常用的動物采血麻醉方法

1. 對實驗動物采血的要求

1.小鼠和大鼠采血
（1）眼眶取血：將小鼠抓牢固定，用拇指和食指將眼部皮膚扒開，使眼球充分突出，眼窩內眥處為眼靜脈竇。將毛細管由此刺入，捻轉，輕輕外提，使血液充滿毛細管，采血後用一塊干紗布將眼合上數分鍾以止血。小鼠每次采血0.2～0.3mL，大鼠為0.5～1.0mL。
（2）剪尾采血：固定動物，將尾尖剪掉1～2mm（小鼠）或5～10mm（大鼠），然後自尾根部向尖部按摩，血即自尾尖流出。如需較多血也可先將尾浸於近50℃的熱水中，再剪去尾尖。采血後用膠布包紮尾尖進行壓迫止血。由於鼠血凝集快，需要全血應事先置抗凝劑於采血管中，如用血球懸液，應立即與生理鹽水混合。小鼠可取血0.1mL，大鼠可取0.3～0.5mL。
（3）斷頭取血：斷頭時，左手抓鼠，右手持剪刀於頸部迅速剪掉鼠頭，立即將鼠頸向下，血液即可流入已准備好的容器中
（4）腹主動脈采血：將動物麻醉，仰卧固定，從腹中線切開皮膚，暴露腹主動脈，用注射器抽取血液。
（5）股動（靜）脈采血：將動物麻醉固定後，進行一側腹股溝動、靜脈分離手術，血管下方分別穿一根絲線，左手提起血管，右手持注射器將針平行刺入血管內取血。
（6）心臟采血：動物麻醉後，仰卧固定於鼠板上，在左胸側第三、四肋間，用左手食指觸摸到心搏動處，右手持注射器垂直刺入心臟，抽取所需血量。小鼠取0.5～0.6mL，大鼠取0.8～1.2mL。

2.家兔采血
（1）耳中央動脈采血：將兔固定後，在兔耳中央有一條粗而鮮艷的中央動脈。左手固定兔耳，右手持注射器，在中央動脈末端向心方向刺入動脈，慢慢回抽針芯，動脈血立即進入針筒，一次可取血15 mL。
（2）耳緣靜脈采血：拔去耳緣部被毛，用燈泡照射加熱耳朵或以75%酒精塗擦局部，使靜脈擴張，再用石蠟油塗擦耳緣，防止血液凝固。耳受熱後用小血管夾夾緊耳根部，用粗號針頭逆靜脈迴流方向刺破靜脈或用刀片切開靜脈，血液可自動流出，一般可采血2～3mL。取血後棉球壓迫止血。
（3）心臟采血：操作同鼠類。兔一次最多采血25mL。
（4）股靜脈、頸靜脈采血：做股靜脈、頸靜脈分離術，然後采血。

2. 簡述犬前肢靜脈采血的過程

犬采血法包括心臟采血、前、後肢皮下靜脈采血、頸靜脈采血、股動脈采血、耳緣靜脈采血。
1．心臟采血

將犬仰卧固定於固定台上，前肢面背測方向固定，暴露胸部，剪去左側第3～5肋間的被毛，做皮膚消毒。取61/2號針頭的注射器在胸骨左緣處1cm第四肋間處進針，並向犬背側方向垂直刺入心腔。穿刺者可隨針頭接觸心臟跳動時的感覺，隨時調整刺入方向和深度，但針頭不能在胸腔內攪動。當針頭正確刺入心臟時，血液即進入注射器，便可抽取多量血液。一般犬的血量為每千克體重80ml血液。

2．前、後肢皮下靜脈采血

取血方法基本同犬後股外側小隱靜脈和前肢內側皮下的頭靜脈注射方法。如需要較多量血時，則可用注射器直接抽取。抽吸速度要慢，否則針口吸著血管內壁，血液不能進入注射器。如只需要採取少量血液，則不必用注射器抽出，只需要用51/2號針頭直接刺入靜脈，如針頭正確刺入靜脈，血液會自動從針孔滴出，用瓷反應碟接住滴下的血液，可做血常規等檢測。

3．頸靜脈采血

犬固定好後(經過訓練的犬不必固定)，取側卧位，剪去頸部被毛10cm×3cm范圍，皮膚消毒。將犬頸部拉直，頭盡量後仰。用左手拇指壓住頸靜脈入胸部位的皮膚，使頸靜脈怒張，右手取連有61/2號針頭的注射器，針頭沿血管平行方向向心端刺入血管。由於此靜脈在皮下容易滑動，針刺時除用左手固定好血管外，刺入要准確。取血後注意壓迫止血。

