肤呈45°至90°刺入动脉，进针后有一种穿透血管壁的感觉，无需拉动活塞柄，动脉血自动回血，至装满预设血量后，用棉球按压穿刺处针眼拔针，嘱病人按压时间不少于5~10min，然后将针头迅速刺入橡皮塞内，立即将标本掌心搓动混匀至少5s，以防标本凝血，贴好标签立即送检。

2、采血后处理

采血后针尖或毛细吸血管两端立即用橡皮帽或橡皮泥封住，防止空气气泡进入，并立即充分混匀达到抗凝目的，并立即送检，从采血到送检不宜超过20分钟，以免血细胞代谢耗氧，使PO2和PH值下降PCO2升高。若不能立即测定，应将血气标本保存在2～8℃容器内，但即使这样待测时间也不宜超过2小时。

二、影响血气分析结果的因素

1、血气分析的样本类型有哪些?

血气分析的样本类型有动脉血样本、静脉血样本、毛细血样本。

动脉血样本，动脉血是血气分析中最常使用用的血液类型，因其可提供氧吸收和运输的最佳信息，所得信息稳定，不因采样点不同而不同。

静脉血样本，一般情况下不建议采用静脉血进行血气分析，因其受外周循环状态和细胞代谢的影响，不可用于评估氧状态，但可反应酸碱状态(pH，pCO2，cHCO3)ctHb，FCOHb，FmetHb，FHbF，ctBil。

毛细血样本，因情况不允许使用动脉血时可使用毛细血进行分析， sO2,pO2,FOHb,FHHb结果仅供参考，可以较好的反应以下参数：ctHb，FCOHb，FMetHb，FHbF，ctBil。

2、血气分析怎样选择采样点?

动脉血样本：挠动脉最为常用，由于它非常浅表易于触及，周围附近无大的静脉，又有非常良好的尺动脉侧支循环，易于采样，在穿刺过程中如不触及骨膜，一般痛觉不敏感。挠动脉采样前先进行改良的Allen’s测试以确定侧支循环是否充足。肱动脉可使用但不常用，由于其因为位置原因不宜于采样破坏周围环境的风险大。股动脉，虽然其面积大易于穿刺，但侧支循环不良，容易误伤股静脉，应避免在新生儿及老年患者身上采用。

静脉血样本：肱静脉便于采样。

毛细血样本：耳垂，指尖，拇指和脚后跟采血，采用脚后跟和拇指时，患者应大于六个月。

3、血气分析怎样选择抗凝剂?

建议最好使用含钠或锂的干性肝素作为抗凝剂，应避免使用液体肝素以免引起样本的稀释。基于样本类型建议使用以下浓度的肝素：试管：7-30IU/mL血液，注射器：50-500IU/mL血液，毛细管：50-100IU/mL血液。如果包括电解质测量，请使用电解质平衡肝素来减小电解质测量中肝素引起的偏差，以求最佳测量结果。

4、血气分析采集样本时患者如何准备?

患者的呼吸状态应保持稳定：采样前患者应处于稳定状态，保持患者平静呼吸状态，并且通风状态也应稳定。告知患者采样步骤以避免引起不必要的紧张，患者的紧张可引起过度呼吸，通气过度是血气误差的一个主要原因，可使肺泡通气量增加，造成pCO2降低、pH增加、pO2增加。

5、血气分析采集样本时动脉导管怎样准备?

动脉导管中的冲洗溶液必须从系统中完全清除以免稀释血样。

6、血气分析采集毛细血样本时该如何准备?

毛细采样部位应当完全动脉化，动脉化时将其敷热或轻轻按摩5-10分钟，使血管局部扩张，局部充血，使毛细血管充分动脉化，如果未能达到此项要求，血样将只代表局部组织并不反应患者的整体状态。否则可使pCO2测定值偏低。如遇收缩压小于95mmHg、心排出量减少及血管收缩的病人，或出生后数天内的新生儿，则不能用毛细血管血。

7、血气分析样本采集时应注意什么?

应注意血液样本检测只能有专门人员负责，谨记要谨慎操作处理血样及采集血样的仪器。使用符合规格的橡胶手套防止直接接触血样，随时采用消毒技术防止感染采样点。

8、血气分析怎样进行动脉采样?

动脉采样：动脉穿刺，注意不要混淆静脉血与动脉血样本，动脉血(由于高压作用)比静脉血流动快，并且颜色较浅;立即清除其中的气泡;采样后立即将样本同肝素混合。动脉导管，慢慢吸入样本以免引起溶血;立即清除其中的气泡;采样后立即将样本同肝素混合。

9、血气分析怎样进行静脉样本的采集?

静脉样本：须先将手及前臂浸入45OC水中20分钟，使该部位静脉血动脉化，然后从手臂(或手背)静脉抽血，但抽血时一般不得使用压脉带，只能缓缓吸取，以免产生气泡。如使用压脉带，则须在最初几秒钟抽血，并不时屈曲手指或握拳。否则可使静脉pO2降低，增加酸性产物的含量。

10、血气分析怎样进行毛细管采样?

毛细管采样，使用柳叶刀或其他类似的工具穿刺，血液未经挤压自动流出, 弃去第一滴血，因其可能含有组织液。有第二滴血的中间开始采集，防治气泡产生。禁止挤压采血点以免混合部分组织液，仪器测量偏差。还可能引起样本(或部分样本)的溶血，导致cK+值偏高。样本分析应在10分钟内完成。如果必须储存，请将样本保存在0-40C下最多30分钟。注意：有毛细血管所得的测量结果中特别是pO2要谨慎应用。

11、血气分析怎样进行混合样本采集?

混合样本：采集后立即将血液同肝素混合以免凝血发生，凝血可使分析仪阻塞并产生不必要的麻烦。混合样本时需倒转样本，并将其在手心中转动数次。混合毛细管时可使用混合线或磁铁。避免混合时过于用力，以免引起溶血。

12、血气分析怎样进行呼吸气样本采集?

呼吸气样本，将患者的呼吸气体装入道格拉斯袋中，连接注射器于道格拉斯袋(最小为20mL，含有橡胶头)。注满，排空注射器两次后注入样本，然后使用橡胶头密封注射器。

13、血气分析的样本怎样保存?

