多糖的鉴别方法

Ⅰ 如何区分单糖和多糖

单糖：不能水解的多羟基醛或多羟基酮。如葡萄糖、果糖等。

二糖：水解后生成两分子单糖的糖。如蔗糖、麦芽糖等。

多糖：能水解生成许多分子单糖的糖。如淀粉、糖原、纤维素等

Ⅱ 怎样鉴别单糖,多糖和二糖

看糖是否还能水解单糖不能水解，例如葡萄糖，核糖，脱氧核糖，果糖二糖可水解两个单糖，例如蔗糖，麦芽糖，乳糖多糖可水解多个单糖，先水解为多糖小分子，后水解为二糖，最后水解为单糖，例如淀粉，纤维素，糖原

Ⅲ 如何鉴别真假黄芪多糖

但加入葡萄糖能提高其检验浓度。 看颜色优质黄芪多糖为淡黄色或类白色；
被氧化过的黄芪多糖为红糖色或咖啡色，活性很低！不要使用。
注意：很多厂家在黄芪多糖药粉中加入葡萄糖，应付药检所检验，但仔细观察黄芪多糖药粉颜色会发现里面有白色的小颗粒。
吸湿性是黄芪多糖固有特性，不能改变！
换句话讲如果黄芪多糖不吸潮了，那它就不是黄芪多糖了，但通过工艺的改进可使黄芪多糖吸潮性降低，因此不吸潮的黄芪多糖目前来讲是不存在的。
实验鉴别实验原理：黄芪多糖不溶于80%酒精，75%的酒精也能鉴别。
将待检黄芪多糖倒入75%或80%的酒精中，若：
A：黄芪多糖抱团，且酒精清澈，则为优质黄芪多糖。

Ⅳ 糖类的鉴定有哪些应用

1. Fehling试验：生药的水浸液加Fehling试剂，于沸水浴加热数分钟，若有还原性糖类成分存在，则产生砖红色氧化亚铜沉淀。若有非还原性低聚糖及多糖存在，则必须加稀酸水解后，才能与Fehling试剂呈阳性反应。
2. Molish试验：生药水浸液，加a -萘酚试剂数滴，摇匀后沿管壁滴加浓硫酸，若有糖类成分与甙类存在，则在二液面交界处出现紫红色环。 医学教.育网搜集整理
3. 成脎试验：生药的水浸液与盐酸苯肼液共热，只要有糖类成分存在，即生成黄色的糖脎结晶。镜检结晶，可视结晶的形状而鉴定出糖的种类。
4. 层析法：取生药浸出液（多糖类需水解），以某种糖为对照品一起进行层析检测。常用纸层析法，正丁醇-乙酸-水（4 : 1 : 5上层）作展开剂，新配制的氨化硝酸银溶液为显色剂，结果还原糖形成黑色斑点。
以上资料仅供参考。

Ⅳ 怎么鉴定多糖,单糖,低聚糖和苷类,

单糖用斐林试剂可以鉴别出；多糖用碘；聚合度很低的低聚糖与糖苷可以用碱水解然后再用斐林试剂鉴别，糖苷不反应。 最好使用HPLC，看图谱

Ⅵ 如何用化学试剂鉴别单糖双糖多糖

糖类有分为单糖，二糖，多糖。多糖一般为淀粉利用碘溶液可以鉴别，至于单糖可以利用酶作催化剂水解多糖过程，验证其产物，单糖又包括醛糖和酮糖，可利用溴水检测出醛糖，因为醛糖还原性可使其褪色，或者使用新制氢氧化铜悬浊液，或者银氨，苯肼溶液等都可以，其实还可以利用糖类旋光度不同来检测