4．股動脈采血

犬可不麻醉。背卧後固定，伸展後肢向外拉直，暴露腹股溝，在腹股溝三角取動脈搏動的部位剪去被毛，消毒皮膚。左手中指、食指、探摸股動脈跳動部位並固定好血管，右手取連有5號針頭的注射器，針頭由動脈跳動處直接刺入血管，當血液進入注射器內時，即可根據需要量抽取血液。取完血後用干紗布壓迫止血2～3min。

5．耳緣靜脈采血

經訓練的犬不必綁嘴，讓犬跳上采血台，剪去耳尖部短毛，即可見到耳緣靜脈。揉搓耳朵，使靜脈充盈，皮膚塗少許凡士林，用51/2號針頭刺破靜脈，用右手順靜脈走向由頭端向耳尖部輕輕擠壓，血液即由破口流出。取完血後用干棉球壓迫止血。
狗分布於世界各地。它們在群居時，也有「等級制度」，可以保持整個群體的穩定，減少因為食物、生存空間和異性的爭奪而引起的惡斗和戰爭。狗具有領地習性，自己佔有一定范圍，並加以保護，不讓其他動物侵入。狗狗的眼球水晶體比較大，像馬的眼球一樣變形。犬齒全部為短冠形，上頜第一、二門齒齒冠為三峰形，中部是犬尖峰，兩側有小尖峰。在中國文化中，狗屬於十二生肖之一，在十二生肖中的第11位。
狗是由狼馴化而來的。早在狩獵採集時代，人們就已馴養狗為狩獵時的助手。因此，狗算是人類最早馴養的家畜。河北武安磁山、河南新鄭裴李崗、浙江餘姚河姆渡等遺址，都發現了狗骨骼，足證其馴養歷史之久遠。 山東膠縣三里河出土的狗形鬶，造型生動逼真，使我們得見新石器時代家犬的形態特徵。陝西西安半坡遺址出土的狗骨，頭骨較小，額骨突出，肉裂齒小，下頜骨水平邊緣彎曲，與華北狼有很大區別，說明人類馴養狗的歷史確實很早。
沒有人確切知道人與狼第一次互動發生在什麼時候。有科學家認為可能是在5萬年之前，因為至少要花這么久的時間野狼才能發展出如今的基因差異。當時人與野狼分布在地球表面的許多地方，演化過程可能發生在好幾個不同的地區。有些學者則認為狼在14000年前，甚至可能在16000年前的亞洲東南部，就已經被人類從野生狼馴化為家畜、即狗，用來玩、打獵、看家護院。
犬的生物學起源可追溯到幾千萬年前，犬的馴化史大約在一萬五千年前的中石器時代，甚至有科學家從遺傳學的角度論證稱，可能早在距今10萬年前，犬就已被人類馴化。 人類首次破譯犬的基因組是在2005年——甚至比研究人員利用遺傳學工具追蹤犬類最早的家園還要早。早期研究在東亞發現了犬基因的高度多樣性，並在許多鄉村犬群里發現了其他一些關鍵性的標記，他們因此指出東亞地區是犬被人類馴養最早的地方。
飲食
狗是肉食動物，在喂養時，需要在飼料中配製較多的動物蛋白，輔以素食成分，以保證狗的正常發育和健康。狗有時會吃草，但吃得很少，偶爾也吐掉，狗吃草不是為了充飢，而是為了清胃，主要因狗的腸胃結構獨特。狗的胃很大，約占腹腔的2/3，而腸子卻很短，約占腹腔的1/3，所以狗基本上是用胃來消化食物和吸收營養，容易消化肉類食物，不易消化像樹葉、草等有「筋」的東西。雖然犬屬於食肉動物，但生存艱難時犬可以依靠蔬菜和穀物這類食物活下去。典型的野生食肉動物的這類飲食營養來自它們捕獲的食草動物的胃部內容物。另外，科學家發現對諸如在像在阿拉斯加愛迪塔羅德（Iditarod）進行的狗拉雪橇比賽以及其他類似經受極端壓力的情況，高蛋白食物（大量食用肉類）可以幫助它們防止肌肉組織受到損傷。狗喜歡啃咬骨頭。這也是原生態時撕咬獵物所留下的習慣。我們在喂養時要經常給它一些骨頭。（切記：不可用禽骨，那樣可能會刺穿狗的腸胃）。狗普遍存在不同程度的以人類和自身糞便為食的習性。

