‘壹’ 如何用流式细胞仪检测转染细胞的效率
阴性对照最好用转染无GFP载体的细胞,因为转染可能会改变细胞的自发荧光本地
确保阴性对照和实验细胞的浓度相同,具体多少倒是无所谓,不要太稀释就好
上机前,用细胞滤网过滤掉大块未消化的杂质
不要固定,GFP固定后荧光强度会下降。
‘贰’ 如何鉴定细胞的转染效率
通常是带上一个报告基因,比如绿色荧光蛋白,然后在镜下观察看发光的和不发光的细胞比
‘叁’ 转染效率检测方法
除了直接在荧光显微镜下观察计数,现在很多细胞计数仪也有相应功能,推荐瑞沃德的荧光细胞计数仪,上样之后就能直接查看相应结果。
‘肆’ 如何鉴定细胞的转染效率
IF\ FCM 等方法。
‘伍’ 用那种方法可以提高RAW 264.7细胞转染效率
在6孔板中用Zeta Life Advanced DNA RNA转染试剂高效率转染RAW 264.7细胞方法总结。
实验方案如下:
一、质粒DNA准备
1、质粒DNA浓度700ng/ul(注意:①溶解于无菌双蒸水或超纯水;②无内毒素),
二、操作流程
1、先将细胞接种到6孔板细胞培养板,细胞汇合度在70%左右,再进行转染。
2、复合物制备:将质粒DNA与Zeta Life Advanced DNA RNA AD600150转染试剂按照1:1(12ug:12ul)关系直接混合,用移液器吹吸10-15次混匀,室温静止10-15分钟。
3、将复合物加入完全培养基的细胞培养板,并轻轻混匀,放入培养箱中继续培养(不建议把复合物加入到无血清的培养基里面,后期会进一步摸索此条件)。
4、转染24小时后对细胞进行正常换液。
5、质粒DNA转染48小时后荧光检测转染效率
下图是转染raw 264.7细胞的荧光和明场图片
三、RAW 264.7细胞简述:
RAW 264.7小鼠单核巨噬细胞白血病细胞. 此细胞株源自雄性Abelson鼠科白血病病毒诱导的肿瘤。 sIg-, Ia-抗原、Thy-1.2表面抗原阴性。此细胞株不分泌可检测到的病毒颗粒,XC斑点形成试验阴性。 可以胞饮中性红并吞噬乳胶颗粒与酵母聚糖。 可以抗体依赖性地分解绵羊红血球与肿瘤靶细胞。
‘陆’ 是否瞬转成功如何检测
博凌科为解答:可以先使用有荧光蛋白的空载体验证整个系统的转染效率,用流式检测就可以了,非常方便。确定转染效率没有问题后可以转染带有目的基因的质粒。对于转染效果的验证主要取决于你的目的蛋白的性质。主要是mRNA和蛋白水平的验证。mRNA水平可以使用普通PCR或者定量PCR,前者是定性, 后者定量。但是最主要的还是蛋白水平的检测,如果是膜蛋白,那么流式检测最方便,如果是胞外分泌型那么可以用上清做ELISA或者Western都可以, 如果是胞浆分泌型的那么就用Western或者流式都可以。
‘柒’ siRNA实验方法和设计常见问题解答
Q:如何选择转染方法和转染试剂?
A:我们的siRNA适用于各种转染方法。转染方法和转染试剂的选择,需要根据细胞来选择,对于容易转染的细胞,常用的转染方法是脂质体转染。
Q:对于难转染的细胞,应该如何提高其转染效率?转染效率又该如何确定?
A:1)对于贴壁细胞,推荐采用转染试剂转染即可;2)对于难转染的细胞的转染,如何提高转染效率的问题也是目前研究的技术难题。一般建议使用电转的方法,但是由于电转的方法对细胞损伤比较大,该方法也未必是最佳的。
转染效率的确定,常用的是使用荧光标记的siRNA,通过荧光显微镜,共聚焦显微镜,流式细胞仪检测的方法。具体可以参考我们的产品说明书。
Q:细胞的转染效率是否与siRNA序列相关?
A:转染效率的高低取决于与细胞自身及转染方法,而于siRNA的序列并没有直接关系。因此,siRNA在不同的细胞转染效率可能不一样。
Q:转染siRNA时候的细胞密度多少为宜?
A:依不同的转染方法或转染试剂而定。如使用lipofectamine 2000作为转染试剂,单独转染siRNA,30%~50%密度较佳;而siRNA与质粒共转染,密度可以到80%-90%。
Q:siRNA转染时的培养基要求,可否含血清?
A:不同的转染试剂可能有不同的要求,对于lipofectamine 2000,在配制siRNA和lipofectamine 2000混合物时不能含有血清,但细胞培养基可以含有血清,但不能含有抗生素。
Q:siRNA的储存液体浓度和工作浓度有何区别?
A:siRNA的贮存浓度就是保存的最佳浓度,锐博推荐的贮存液浓度为20 μM;而siRNA的工作浓度就是使siRNA能够达到最佳沉默效果的转染浓度,一般10~100 nM范围内,锐博生物推荐的转染浓度是50nM。
Q:转染时该如何分组?分组的目的是什么?
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Q:为什么说阳性对照在RNA干扰实验中很重要?