任何时候应立即使用样本，尽量避免样本的保存。如果无法立即进行样本的测量，在室温下保存不应多于10分钟。如果需要长时间保存，请在0-40C(32-390F)下，存放最多30分钟。以下为保存方法：冰水(附带碎冰或制冷物质)可用于储存样本。样本不可直接放入冰中，以避免样本中冰结晶导致血液细胞溶解。样本应水平放置避免样本混合。注意：估计氧分压值较高的样本因尽快测量;如果毛细血管中存在气泡，则PH及血液气体值不应继续测量。

14、血气分析样本怎样进行分析前的准备?

动脉穿刺和动脉导管样本：如果样本中存在气泡则不应测量PH及血气值，晃动并在手心中滚动样本数次，使样本彻底混匀。毛细管样本：分析前应再次混合样本，样本吸入测量前不要将混合线移开，吸入前将混合线滑动到毛细管吸入样本的另一端，移开毛细管两端的橡胶头。

15、血气分析样本中气泡对检测结果有什么影响?

混合搅动前应清除样本中的气泡，如果气泡同血液样本含量相比达到5%时便可导致潜在错误，气泡所产生的影响将随着保存时间及混合搅动而增强。空气中的氧分压高于动脉血，二氧化碳分压低于动脉血，根据气体规律，高分压流向低分压，从而使血液中的pO2及pCO2都发生改变而无测定价值。

16、血气分析在血液样本分析前阶段中产生错误的原因是什么?怎样预防?

样本中存在气泡，影响参数pO2，应立即清除气泡。样本沉淀，影响参数Hct，pO2，pCO2，在注入分析仪前混匀样本。溶血，影响参数cK+，cCa2+，应避免剧烈混合，避免储存温度在0℃以下。新陈代谢，影响参数pO2，pCO2，cGlu，cCa2+，应避免储存，如果必须储存请在0-4℃储存。样本设备结构，针直径太小容易引起溶血，影响参数cK+，cCa2+，应选用适当的采样设备。液体肝素引起的稀释，影响参数电解质和代谢物，Hct，pCO2，应使用干性肝素片。肝素介入影响，影响参数电解质，特别是cCa2+，应使用电解质平衡肝素。动脉血混入静脉血，影响参数pO2，sO2，应采用标准的采样技术。患者状态不稳定，影响参数pH和血气，应通风调整20分钟后采样，通知患者采样步骤。红细胞泄露，影响参数cK+，应在0-4℃温度下储存样本，最多30分钟。放置在阳光下或其他灯光下，影响参数ctBil，应使样本避光放置并尽快测量，对接受光疗的患者进行采血前应先关闭灯光。

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B. 常见的采血方法有什么

大牲畜（牛，马）的采血 1.1 部位:颈静脉 1.2 办法:站立保定植物,颈静脉沟剪毛,消毒,术 者站立用一手压榨颈静脉下端,使颈静脉充沛怒张, 另一手持好16号针头,垂直刺入颈静脉l~2 cm,血 液即可流出,中止采血后,先松手,后拔出针头,并用 消毒棉球压榨采血部位1 min。 2 羊的采血 2.1 部位:颈静脉 2.2 办法:骑式保定,颈静脉剪毛、消毒,术者一手 压榨颈静脉下端,使颈静充沛怒张,另一手以12号 针头,平行于颈静脉向上刺入0. 5~1 cm,血液即可 流出,采血完毕后,先松手,后拔针头,并用消毒棉球 压榨采血部位1 min。 3 猪的采血 3.1 部位:前腔静脉(小猪),耳静脉(成年猪)。 3.2 办法:A、仰卧成站立保定猪,头、颈蜷缩,前腔 静脉窝(位于肩胛内侧,手压有窝状感)消毒,术者 手持采血器, 45~60°向心端刺人2~3 cm,即可血 充沛怒张,术者一手拉直猪耳,另一手握采血器平行 耳静脉刺入,采血完毕时先放开握耳根手,然后拔出 采血器,干棉球压榨采血处1 min左右,使伤口不出 血为止,采血部位消毒。 4 鸡的采血 4.1 部位:翅静脉 4.2 办法:卧式保定,将鸡翅拉直成30°,翅静脉消 毒,术者站立或蹲式,采血器平行翅静脉刺入,血液 流出后,固定采血器,回抽活塞,采血完毕后,用干棉 球压紧采血部位拔出采血器,持续压榨采血部位1 ~2 min,至不出血为止,采血部位消毒。 5犬、猫的采血 5.1 部位:前肢正中静脉 5.2 办法:平卧保定植物,前肢内侧正中静脉处、剪 毛、消毒,助手握紧肘部,使静脉充沛怒张,术者手持 采血器,平行正中静脉刺入,回抽采血器活塞,采血 完毕后,消毒棉球压紧采血部位1 min。

C. 临床常用的采血方法有哪些

您好，目前常用的采血方法有静脉采血法、皮肤采血法和真空采血法。

D. 血液检验标本采集方法有哪些

血液检验标本采集方法有哪些

血液检验标本分为全血、血浆、血清等。全血标本主要用于临床血液学检查,例如血细胞计数和分类、形态学检查等;血浆标本适合内分泌激素、血栓和止血检测血清标本多适合于临床化学和免疫学的检测。按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。绝大多数检查采用静脉血,少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，毛细血管血主要用于各种微量法检查或大规模普查。下面是我为大家带来的血液检验标本采集方法有哪些的知识，欢迎阅读。

一、静脉血采集方法、注意事项和采集样品所用材料的安全处置

1、止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过 40 秒为宜，

否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH 值降低、K + 、Ca 2+ 、肌酸激酶升高等。

2、采血时间与部位：大多数化验检查要求清晨、空腹、采集静脉血应尽可能避免在输液同时取血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。

3、避免溶血、杂质污染：采血器具必须无菌、干燥、洁净.避免特别用力抽吸和推注、避

免化学污染和细菌污染引起的溶血。因为红细胞的某些成分与血清(浆)不同，样本溶血可使

红细胞某些成分释放,影响实验室检查结果。

4、血样的采集：血样要求在每一天的同一时间采集，理想的时间是早晨 7：00 到 8：00，尤其是监测为目的时，更要保证标本采集时间的统一。最后一次食物和液体摄入应在前