3. 怎麼給牛采血方法及需要的東西~

牛的采血方法多種多樣,根據不同的狀況採取不同的方法。筆者現將多年來的采血經驗總結如下,供大家在工作中參考。1采樣的一般原則1.1凡是血液凝固不良、鼻孔流血的動物不應采血。1.2采血時做好個人防護,預防人畜共患病感染及牛的踢撞。1.3免疫效果監測時,應在牛免疫21d後隨機採集同群牛血清。1.4疫情監測或流行病學調查時,根據區域內牛場戶數量和分布,按一定比例隨機抽取養殖場戶名單,然後每個牛場戶按預算的感染率計算采樣的數量,隨機採取。1.5用於病毒檢驗樣品,在牛發病初體溫升高期間採集;對於沒有症狀的帶毒牛,一般在進入隔離場後7d內采樣。1.6防止污染環境,防止疫病傳播,做好環境消毒和廢氣物的處理。1.7用於寄生蟲檢驗樣品,因不同的血液寄生蟲在血液中出現的時機及部位各不相同,因此,需要根據各種血液寄生蟲的特點,在相應時機取相應部位的血,製成血塗片,送實驗室。2采血的物品准備采樣箱、9號針頭、塑料試管、5ml注射器、離心管、酒精棉球、干棉球、牛鼻鉗子或繩子、不幹膠標簽、簽字筆、記號筆、采樣單、乳膠手套、線手套、防護服、防護帽、一次性手套、一次性鞋帽、試管架、易封口樣

4. 動物抽血抽什麼部位

大型動物，如牛馬可以抽頸下靜脈血，雞鴨可以抽翅膀下血管

5. 求助：大鼠舌下靜脈取血失敗，原因是什麼

目的探討一種可以多次,大量,比較安全的大鼠采血的方法.方法大鼠乙醚 麻醉後,用真空采血管舌 下靜脈取血.結果舌下靜脈取血可以採到 2～3ml 左右的血.結論舌下靜脈取血為 大鼠的首選采血方式. 【關鍵詞】大鼠g-T 靜脈采血 為了滿足試驗的要求,經常對大鼠進行多次采血, 且要求對大鼠本身損傷要小,每次抽血的量還要足夠. 根據這個要求現介紹一種新的大鼠采血方法——舌下 靜脈采血.筆者通過這種方法對300 只大鼠進行了多 次采血.發現這種方法可以滿足在大鼠實驗中多次,取 血量大且對大鼠的影響比較小.現報告如下. 材料與步驟1.1 准備器械蒸發皿(直徑20cm),止血鉗兩把,乙 醚,大鼠固定板,采血管,采血針,棉球. 1.2 實驗動物遠交群(SD)大鼠300 只,雄性,體質 量300g 左右. 1.3 步驟 1.3.1 麻醉先用棉球蘸取乙醚放入蒸發皿中,再把 大鼠投入蒸發皿中,蓋嚴皿蓋. 1.3.2 取血大約3～5min 大鼠被麻醉,取大鼠仰卧, 將四肢及上齒固定於大鼠板上.助手兩手各持一把止 血鉗,左手持止血鉗夾住大鼠的下齒並上提,使舌漏出, 右手持止血鉗夾住鼠舌並拉出.這時操作者可以清楚 地看到大鼠舌下的兩條舌下靜脈,持采血針與舌面呈 l0.夾角插入舌下靜脈,見有回血時把采血針的另一端 插入采血管.血液因負壓的抽吸作用快速地被抽人管 內.取血的多少可以根據實驗的要求來定.一般可取 2～3ml,據筆者觀察此量對大鼠影響不大. 1.3.3 止血將針頭拔出後用棉簽壓住進針處,助手 松開止血鉗,按壓片刻,把大鼠取下. 注意事項要求采血環境光線充足,室溫不能太低,一般高於 20.,如果室溫太低,大鼠舌下靜脈收縮,勢必造成進針 困難;麻醉深度要適宜,一般大鼠跌倒且眼睛半睜半閉 時效果最好.麻醉過淺時大鼠在采血過程中易蘇醒,固 定鼠舌困難,采血針易穿出靜脈;麻醉過深時特別是有 基礎疾病的大鼠易死亡.夾持鼠舌的止血鉗應是無齒 鉗或在有齒鉗上套一節軟塑料管,這樣可以減少對鼠舌 的損傷;為避免穿刺部位大量出血,進針的部位可以選 擇舌下靜脈旁開1mm 的位置,然後再調整方向插入舌 下靜脈. 討論現今常用的大鼠取血方法有尾部取血,心臟取血, 內眥取血,斷頭取血,腹主動脈取血等J.但這些取 血方法都存在一定的弊端,特別是在實驗中對大鼠要求 安全大量反復取血時,這些方法就難以滿足實驗的要 求.其中鼠尾采血量較少,僅適用於做白細胞計數或血 紅蛋白檢查,對於血清指標的檢測則不適用].心臟采 血時,如果操作熟練可以多次取血,但從大鼠心臟取血 要觸摸到心跳明顯處進針,其難點是大鼠心臟小,心搏 快,進針准確部位及深淺不易掌握J,易造成心包積血 而至大鼠死亡.斷頭采血法雖能取到較多的血量,但極 易被污染,按此法獲取的血液中大多混有少量組織液和 被毛,可能影響實驗檢測結果,最大的缺陷是只能取一 次血.內眥取血則取血量與操作者技術熟練程度有關, 取血量不易控制,多次采血後容易感染.本方法便可彌 補以上幾種方法的不足,通過對300 只大鼠反復的采血 發現該方法的具有以下優點:對大鼠損傷小,操作結 束大鼠便清醒,即可進食飲水.除采血後鼠舌稍有水腫 外無其他損傷.這樣可以減少採血對試驗本身的影響. 可以反復采血,筆者發現抽血後大鼠的舌下靜脈在很 短的時間內便可修復.抽血量較大,一般一次可以抽 到2～3ml 的血液,筆者曾試驗最多可以抽到7rrIl,大鼠 仍可存活.所採的標本不受污染.通過這個試驗我 們認為,只要按要領操作,該法取血較方便簡單,易完 成,可以滿足試驗取血的要求.舌下靜脈取血應為大鼠 采血的首選方法,值得推廣. 參考文獻 [1]VanHH,BaumansV,BrandtCJ,eta1.OrbitalsinusBloodamplingin :theinfluenceofech- niqueandexpertise[J].LaboratoryAnimals,