A:阳性对照作为一个实验系统检查是很重要的。也就是说,当您看到siRNA阳性对照的预期实验结果时,您能确保在您的实验方法中您的转染、RNA提取物和检测方法是可靠的。
Q:阳性对照及其阴性对照在RNAi实验中的作用?如何选择?
A:阳性对照指的是已经验证的针对看家基因或报告基因有效的siRNA,用于监测实验体系和实验方法的可行性。我们可以提供的阳性对照siRNA有针对GAPDH,ACTB,GFP/EGFP有效的siRNA作为阳性对照,客户可以根据具体的实验需要选择。阴性对照往往是非特异的siRNA,主要用于说明siRNA作用的特异性。阴性对照的选择可以是通用的序列(universal)或是随机打乱的序列(scramble),客户可以根据实验要求选择。
Q:用荧光对照siRNA如何检测转染效率?是不是每次实验都必须做?
A:我们提供的转染对照siRNA带有Cy3或Cy5荧光标记,可以通过荧光显微镜,共聚焦显微镜,流式细胞仪等荧光检测仪器检测。 除此之外,还应该通过阳性对照实验进一步确定。转染效率的高低主要与细胞自身相关,同等实验条件下,每次转染细胞转染效率应该是相近的,因此可以不必每次都做。但如果每次实验都做一个荧光对照组,将会更加便于排除一些实验问题。
Q:siRNA荧光染料的最大吸收率和发射率各在哪个波段?
A:FAM在495nm处有最大吸收率,在520nm处有最大发射率。
Cy3在550nm处有最大吸收率,在565nm处有最大发射率。
Cy5在643nm处有最大吸收率,在667nm处有最大发射率。
Q:转染后出现细胞死亡是什么原因?如何优化转染条件?
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Q:到了转染时间发现细胞密度太低,该如时转染还是让细胞多长一天再转染?
A:细胞生长需要一定的密度,而转染试剂对细胞有一定的毒性,如果转染时细胞密度过低,细胞可能会因此生长异常甚至死亡。转染前要求良好的细胞状态和细胞活性,一般也不建议用生长几天的细胞做转染。
Q:siRNA的作用效果应该如何检测?
A:通常可以从三个方面来相互验证siRNA的作用效果
3)根据目的基因的功能,从细胞表型的水平检测。
Q:siRNA在细胞内可以作用多长时间?什么时候才是最好的检测时间?
A:siRNA介导的RNAi属于瞬时现象,不能稳定传代,一般其作用时间不可能维持很长时间,通常建议在转染后3 4天内完成检测。最佳检测时间,因细胞、目的基因而异,多在转染后24 48小时之间检测。
Q:为什么要强调mRNA水平检测?可以直接检测蛋白和功能吗?
A:siRNA直接作用于mRNA,因此mRNA水平检测是最直接在指标。
很多客户认为,mRNA的降解直接的结果应该是对应蛋白质含量的下降,因此蛋白水平的检测结果也应该可以作为有效性的检测指标。事实上,很多情况下往往出现,mRNA下降水平与蛋白下降水平不对应的现象。其可能原因有:
Q:干扰效率多高才是好的靶点?
A:没有明确的界定,干扰效率高低因不同的细胞类型和不同的基因而异。不同细胞类型的转染效率也不尽相同,不同基因的表达水平也相差较大,主要看干扰效果而定。
Q:沉默效果不理想,应该如何处理?
A:最常见的影响沉默效果的两个原因是:转染效率低和siRNA序列设计的效果不理想。如果您初次使用siRNA或采用了新的细胞系,并发现沉默效果不佳,我们建议您对转染效率进行检测,并选择优化转染条件。如果您已经对实验转染条件进行优化但是问题依然存在,我们建议您换用另一种转染试剂或是采用其他技术,这也许能提高转染效率。如果已经提高了转染效率但是沉默效果仍然未达到要求,可能是因为siRNA序列设计的效果不理想。
Q:siRNA反而使得目的基因表达上调了,这是什么原因?该怎么解决?
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Q:我从阴性对照实验中得到和特异性RNAi相同的结果,这说明了什么?
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Q:各组阴性对照的检测结果是否应该一样?如果偏差很大该怎么办?
A:正常情况下,各组阴性对照的检测结果应该是相近的。如果偏差过大,只需考虑实验结果的准确性。另外,对于一些特定的基因,比如与细胞难受压力相关的基因,又如参与细胞免疫的基因,可能会对外界压力比较敏感,使得各组对照的基因表达发生变化不一致。
Q:用100nM 的siRNA转染时只得到50%沉默效率,我可以把siRNA的浓度增加到200nM甚至400nM吗?
A:当干扰效率不佳时,可以在一定范围内适当优化转染浓度,通常优化的范围是10~150nM,但不宜过大,高浓度的siRNA将可能增加非特异性作用的可能性并对细胞产生毒性。
Q:同样的siRNA,为什么在细胞A很有效,在细胞B则没有效果?
A:不同细胞的转染效率不一样、基因表达水平也不一样,这些都与siRNA的作用效率有关
siRNA实验方法和设计常见问题解答- 答疑集锦- 非编码RNA研究策略-锐博技术专题专题—丁香园会议频道 (dxy.cn)
‘捌’ 如何用流式细胞术测定细胞转染率
转染成功一般都会表达GFP蛋白,这个蛋白在流式上面可以用FL1通道检测到.转染成功的有表达,不成功的没表达,很容易算出细胞转染率.