一天下午 6：00 到 7：00 (急诊检验例外)。血样采集应在不服药期间，如在早晨服前。血样采集时，患者应仰卧位，采血点应在同一静脉区，通常为手臂静脉。

5、标本采集后须立即送检，放置过久影响检验结果。当取血不顺利时,切忌在同一处反复

穿刺，易导致标本溶血或有小凝块，影响检测结果。

6、采集血培养标本时应先注射厌氧瓶，尽量减少接触空气时间。

7、微量元素测定采集标本的'注射器和容器不能含游离金属。

8、采集样品所用材料的安全处置：使用后的采血针、注射器针头等锐器物应当直接放入不能刺穿的利器盒内或毁型器内进行安全处置，禁止对使用后的一次性针头复帽，禁止用手直接接触使用过的针头、刀片等锐器物;注射器针筒、棉签等其他医疗废物放入黄色医疗废物袋中，医疗废物和生活垃圾分类收集存放。消毒毁形后的医疗废物必须交给指定的医疗废物处理厂，不得擅自废弃。

二、临床化学/ 免疫检验标本

临床化学/免疫检验多用非抗凝血标本,最好使用真空负压采血管。

标本采集主要注意事项有：

1、化学项目大多数需要空腹采静脉血，多个单项化学检测项目组合检验时一般可采管血;

2、采血量视检查项目多少不同而异，通常为 4.0～5 .0ml;

3、多个组合检测项目同时采血时应按下列顺序采血：

血培养 ——无添加剂管凝血管 ——有添加剂管

有添加剂管的顺序为：橼酸盐管 ——肝素管 ——EDTA 管——草酸盐/氟化钠管

4、不论是抗凝血还是非抗凝血，为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间，血液标本收集后，须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来，避免由此而影响检验结果的准确性。从血液标本采集开始，必须在2h 内将全血处理为血清或血浆。

1)血清(非抗凝血)：采血后标本于 22～25℃(室温)15～30min 后可自行(自发)完全凝固，禁用木棍和玻棒等剥离凝块;冷藏标本凝集较慢，加促凝剂者凝集加快。

2)血浆(抗凝血)：应采用抗凝管采血,采血后立即颠倒混合 5～10 次，采血后数分钟内可

离心分离血浆。

3)冷藏标本：用于稳定血液中温度依赖性成分(抑制细胞代谢)的检测项目，标本于 2～8℃冷藏(标本采集后立即置于冰箱中，冷藏必须充分);标本需冷藏的测定项目有：儿茶酚胺、胃泌素、甲旁素、PH/血气、NH3、乳酸、丙酮酸等。全血标本一般不冷藏，血钾测定标本冷藏不得>2h。全血标本切忌冷冻。

4)代谢抑制剂和防腐剂的应用：用于抑制细胞代谢。血标本中加入氟化钠后，血细胞未

分离情况下血标本中 Glu，22～25℃稳定 24h.2～8℃稳定 48h;氟化钠不适用于新生儿及儿童的 Glu 测定(因儿童 PCV 高，细胞糖酵解难以控制);氟化钠一麝香草酚混合剂不适合酶学检测(因氟化钠一麝香草酚混合剂抑制酶活性));甲醛草酸钾抗凝保存剂不适用于血糖测定。

三、红细胞沉降率(血沉，ESR )检测标本

静脉采集枸橼酸钠(109mmol/L，即 32.06g/L)抗凝血(枸橼酸钠抗凝管采血)，黑帽管。

采血注意事项：

1、单独采 1 管血，准备采血至 2 ml 刻度线(抗凝剂：全血=1：4);

2、采血后立即上下颠倒混合 5~10 次;

3、采血后应尽快送检(必须 2h 内检测)。

四、血常规(全血细胞分析)检验标本

一般用 EDTA 1.5～2.2mg/ml 抗凝(EDTA 抗凝采血管-紫帽管)。

采血注意事项：

1、采血后立即上下颠倒混匀，5～10 次.不可用力震荡;

2、应按抗凝管刻度采血至 2ml，可不用空腹;

3、采血后应尽快送检(需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过 2

小时 WBC 形态会发生改变);

4、血型与血常规可采 1 管血。

五、75 克葡萄糖耐量试验(OGTT )/ 胰岛素释放试验/C-肽释放试验

1、病人准备：试验前 3 日，每日进食碳水化合物量不低于 250-300 克，且维持正

常活动，影响试验的药物(如：咖啡因、口服避孕药、水杨酸盐等)应在 3 日前停用，

试验前病人应 10～16 小时不进食。

2、标本采集：临床上常用方法是清晨抽空腹血后，口服 75 克葡萄糖，再于给糖后

0.5、1、2、3 小时各采血 2ml /1 次(共 5 次)。

3、标本保存：采血后 1 小时内分离血清并及时冷藏送检或采用血糖专用抗凝管采

血，于 2～8℃保存。

4、注意事项：胰岛素测定受溶血影响较大，采血时应避免溶血。

六、高血压系列检验标本

1、高血压三项(肾素、血管紧张素 I、II)

1)病人准备：β-阻断剂、血管扩张剂、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平，一般要在停药后 2 周测定肾素活性(PRA)，利血平等代谢慢的药物应在停药 3 周测定。不宜停药的病人改服胍乙啶等影响 PRA 较小的降压药。钠摄入量影响机体 PRA 水平，故病人测定 PRA 前 3 天应适当减少食盐摄入量，最好同时测定取血前 24 小时尿钠含量，以供分析PRA 结果时参考;

2)标本采集：静脉取血 4～5ml，拔除针头后缓慢注入到专用抗凝管中,盖好管塞后上

下颠倒5次,混匀后2500转/分,离心5～10分钟,分离血浆,将血浆装入专用血浆管后低温送检。如不能立即送检,需尽快冰冻保存(-15℃)。溶血标本不能检测;

3)标本类型、标本量：专用抗凝管采血，分离血浆，取 2ml 送检;

4)标本保存：低温冰箱保存(-15℃以下)，可保存 2 个月;