6. 動物采血常用哪幾種方法

我根據自己的經驗給你回答一點，可能不全，但常用的應該就是這幾種。
對小白鼠來說最常用的方法是眼眶取血，即用毛細管刺入小鼠眼眶。由於眼球下有大量毛細血管，而且眼附近毛較少，這樣可以取得較多的比較干凈的血液，而且一隻眼睛沒做好還可以用另一隻，小白鼠不會很快死亡，有需要的話還可以做點別的實驗，但這種方法的采血量有限，一般一次就幾毫升而且如果做的不是很好的話，血液很容易凝固而且可能搞得小鼠「面目全非」。
第二種方法是尾部采血，即用剪刀剪斷小鼠的尾巴采血，這種方法沒我怎麼用過，對其不好做評價。
第三種方法是斷頭采血，用這種方法最大的優點是采血量大而快速，血液不易凝固，但這樣的話，小鼠再就不能做別的了，當然有可能的話我們可以在做完別的操作後再來做這個。
不同的動物有不同的采血方法，如對兔子來說我們可以用耳緣靜脈采血、心臟采血的方法，但對小鼠來說主要的應該就是上面說的三種了。

7. 動物學實驗的實驗動物常見的處理方法

一、編號
實驗動物常需要標記以示區別。編號的方法很多，根據動物的種類數量和觀察時間長短等因素來選擇合適的標記方法。
(一)掛牌法：將號碼烙壓在圓形或方形金屬牌上(最好用鋁或不銹鋼的,它可長期使用不生銹),或將號碼按實驗分組編號烙在栓動物頸部的皮帶上，將此頸圈固定在動物頸部。該法適用於狗等大型動物。
(二)打號法：用刺數鉗(又稱耳號鉗)將號碼打在動物耳朵上。打號前用蘸有酒精的棉球擦凈耳朵，用耳號鉗刺上號碼，然後在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。該法適用於耳朵比較大的兔、狗等動物。
(三)針刺法：用七號或八號針頭蘸取少量碳素墨水，在耳部、前後肢以及尾部等處刺入皮下，在受刺部位留有一黑色標記。該法適用於大小鼠、豚鼠等。在實驗動物數量少的情況下，也可用於兔、狗等動物。
(四)化學葯品塗染動物被毛法：經常應用的塗染化學葯品有
塗染紅色：0.5%中性紅或品紅溶液
塗染黃色：3-5%苦味酸溶液
塗染黑色：煤焦油的酒精溶液
根據實驗分組編號的需要，可用一種化學葯品塗染實驗動物動物背部被毛就可以。如果實驗動物數量較多，則可以選擇兩種染料。該方法對於實驗周期短的實驗動物較合適，時間長了染料易退掉；對於哺乳期的子畜也不適合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五)剪毛法：該法適用於大、中型動物，如狗、兔等。方法是用剪毛刀在動物一側或背部剪出號碼，此法編號清楚可靠，但只適於短期觀察。
(六)打孔或剪缺口法：可用打孔機在兔耳一定位置打一小孔來表示一定的號碼。如用剪子剪缺口,應在剪後用滑石粉捻一下,以免癒合後看不出來。該法可以編至1～ 9999號，此種方法常在飼養大量動物時作為終身號採用。
二、分組
(一)分組的原則：進行動物實驗時，經常需要將選擇好的實驗動物按研究的需要分成若干組。動物分組應按隨機分配的原則，使每隻動物都有同等機會被分配到各個實驗組與對照組中去，以避免各組之間的差別,影響實驗結果，特別是進行准確的統計檢驗,必須在隨機分組的基礎上進行。
每組動物數量應按實驗周期長短、實驗類型及統計學要求而定。如果是慢性實驗或需要定期處死動物進行檢驗的實驗，就要求選較多的動物，以補足動物自然死亡和認為處死所喪失的數量，確保實驗結束時有合乎統計學要求的動物數量存在。
