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常用的液质前处理方法

发布时间:2022-07-11 00:16:34

① 做代谢组学检测的血液样本怎么采集与前处理

采集:
由于生物样本通常采用组内平行样本,不可避免的会由于时间、环境等因素产生“个体差异”,所以在采集动物血液时需要使用麻醉剂以减少采血过程中动物的疼痛感、不适感、创伤性,以减小应激反应造成的代谢物的变化、尽量缩短采集时间、保持一致的采集部位等细节问题;另外也考虑到样本采集或制备的原则和易实现性,操作应具有简便性和可重现性。
从生物体内采集出的血液首先会收集到专用容器,如动物实验使用注射器取血后可以直接存储在EP管内或采血管中,但若是从医院检验科采集的血液会首先存储在专用的真空采血管内,管内分别含有不同种类的抗凝剂、促凝剂等成分,适用于不同检测项目,例如血清和血浆的生化试验、免疫试验、凝血试验、红细胞沉降率试验、血常规检测、血糖检测等。常用的抗凝剂有EDTA、柠檬酸钠、肝素钠、肝素锂,这些成分在与血液混合时不可避免地会产生基质效应,如促进或抑制血液中的细胞代谢、酶代谢,造成血液中小分子的种类和含量变化。有学者在血液与抗凝剂/促凝剂的相互作用方面进行了研究,认为肝素钠相比于其他抗凝剂,与血液混合后引起的基质效应较弱,产生的杂质较少,并且也满足重现性要求,在代谢组学研究中若使用气质联用或高分辨的液质联用作为主要分析技术,建议选择含有肝素钠作为抗凝剂的采血管储存离体血液。
前处理:
血液中含有血细胞,在采血后血细胞仍有短时间的存活,所以在采集血液样本后需要尽快分离血细胞,例如高速离心可以将微小杂质及血细胞沉淀,减少离体血细胞的代谢造成的影响。若不需要第一时间进行分析,则应该尽快分装,并储存在-80℃生物低温冰箱中。从微观角度来说,借鉴化学反应速率常数随温度变化关系公式(阿伦尼乌斯公式),生物样本的代谢活动与样本所处温度成正相关,在-80℃或液氮(-196℃)这种极低温度下,血液中的酶或其他活性物质的活动才会减弱或停止,同时样本中的水以晶体形式存在,减小了流动性,分子的传输性极大减弱,避免样本变质或分解代谢,可保存数月数年。
血液样本的前处理相比于尿液等其他类型的体液样本,过程更多也更细致一些。原因是血液中含有的成分十分复杂,不同种类的化合物极性千差万别,且存在种类较多、丰度较高的蛋白质成分,通常采用一定比例的有机溶剂进行涡旋震荡萃取(有机溶剂沉淀法),使极性和非极性小分子物质充分溶解在溶剂中,经高速离心后得到的上清液和下相为小分子萃取液,沉淀物质为蛋白及杂质成分。广泛使用的溶剂包括甲醇、水、乙腈,其他如丙酮、异丙醇等等低极性和高极性的溶剂需要根据具体实验需求而单独定制设计。
总体而言,血液样本的采集与前处理看似简单,但过程中包含大量细节考虑与操作,应尽可能标准化,但一种方法不可能适用于所有实验,需要围绕实验目的进行充分的个性化实验设计,样本的采集和前处理遵循易实现性、易重现性、多组分保留等原则,在生物样本的来源、采集、前处理等源头把关,保障实验最终数据与结果的可靠性,经得起验证。

② 液质联用与质谱直接进样的两者的方法有区别么

这个气的参数主要跟雾化有关,要使流动相或进样液完全雾化就可以了.液质联用开始时是否用的to waste,而进样后to MS,因为液相有流动相的缘故,所以需要更大的气速.直接进样流速就比较低了.你可以观察一下离子源的雾化状况,只要能完全雾化即可.

③ 有哪位大侠做过植物激素ELISA测定,求助一些问题

④ 液质检测中,萃取浓缩后,为什么要净化,净化的目的是什么

使用商品固相萃取小柱来进行样品提取液净化浓缩的方法。工作原理与柱色谱法相似。集萃取、净化、浓缩于一步,具有缩短分析时间,降低成本,节省有机溶剂,可实现半自动化、全自动化操作。由于是商品化生产,固相萃取小柱规格统一,装填均匀,操作方便,易于控制,所以该方法重现性好。

⑤ 液相色谱质谱联用仪对进样样品前处理的要求有哪些

基本上跟液相色谱差不多,但是液质的灵敏度非常高,基质效应很强,所以进样的浓度不宜过大,稍微有点基质干扰,就会影响定量,所以能净化的尽量净化处理,净化效果不好,至少也得稀释一下,以降低基质效应。

⑥ 求助:做液质为什么重现性那么差

前处理方法不适合,需要对前处理方法进行改进。如果是同一样本连续进针,结果重现性都不好的话,就可能是液质的问题了,需要调谐查找问题。

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