5)注意事项：申请单上应注明抽血时的体位(卧位：病人在早上 6-8 时起床前，取静脉血;立位：病人起床后活动3 小时，取静脉血。)和饮食情况(普食饮食、低钠饮食);标本未及时分离血浆、反复冻融、溶血、保存不当、使用过期抗凝管等均可使结果受到影响。

2、醛固酮

1)病人准备：留样前应停服利尿剂至少 3 周，停服抗高血压药物 1 周;

2)标本采集：血浆醛固酮测定应采用肝素抗凝，采集后立即分离血浆，置-20℃保存

待测;尿液标本则留取 24 小时尿量，用 10～15mL 浓盐酸防腐;

3)申请单上注明：抽血时的体位(卧位、立位)和饮食情况(普食饮食、低钠饮食);

尿液标本要准确记录 24 小时尿量。

七、皮质醇标本采集及注意事项

正常人皮质醇的分泌存在昼夜节律，一般为早上 8 点或下午 4 点采血，送检时请务必在申请单上注明采血时间。

八、流式细胞术检测项目的标本采集及注意事项

1 、淋巴细胞亚群系列

标本要求：EDTA 或肝素抗凝全血 2ml(推荐 EDTA 抗凝)

注意事项：该系列项目在不同年龄段的细胞数参考值不尽相同，所以送检时请务必在

申请单上注明病人年龄。

2 、白血病免疫分型

标本要求：肝素抗凝骨髓或全血2ml

注意事项：请使用白血病免疫分型专用申请单

3、人类白细胞抗原 B27 检测(HLA-B27)/ 阵发性睡眠性血红蛋白尿症(PNH)检

测标本要求：EDTA 或肝素抗凝全血 2ml备注：保证新鲜标本，流式细胞术检测项目需要 24 小时内送检;

九、微量元素检测标本采集要求

1、所有采血人员要经过严格培训并熟悉采血过程，知晓操作技术对微量元素(尤其

是铅和锌)检测质量的影响。

2、采血人员应戴乳胶或聚乙烯手套，若手套涂粉，需用静脉采血皮肤清洁法处理手套

后进行操作。

3、血铅检测采血时按顺序用 0.2%硝酸、纯水、碘酒、酒精清洁采血区皮肤，防止环境

对血铅检测的污染。

4、橡皮塞对锌有污染，故普通采血管不可使用，请使用本中心提供的专用管。

5、采集方法：采集静脉血 0.5-1.0mL，采集后马上轻轻颠倒混匀，粘上条形码，装入

自封袋送检。

6、如不能及时送检，应放置 2-8℃冰箱保存。

7、标本凝固或含凝块，不能检测。

十、遗传学检测标本采集要求

1、标本采集：外周血标本可使用中心配送的肝素抗凝管(遗传专用)和采血针进行采集，采集后立即将试管轻轻颠倒混匀，以免凝血;脐带血标本、骨髓标本可以在穿刺成功后，打开中心配送的肝素抗凝管盖，将脐带血或骨髓注入采集管中，立即将试管轻轻颠倒混匀，以免凝血，请注意无菌操作，不要污染管盖。请避免使用注射器采集标本后直接注入采集管的方式进行标本采集，以免引起溶血;请勿使用 EDTA 等抗凝管采集标本。

2、标本量：外周血、脐带血、骨髓各 4ml;

3、标本送检：合格标本须于采血后当天送至遗传实验室，故请于标本采集后及时通知艾

迪康工作人员接收标本;标本有溶血、凝血现象，也视为不合格标本。骨髓标本应尽快送

至实验室。

4、标本保存：标本采集后置于 18～25℃保存，不可冷冻，不可放置于高温环境中。

5、申请单填写：请完整填写申请单，尤其是标本采集时间、性别、病史、临床诊断等。

十一、基因检测标本采集要求

1、所有用于基因诊断的标本必须用无菌试管或容器留取，严禁使用肝素抗凝管，采集标

本时注意无菌操作。

2、为避免污染，送检基因诊断标本项目需单人单项目单管。

3、采集方法：

1)血液标本

抽取病人静脉血，置无菌试管中室温自然凝固或 2000 转/分离心，取分离出的 EDTA 抗凝血浆/血清送检;

2)女性分泌物标本

(1) 分泌物标本采样应在非月经期进行;采样前 3 天内不使用阴道内药物，不冲洗阴道;24 小时内不应有性行为;

(2)采集时先用棉签将宫颈口或尿道口过多的分泌物轻轻擦去，更换棉拭子，将棉拭子伸入宫颈，通过上皮交界处，旋转 3～5 周，以保证取得较多的柱状上皮标本，对于怀疑HPV 感染的患者，尽量采集病变部位标本，可提高 HPV 的检出率。将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖;

(3)男性分泌物标本先清洁尿道口，将棉拭子伸入男性尿道 1cm，旋转 3～5 次获得标本，将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖;

(4)疱疹液或疣体标本：对于生殖器或肛周有疣状体增生，怀疑为尖锐湿疣者，宜直接采集疣体组织置于标本管中送检。备注：疣体标本时，需要在申请单上的标本类型栏处写上“疣体”。

4 、标本保存：检测靶核酸为 DNA 的标本，可在 2～8℃下保存 3 天;检测靶核酸为 RNA

的标本，应保存在-20℃下。

十二、骨髓检查的要求和注意事项

1、涂片要求：二张血片，六张骨髓片，怀疑白血病则需八张骨髓片。骨髓血片注明“B”，骨髓片注明“M”，以示区别。

2、申请单注意事项：

1)病例摘要:应填写全面，尤其是肝、脾、淋巴结、出血状况等与血液病相关的症状以及药物的应用等均应填写清楚;

2)化验结果：血常规结果一定不能缺，如果可能，MCV、MCH、MCHC及分类也一并填上;

3)采取骨髓部位也应填上，如果采取骨髓时不顺，应重抽，以免耽误病人;

4)写上主治医生联系方式，如科室电话、手机号码等(以便与临床密切联系)。

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E. 医学检验常用标本采集有哪些

医学检验常用标本采集有哪些

正确的检验结果对疾病的诊断、治疗和预后判断具有非常重要的意义,而正确的检验结果与正确采集标本关系密切。作为标本采集者，护士应了解各种检验的目的，掌握正确采集标本的方法，采集过程中严格执行查对制度、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施，以保证检验结果的准确性。下面是我为大家带来的关于常用标本采集的知识，欢迎阅读。