Ⅶ 单糖与多糖怎么鉴别

单糖多是还原性糖，可用斐林试剂检验。（麦芽糖除外）

Ⅷ 用什么方法鉴定糖

鉴定糖是一个很严谨的过程，这并不是什么简单的方法就能鉴定的。糖为多羟基醇与多羟基醛类化合物，由于化学结构随便变动一个氢就可以变成另外一种物质，所以这里给出具体的测定流程。
在有标准品的情况下：
首先，通过纸层析法、凝胶柱色谱法进行分离，得到单个化合物（多糖化合物）。之后，将此化合物通过一定的试剂水解成众多单糖化合物。用气相色谱和凝胶柱层析分析，与众多标准品进行比较如：葡萄糖、半乳糖、甘露糖、阿拉伯糖、半乳糖醛酸等。采用三种以上的不同展开剂展开，对比比移值，如果比移值三次以上都是同样的数字，那么可以说是同一种物质。从而，确定此为什么物质。在通过气象色谱法-质谱法连用，进行官能团的结构内连接、排列与数量的分析。
在没有标准品的情况下：
如果是未知物质，没有标准品的话。可采用四大光谱联合应用并与仪器分析进行联合分析。
四大光谱：紫外光谱，核磁共振，红外光谱，质谱。
将四大广谱数据汇总，进行大量计算。如还不能判断是什么物质的不话。如果物质结晶，则可考虑用X射线单晶衍射（X射线单晶衍射，是世界上最先进的检测结构的方法了）。
相关知识拓展：随着科技的发展，鉴定物质的方法已经不仅仅局限于上述方法。网传的什么“鉴定还原糖”的方法。这里说一句：这种方法不过是利用了某些糖的性质而已，并不代表所有糖都有。鉴定不是鉴别，需要说出具体结构以及内部分子链接方式，这些不可能是一个简单的化学反应就可以鉴定出来的。如果本体题目说的是“鉴别”，那么方法会简单很多，可以把糖分成还原糖与非还原糖两种进行分别鉴别。但是本题说的是鉴定，那么就不能通过简单的方法进行测定。

Ⅸ 多糖类的分析方法

下面将简单介绍化学方法和物理分析方法。⑴化学方法测定多糖结构还是目前最常用的方法，测定的手段很多，其中经典而有效的是甲基化分析、高碘酸氧化和Smith降解、部分酸水解以及乙酰解和甲醇解等。① 乙酰解：多糖的乙酰解反应是在由乙酸酐、乙酸和硫酸组成的混合液中加热进行的，在一定的糖苷键处裂解。研究表明，相同糖苷键在酸水解和乙酰解中的速度是不同的。乙酰解是酸水解的一种有用的补充，多糖可从这两种不同的方法中获得不同的片段，从不同的角度获得多糖的结构信息。甲醇解：多糖在80-100℃条件下与无水甲醇氯化氢反应能将多糖变成组成单糖的甲基糖苷，这些甲基糖苷能转化为三甲基硅醚衍生物或乙酰基衍生物，然后进行GC分析并与标准单糖对照，可得到组成多糖的各单糖的定量数据。⑵物理分析法 ①IR法：IR在多糖结构分析上主要是确定吡喃糖的苷键构型，以及常规观察其他官能团。一般主要观察730-960cm-1的范围，如对于α-吡喃糖，δC1-H在 845 cm-1，而β-吡喃糖，δC1-H在890cm-1有最大吸收峰。②MS、GC-MS：GC分析多糖虽受样品挥发性和热稳定性的限制，但GC-MS是多糖结构分析不可缺少的工具，特别是对水解单糖、甲基化单糖及甲基化寡糖的分析，而且能鉴别出糖的异构体。MS在多糖结构分析中不仅在鉴别各种甲基衍生物的碎片，确定各种单糖残基的连接位置时必不可少，而且由于FAB-MS、ESI-MS和 MALDI-MS等技术的出现，利用质谱还可以测定多糖的分子量及一级结构。③NMR：用NMR技术研究多糖结构的一个特点是不破坏样品，对多糖的结构特征可通过化学位移、偶合常数、积分面积、NOE及驰豫时间等参数来表达。一维、二维图谱 NMR在分析糖的构型、相互连接的位置及顺序等方面具有广阔的应用前景。2、分子量及分子量分布多糖具有分子大小不均一的特点，近年来发现这些生物大分子的某一分子量范围成分具有药理活性，而另一分子量范围的成分不具有药理活性或具有一定的毒副作用，因此分子量及其分布既是这类药物的有效性控制的指标又是安全性控制的指标，质量标准中制订该项检查十分必要，这也是近年来大分子聚合物药物质量标准发展的一个明显的特点。多糖分子量只是代表相似链长的平均配布，不同方法所测得的分子量不同，即使是同一多糖，其重均分子量与数均分子量也相差较大，通常采用凝胶色谱法控制这类药物的分子量及其分布，应经研究选用与供试品分子大小相适应的色谱柱填充剂；使用的流动相通常为水或缓冲液，其pH值不应超过填充剂的耐受范围，可加入适量的有机溶剂，但浓度不应超过30%，流速以 0.5-1.0ml/min为宜，因这类分子多无紫外吸收，一般采用示差折光检测器，选用对照品的分子量范围及颗粒形状应与供试品匹配，测定数据经适宜的GPC软件处理求得相关参数。3、含量测定一般来讲，多糖不含蛋白和氨基酸，蛋白或氨基酸检测应呈阴性或符合限度检查要求，如为糖蛋白或糖肽，应提供其证据，以保证产品不是多糖与蛋白的混合物；并提供其氨基酸构成及蛋白含量范围，以保证质量稳定可控。对从天然植物中得到的多糖，在结构研究中尤其对糖组成分析，确定其中是否含有糖醛酸残基具有很重要的意义。糖醛酸的含量测定目前较常用的是硫酸咔唑法，但容易受中性糖残基的干扰。为了消除测定的干扰，可先测定样品中中性糖的吸收度，然后从样品的吸收度减去中性糖的吸收度，即为样品中糖醛酸的吸收度值。间羟基联苯法也是一种常用的多糖中糖醛酸含量测定方法，该法较硫酸咔唑法受中性糖残基的干扰更小。多糖的含量测定可分为两大类：一类是直接测定多糖本身，如高效液相色谱法和酶法；另一类是利用组成多糖的单糖缩合反应而建立的方法，如苯酚-硫酸法、蒽酮-硫酸法等。前者需要多糖的纯品和特定的酶，后者测定时方法学干扰较大，现有的比色重现性差，受影响因素多。但由于目前国内的实验条件，多糖的含量仍然主要采用这种方法，其原理为：多糖在浓硫酸水合产生的高温下迅速水解，产生单糖，单糖在强酸条件下与苯酚反应生成橙色衍生物。在波长490nm左右处和一定浓度范围内，该衍生物的吸收值与单糖浓度呈线性关系，从而可用比色法测定其含量，所用的单糖对照品尽量采用与其多糖组成一致或为含量较高的单糖，这样测得的值较准确。需要强调的是，这种方法所测定的是总糖的含量而不是总多糖的含量，因此首先应测定样品中游离的单糖含量，然后将总糖的含量减去游离单糖的含量，即为总多糖的含量。另外还可以采用3，5-二硝基水杨酸比色法（DNS法），它是在碱性条件下显色，较准确测定还原糖与总糖的含量从而求出多糖的含量，可消除还原性杂质的干扰。