一、血标本采集

(一)评估和观察要点。

1.评估患者病情、意识及配合程度，需空腹取血者了解是否空腹。

2.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。

(二)操作要点。

1.真空采血法：根据标本类型选择合适的真空采血管，将采血针与持针套连接，按无菌技术操作规程进行穿刺，见回血后，按顺序依次插入真空采血管。

2.注射器直接穿刺采血法：根据采集血标本的种类准确计算采血量，选择合适的注射器，按无菌技术操作规程进行穿刺。采集完成后，取下注射器针头，根据不同标本所需血量，分别将血标本沿管壁缓慢注入相应的容器内，轻轻混匀，勿用力震荡。

3.经血管通路采血法：外周血管通路仅在置入时可用于采血，短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管可专门用于采血，但不能给药。采血后，血管通路要用足够量的生理盐水冲净导管中的残余血液。

(三)指导要点。

1.告知患者血标本采集的目的及配合方法，如需空腹采血应提前告知。

2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

(四)注意事项。

1.在安静状态下采集血标本。

2.若患者正在进行输液治疗，应从非输液侧肢体采集。

3.同时采集多种血标本时，根据采血管说明书要求依次采集血标本。

4.采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。

5.标本采集后尽快送检，送检过程中避免过度震荡。

二、血培养标本采集

(一)评估和观察要点。

1.评估病情、治疗、心理状态及配合程度。

2.了解寒颤或发热的高峰时间。

3.了解抗生素使用情况。

4.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。

(二)操作要点。

1.注射器直接穿刺采血法(同血标本采集)。

2.经血管通路采血法(同血标本采集)。

3.经外周穿刺的中心静脉导管取血法：取1支注射器抽生理盐水20ml备用，另备2支注射器。取下肝素帽，连接1支空注射器，抽出5ml血液弃去;如正在静脉输液中，先停止输液20s，再抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足量血标本。然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。消毒导管接口，清除残留血迹。连接肝素帽或三通管(或正压接头)，如有静脉输液可打开输液通道。

4.成人每次采集10～20ml，婴儿和儿童1～5ml。

5.用75%乙醇消毒培养瓶瓶塞，待干，将血标本分别注入需氧瓶和厌氧瓶内，迅速轻摇，混合均匀。

(三)指导要点。

告知患者检查目的、方法、注意事项和配合方法。

(四)注意事项。

1.血培养瓶应在室温下避光保存。

2.根据是否使用过抗生素，准备合适的'需氧瓶和厌氧瓶。

3.间歇性寒战患者应在寒战或体温高峰前取血;当预测寒战或高热时间有困难时，应在寒战或发热时尽快采集血培养标本。

4.已使用过抗生素治疗的患者，应在下次使用抗生素前采集血培养标本。

5.血标本注入厌氧菌培养瓶时，注意勿将注射器中空气注入瓶内。

6.2次血培养标本采集时间至少间隔1h。

7.经外周穿刺的中心静脉导管采取血培养标本时，每次至少采集2套血培养，其中一套从独立外周静脉采集，另外一套则从导管采集。两套血培养的采血时间必须接近(≤5min)，并做标记。

三、血气分析标本采集

(一)评估和观察要点。

1.评估患者的体温、吸氧状况或者呼吸机参数的设置。

2.评估穿刺部位皮肤及动脉搏动情况。

(二)操作要点。

1.患者取卧位或坐位，暴露穿刺部位(成人常选择桡动脉或股动脉，新生儿宜选择桡动脉)。

2.宜选用血气专用注射器采集血标本。若使用常规注射器，应在穿刺前先抽取肝素钠0.2ml，转动注射器针栓使整个注射器内均匀附着肝素钠，针尖向上推出多余液体和注射器内残留的气泡。

3.选择并消毒患者穿刺部位和操作者的食、中指，以两指固定动脉搏动最明显处，持注射器在两指间垂直或与动脉走向呈40°角刺入动脉。若穿刺成功，可见血液自动流入注射器内，采血1ml。

4.拔针后立即将针尖斜面刺入无菌橡皮塞或专用凝胶针帽，压迫穿刺点5～10min。

5.轻轻转动血气针，使血液与抗凝剂充分混匀，以防止凝血。

6.经动脉测压管取血法：先用注射器抽出冲洗用肝素盐水并丢弃，缓缓抽出约5ml血液，换2ml肝素化的注射器抽取标本1ml。

(三)指导要点。

1.告知患者检查的目的及配合方法。

2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

(四)注意事项。

1.洗澡、运动后，应休息30min再采血。

2.标本应隔绝空气，避免混入气泡或静脉血。

3.凝血功能障碍者穿刺后应延长按压时间至少10min。

4.采集标本后30min内送检。

四、尿标本采集

(一)评估和观察要点。

1.排尿情况及配合程度。

2.女性患者是否在月经期，若在月经期，则不宜留取尿标本。

(二)操作要点。

1.晨尿：留取晨起后第一次尿液的中段尿放入清洁容器送检。

2.餐后尿：留取进餐后2h的尿液。

3.尿定量检查：将规定时间内的尿液装入含有防腐剂的洁净容器内，混匀后记录总量，取100～200ml送检。

4.尿胆原检测：以留取14：00～16：00时间段的尿液为宜。

5.尿培养标本检测

(1)中段尿采集法：一般要求在膀胱内存留4～6h或以上的尿液为佳;用清水充分清洗会阴部，再用灭菌水冲洗尿道口。若男性患者包皮过长，应将包皮翻开冲洗。排尿，将前段尿弃去，留取中段尿10ml，置于灭菌容器内。

(2)尿管尿液采集法：尿潴留者用导尿管弃去前段后，留取10～15ml尿液置于灭菌容器内送检;留置导尿患者应先夹闭尿管30s,消毒导尿管外部及尿管口，用注射器通过导尿管抽取尿液，防止带入消毒剂;长期留置尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本。

(三)指导要点。

1.告知患者正确留取尿标本对检验结果的重要性。

2.告知患者留取尿标本的目的、方法、注意事项及配合要点。

(四)注意事项。

1.会阴部分泌物过多时，应先清洁或冲洗会阴后再留取。

2.避免经血、白带、精液、粪便或其他异物混入标本。

3.选择在抗生素应用前留取尿培养标本。

4.不能留取尿袋中的尿液标本送检。

5.留取尿标本前不宜过多饮水。

6.尿标本留取后要及时送检。

五、便标本采集

(一)评估和观察要点。

1.评估患者的病情、治疗、排便情况及配合程度。

2.了解女性患者是否在月经期。

(二)操作要点。

1.自然排便采集法：自然排便后，留取便标本。

2.无法排便者：将肛拭子前端用甘油或生理盐水湿润，插入肛门4～125px(幼儿2～75px)处，轻轻在直肠内旋转，沾取直肠内粘液后取出，置于容器内。

3.采集标本时，应选取中央部分或含有黏液、脓血等部分。

4.检查蛲虫卵：取透明薄膜纸于夜晚12点左右或清晨排便前由肛门口周围拭取，立即镜检。

5.找寄生虫体或虫卵计数：采集24h便。

6.便隐血试验：检查前3天内禁食肉类、肝类、血类食物，并禁服铁剂，按要求采集标本。

7.检查阿米巴原虫，应在采集前将容器用热水加温，便后连同容器立即送检。

8.服驱虫剂或做血吸虫孵化检查时，应留取全部粪便及时送检。

(三)指导要点。

1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

2.告知患者粪便标本留取的方法及注意事项。

(四)注意事项。

1.灌肠后的粪便、粪便过稀及混有油滴等不宜作为检查标本。

2.便标本应新鲜，不可混入尿液及其他杂物。

六、呼吸道标本采集

(一)评估和观察要点。

1.评估患者的年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。

2.评估患者口腔黏膜有无异常。

3.观察痰液的颜色、性质、量、分层、气味、粘稠度和有无肉眼可见的异常物质等。

(二)操作要点。

1.自行咳痰采集法：晨痰为佳，用冷开水漱口，深吸气后用力咳出呼吸道深部痰液，标本量不少于1ml，痰量少或无痰患者可采用10%盐水加温至45℃左右雾化吸入后，将痰液咳出。

2.难于自然咳嗽、不合作或人工辅助呼吸患者的痰液采集法：患者取适当卧位，先叩击患者背部，然后将集痰器与吸引器连接，抽吸痰液2～5ml于集痰器内。

3.气管镜采集法：协助医生在气管镜引导下，直接采集标本。

4.咽拭子采集法：患者用清水漱口，取出无菌拭子蘸取少量无菌生理盐水;用压舌板轻压舌部，迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体的分泌物，避免咽拭子触及其他部位;迅速把咽拭子插入无菌试管内塞紧。

5.24h痰标本采集法：在广口集痰瓶内加少量清水。患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨进食前漱口后最后一口痰结束，全部痰液留入集痰瓶内，记录痰标本总量、外观和性状。

(三)指导要点。

1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

2.告知患者痰标本留取的方法及注意事项。

3.告知患者避免将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。

(四)注意事项。

1.除24h痰标本外，痰液收集时间宜选择在清晨。

2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检。

3.避免在进食后2h内留取咽拭子标本，以防呕吐，棉签不要触及其他部位以免影响检验结果。

七、导管培养标本采集

(一)评估和观察要点。

1.评估患者病情和导管局部皮肤情况。

2.了解导管留置时间。

3.评估穿刺部位皮肤状况和肢体活动度。

(二)操作要点。

1.采集血培养标本两套，一套从可疑感染的导管采集，另一套从独立外周静脉采集(方法同血标本采集)。

2.协助患者摆放体位，使导管穿刺点位置低于心脏水平。

3.缓慢移出导管，迅速按压穿刺点，检查导管尖端是否完整。

4.用灭菌剪刀剪取导管尖端和皮下部分，分别置于无菌试管内塞紧，注明留取时间。

(三)指导要点。

1.告知患者留取标本的重要性。

2.告知患者标本留取的方法及配合方法。

3.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

(四)注意事项。

1.采集标本的时机尽可能选在使用抗生素之前。

2.留取导管标本应与采集血培养标本同时进行，采集时间宜在5min内完成。

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F. 临床化学检验血液标本的采集和处理

一、临床化学检验血液标本的定义

临床化学检验血液标本是指为完成某项或多项临床化学检验项目而采集的一定量的血液，包括抗凝及非抗凝血。

二、血液标本的采取

(一)采取部位

1.静脉采血：应用最多的采血方式。常用的静脉为肘前静脉、腕背静脉，小儿和新生儿有时用颈静脉和前囟静脉。

2.动脉采血：主要用于血气分析时。常用的动脉为股动脉、肱动脉、桡动脉和脐动脉。

3.毛细血管采血：适用于仅需微量血液的试验或婴幼儿。常用部位为耳垂、指端，小儿有时为大趾和足跟。采血针刺入皮肤深度应为2mm(<2.5mm),采血局部应无炎症、水肿等。

(二)标本类型

临床化学检验血液标本分为血清、血浆和全血3种。血清和血浆为临床常用，除前者不含纤维蛋白原外，其余多数化学成分无差异;全血只有在红细胞内成分与血浆成分相似时才用;血气分析、血红蛋白电泳等时用全血，一般临床化学分析多不用全血。

三、全血处理为血清或血浆

血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清(浆)从与血细胞接触的全血中分离出来。一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。全血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要求。

(一)离心前阶段

即指标本采集到离心处理前的一段时间。

1.血清：标本离心前一般应令其自行凝集，不可用木棍等剥离凝血块。通常于室温(22~25oC)放置30~60min血标本可自发完全凝集;冷藏标本凝集缓慢;加促凝剂时凝集加快(标本采集后应轻轻颠倒混合5~10次，以确保促凝剂作用)。

2.血浆：需用血浆标本时，必须使用含抗凝剂的血液标本收集管，而且采血后必须立即轻轻颠倒采血管混合5~10次(以确保抗凝剂发挥作用)，5~10min后即可分离出血浆。