Ⅹ 糖类的鉴别

戊糖与强酸共热，可脱水生成糠醛（呋喃醛）。己糖会分解成甲酸、二氧化碳、乙酰丙酸以及少量羟甲基糠醛。糠醛和羟甲基糠醛能与某些酚类作用生成有色的缩合物，不同糖类与不同酚类反应，会出现不同结果。利用这些颜色反应可以进行糖的鉴别。

用来鉴别糖与非糖的有两个反应：Molisch反应和蒽酮反应。Molisch反应以奥地利植物学家Hans Molisch命名，是用α-萘酚和浓硫酸与糖反应，生成紫红色。具体做法是在少量样品（如1毫升1%葡萄糖溶液）中加入几滴莫氏试剂（3%α-萘酚乙醇溶液），混匀后倾斜试管，沿管壁缓慢加入1毫升浓硫酸。立起试管后溶液分为两层，界面处有紫红色环出现，所以又叫紫环反应。

Molisch反应为阴性可以确定无糖存在，如果为阳性则表明样品中可能含有糖，但不能确定是单糖、寡糖、多糖、糖苷还是糖的衍生物，如糖醛酸等。该反应很灵敏，滤纸屑也会造成假阳性。丙酮、甲酸、乳酸、草酸等都会产生近似的颜色，干扰该反应。果糖浓度过高时会由于浓硫酸的焦化作用而呈褐色。另外，浓硫酸如果直接与莫氏试剂反应，会生成绿色，影响观察。所以操作中加入莫氏试剂时，应该直接滴加到样品中，不要碰到试管壁，以免影响实验结果。下图中右侧试管底部的绿色应该就是试管壁上残留的萘酚造成的。

蒽酮（10-酮-9，10-二氢蒽）反应原理与之相似，产物为蓝绿色，在620nm有吸收，常用于定量测定总糖。色氨酸使反应不稳定。

鉴别酮糖与醛糖一般用Seliwanoff 试剂（间苯二酚和浓盐酸），酮糖在20-30秒内生成鲜红色，醛糖反应慢，颜色浅，增加浓度或长时间煮沸才有较浅的粉红色。含有酮糖的多糖或寡糖（如蔗糖）会因为酸水解而产生颜色。该反应以俄罗斯化学家Theodor Seliwanoff命名。

Seliwanoff反应阳性结果，引自维基网络
鉴定戊糖的Bial反应以德国医生Manfred Bial命名。Bial试剂（含0.025%氯化铁，0.2%地衣酚的浓盐酸）与戊糖在沸水中生成蓝绿色物质，可能沉淀，但可溶于正丁醇。该反应以前常用于RNA定量，吸收峰为670 nm。己糖生成灰色或棕色沉淀，很容易区分，且不溶于正丁醇。

鉴定单糖的Barfoed反应由丹麦化学家Christen Thomsen Barfoed发明,原理类似费林反应。半缩醛羟基在微酸性条件下与乙酸铜反应，生成氧化亚铜的砖红色沉淀。单糖还原快，在30秒到3分钟内显色，而寡糖要在20分钟以上。样品水解、浓度过大都会造成干扰，NaCl也有干扰。