3.冷藏标本：标本冷藏可抑制细胞代谢，稳定某些温度依赖性成分?但全血标本一般不能冷藏;血钾测定标本冷藏不得超过2h。血液中儿茶酚胺、pH/血气、氨、乳酸、丙酮酸、胃泌素、甲状腺激素等检测时需用制冷的标本。

标本需要冷藏(2~8oC)时，标本采取后应立即将标本置于冰屑或冰水混合物(不可用大冰块)，并且必须保证标本与制冷物充分接触，保证制冷物达到标本的高度。

4.代谢抑制剂和防腐剂：某些添加剂加入血液标本中能抑制细胞代谢，可以防止血液标本贮存时分析物浓度的变化。血液葡萄糖测定时，如在血液中加入氟化钠，在血细胞未分离的情况下，葡萄糖在22~25oC时可稳定24h，2~8oC时可以稳定48h;但在新生儿和儿童标本，由于红细胞压积高，用氟化钠难以控制细胞的糖酵解作用;甲醛-草酸钾抗凝保存剂不适合血糖测定;氟化钠-麝香草酚混合剂因能抑制酶活性，不适用于酶学测定。

5.标本采集现场：(1)标本采集后应尽快送往实验室，尤其当收集区温度超过22oC时此点更为重要;(2)血液标本采集后血管必须加塞、管口向上、垂直放置，以减少管中内容物振动，促进凝血完全，防止标本蒸发、污染和外溅等;(3)已收集的血液标本应温和地处理，要防止标本管振荡所造成的溶血;溶血可影响测定结果。有严重影响(使结果升高)的项目有：乳酸脱氢酶、血清门冬氨酸氨基转移酶、血清钾和血红蛋白;引起值得注意的影响的项目有：血清铁(↑)、血清丙氨酸氨基转移酶(↑)和血清甲状腺素(↓);轻度受影响(增加)的有：总蛋白、白蛋白、血清磷、血清镁、血清钙和酸性磷酸酶;(4)应避免对光线敏感的分析物暴露在人造光或太阳光(紫外线)照射下。如VA、VB6、β-胡萝卜素、卟啉、胆红素等测定时，标本管应该用铝箔或类似物质包裹保护起来。

6.标本运送：全血标本应尽快从采血现场运送至实验室，如果运送距离较远，特别是因分析物稳定性有影响，必要时可于采血现场分离出血清或血浆后，再送往实验室;标本运送过程中要注意标本的包装、温度要求、处理方法等，要确保分析成分的稳定性;标本管在运送过程中要保持管口封闭、向上垂直放置。

7.实验室接受标本及离心标本准备：(1)要有标本收取记录(应认真核对检验中清单，对有关情况要认真记录，标本接收及处理应签字登记);(2)对接受的标本要予以分类准备离心;(3)实验室接受标本后应仍保持标本管于密闭封口、管口向上，垂直位放置。管塞移去后血中CO2丢失，会造成pH增加，离子钙和酸性磷酸酶减少，尤其pH变化会影响某些检测结果的准确性;(4)标本凝集时间要充分;加抗凝剂的血液标本可以立即离心;加促凝剂的标本可于采血后5~15min尽早离心;抗凝的全血标本(锌、锂、原卟啉等测定时)可以不离心;(5)冷藏(2~8oC)标本应保持这个温度直到准备离心。推荐用温度控制离心机;(6)离心标本前不主张用小木棒或类似器材去剥离附着于试管壁和管塞上的凝块，人为剥离会诱导溶血。如果必须露出试管壁或取下管塞时，一定要十分注意，动作一定要轻柔。

(二)离心阶段

即指标本处于离心机里的一段时间。

1.离心时间和相对离心力(RCF)：临床化学分析血液标本离心时，RCF(1000~1200)×g，离心时间为5~10min。

2.温度控制离心：离心时产热不利于分析物稳定，临床化学分析血液标本离心时必须采用温度控制离心机。一些温度依赖性分析物(如促肾上腺皮质激素、环腺苷酸、儿茶酚胺等)应在4oC分离;无特殊温度要求的分析物，离心温度应设定在20oC~22oC;温度低于15oC可以人为地使血钾测定值增高;冷藏运送的标本必须在要求的温度下离心。

3.关于再离心：标本离心最好一次完成，若需再次离心，应距上次离心相隔时间很短;对于含有分离物质的血标本绝不可以再离心。

G. 血液及骨髓标本的采集和处理

血液及骨髓标本的采集和处理

正确的采取、处理与运送细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础;而标本采取与处理不符合要求，则细菌培养的结果毫无意义。下面是我为大家带来的血液及骨髓标本的采集和处理的知识，欢迎阅读。

一、检查项目

血液、骨髓液的细菌培养

二、标本采集

【标本采集前的注意事项】

应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集：

【标本送检指征】

病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养。

1.发热(≥38℃)或低温(≤36℃)

2.寒战

3.白细胞增多(>10×10^9/L，特别有“核左移”时)

4.粒细胞减少(成熟的多形核白细胞<1×10^9/L)

5.血小板减少

6.皮肤、粘膜出血

7.昏迷

8.多器官衰竭

9.血压降低

10.呼吸加快

几种特殊情况：

1.可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应增加尿液和脑脊液培养。

2.老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或中风，可能是感染性心内膜炎，也应采取血培养。

骨髓培养与血液培养的送检指征是基本一致的，临床常规血液感染有指征时以抽取血培养为主。但当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率会远高于血培养。

【标本采集的容器】

血培养仪配套血培养瓶或手工血培养瓶。

【标本的采集方法】

防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培养的关键问题，采血前严格执行消毒程序是十分重要的。

1.皮肤消毒程序

严格按以下三步法进行：

(1) 75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。

(2) 用一根碘酊或聚维酮碘(碘伏)棉签消毒皮肤，1～2%碘酊作用30s或聚维酮碘作用60s，从穿刺点向外以1.5～2cm直径画圈进行消毒。

(3) 75%酒精脱碘。

对碘过敏的病人只能用75%酒精消毒，消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。

2.培养瓶消毒程序

(1) 用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子。

(2) 酒精作用60s。

(3) 在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布或棉签清除橡皮塞子表面剩余的`酒精，然后注入血液。

3.培养瓶接种程序

抽取血液后，不要换针头，直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固。如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中，然后再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。

【标本采集注意事项】

1.血培养采集的时间和频率

(1) 采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内采集2～3份血培养(一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养)，每次2瓶。因为研究已证实，2～3份血培养足以检测所有的菌血症和真菌血症。

(2) 入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采集2份，可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。

(3) 对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒战或发热后1h采集。因为发热时血液中可能没有细菌。

(4) 可疑为急性原发性菌血症、真菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎的患者，应在不同部位采集2～3份血培养。

(5) 不明原因发热，如隐性脓肿、伤寒热和波浪热，先采集2～3份血标本，24～36h后估计体温升高之前，再采集2份以上。

(6) 可疑为菌血症或真菌血症，但血培养持续阴性，应改变血培养方法，选择其它种类的培养瓶，如高渗培养瓶、中和抗生素培养瓶、结核菌培养瓶等，以获得罕见的或苛氧的微生物。

(7) 可疑为细菌性心内膜炎，在1～2h内多部位采集3份血标本，如果24h阴性，再采取3份以上的血标本。

2.采血量

成人：推荐每个血培养瓶应加的血量为5～10ml，血液和肉汤比为1：5～10(体积：体积)。

儿童：因很难获得大量的血液，一般静脉采血1～5ml用于血培养。

血液量太多或太少都不利于细菌的检出，血液的培养量每增加1ml,阳性率增加3～5%。人体血液内包含各种抑制细菌生长的因子或抗生素，注入血液太多可能会抑制细菌的生长。

骨髓采血量一般为1～2ml。

*标本运送过程中必须保证其安全，防止溢出，避免细菌污染。

【标本的保存】

含血样的培养瓶应立即送往实验室;如不能及时送检，应将其放在室温，切忌冰箱存放。因为某些苛氧菌可在冰箱温度中死亡，而使培养阳性率下降。

在运往实验室的途中如果天气寒冷，应采取一定的保温措施。

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H. 临床检验标本的采集知识

临床检验标本的采集知识大全2017

检验标本的正确采集，关系着检查结果的准确性，也避免了不必要的医疗纠纷。作为一名护理人员，每天都面临着标本采集的问题，那如何正确采集标本，是我们需要讨论和关注的话题。下面是我为大家带来的临床检验标本采集的知识，欢迎阅读。

一、血标本的采集

血标本的采集是临床上护士每天都在做的`事情，采血管种类繁多，我们先要认识什么管应该采什么血，认识清楚了才能正确采集。(如下图)

知道什么管采什么血，拿到试管后，对于多管采集，我们要遵循如下顺序并且要注意掌握好采血时间，注意调整患者的情绪和状态，严格规范操作，严防溶血，防止凝血(采血顺序)：血培养(需氧→厌氧)→黄管→蓝管→绿管→紫管→黑管

在采血之前，责任护士应该交待患者饮食的注意事项：如血液分析检查，空腹、进食不影响结果;肝功、肾功、免疫类项目等严则上以空腹为好，若为病情所需，也可随时抽血检查;血脂检查应在检查三天前，禁服一切降脂药物和进食大量的高脂蛋白食物，饮食以素食为主，检查时必须空腹采血;空腹血糖应在进食后8小时以上采血;检查餐后血糖，应在进食后准确2小时采血。

在静脉采血的过程中，采血护士还应该注意当患者一侧手臂输液、输血时应从对侧手臂采血，以免影响血糖、血钾等的浓度;止血带使用应少于半分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变;若局部出现淤血，早期冷敷，24小时后用手巾热敷，可促进吸收，采血若是失败，确定针头没有在静脉内，应立即拔针，重新更换针头另选静脉进行采血，不能来回多次进针或退针。采完血，最好采用无痛拔针，拔针时棉签不按压血管，在针类离开皮肤的瞬间迅速沿血管方向同时按压皮肤及血管穿刺针眼，使疼痛降低到最低点。标本若是不能及时送检，就存放在4—6℃冰箱保存。

二、尿标本的采集

尿标本的采集一般采用晨尿，即清晨起床、未进食和运动之前排出的尿液，一般需留取10ml ,尿标本在2小时内送检。

中段尿是指在排尿过程中，弃去前后时段排出的尿液，以无菌容器收集中间时段的尿液，留尿前应先清洗外阴，女性应清洗尿道旁的阴道口;再用0.5%碘伏清毒尿道口，但不可用抗生素和肥皂等清洗尿道口，在患者膀胱充盈时留取。

尿三杯试验留取方法是留取前段、中段、末段尿液，分装于三个尿杯中。

24小时尿先排尽早上7点的尿液后开始至第二天早上7点的全部尿液，容量最好大于4L，用清洁有盖的容器。留好的尿液中需要加防腐剂，如浓盐酸加入24小时尿液中5-10 ml;用于固定尿中有机成分的甲醛，需要加1-2 ml;保持尿中成分不变的甲苯则需加2 ml。

三、粪便标本的采集

粪便标本的采集需要注意的是隐血标本应在3日前禁食肉类及动物性食物，并禁服铁剂及维生素C等药物。采集方法有自然排便采集法，采集有脓血、粘液部份的粪便约黄豆大小，或稀水样便则应取约2 ml，置于容器中送检。

检查蛲虫卵需要用透明塑料薄膜于半夜12点或早晨排便前，于肛门周围皱壁处拭取标本，并立即送检。

标本采集后应在1-2小时内送检，否则可因PH及消化酶等影响导致有型成分破坏分解。

四、痰标本的采集

痰标本的采集，若是能自理的患者采用自然咳痰法，痰咳困难者可先雾化吸入10%NACL溶液使痰易咳出。无法咳痰或不合作者可从下而上叩击病人背部，帮助咳痰，用集痰器收集。

以上都是临床上常见的标本采集，采集完标本后，护士仍应执行严格的查对制度，详细核对病人信息与条形码是否一致，无误后方可送检。对于急查标本应在30分钟内送检，普通标本应在1小时内送检。检验结果出来后，对危急值，当班护士应及时汇报值班医生处理，以免耽误病情。

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