(二)建立對照組：分組時應建立對照組。1.自身對照組：是指實驗數據而言。實驗動物本身在實驗處理前、後兩個階段的各項相關數據就分別是對照組和實驗組的實驗結果，此法可排除生物間的個體差異。2.平行對照組：有正對照組和負對照組兩種。給實驗組動物某種處理，而給正對照組用同樣方法進行處理，但並不採用實驗所要求的葯物或手段，負對照組則不給任何處理。3.具體分組時，應避免人為因素, 隨機把所有的動物進行編號，然後令其雙數為A組(實驗組),單數為B組(對照組)即可或反之。如果要分若干個組時，應該用隨機數字表示進行完全隨機分組。 一、實驗動物的除毛
在動物實驗中，被毛有時會影響實驗操作與觀察，因此必須除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脫毛等。
(一)剪毛法：剪毛法是將動物固定後，先用蘸有水的紗布把被毛浸濕，再用剪毛剪刀緊貼皮膚剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮膚。剪下的毛應集中放在一容器內，防止到處飛揚。給狗、羊等動物采血或新生乳牛放血制備血清常用此法。
(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳緣靜脈注射或尾靜脈注射時常用此法。
(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去動物被毛的方法。如動物被毛較長，先要用剪刀將其剪短，再用刷子蘸溫肥皂水將剃毛部位浸透，然後再用剃毛刀除毛。本法適用於暴露外科手術區。
(四)脫毛法：脫毛法是用化學葯品脫去動物被毛的方法。首先將被毛剪短，然後用棉球蘸取脫毛劑，在所需部位塗一薄層，2～3分鍾後用溫水洗去脫落的被毛，用紗布擦乾，再塗一層油脂即可。
適用於狗等大動物的脫毛劑配方為：硫化鈉10g，生石灰15g，溶於100ml水中。
適用於兔、鼠等動物的脫毛劑的配方為：1. 硫化鈉3g,肥皂粉1g,澱粉7g,加適量水調成糊狀；2. 硫化鈉8g,澱粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3. 硫化鈉8g溶於100ml水中。
二、實驗動物的給葯
在動物實驗中，為了觀察葯物對機體功能、代謝及形態引起的變化，常需要將葯物注入動物體內。給葯的途徑和方法多種多樣，可根據實驗目的、實驗動物種類和葯物劑型、劑量等情況確定。
(一)注射給葯法
1. 皮下注射注射時用左手拇指及食指輕輕捏起皮膚，右手持注射器將針頭刺入,固定後即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在後大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外側注射，拔針時，輕按針孔片刻，防葯液逸出。
2. 皮內注射此法用於觀察皮膚血管的通透性變化或觀察皮內反應。 如將一定量的放射性同位素溶液、顏料或致炎物質、葯物等注入皮內，觀察其消失速度和局部血液循環變化，作為皮膚血管通透性觀察指標之一。方法是：將動物注射部位的毛剪去，消毒後，用皮試針頭緊貼皮膚皮層刺入皮內，然後使針頭向上挑起並再稍刺入，即可注射葯液。注射後可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射當給動物注射不溶於水而混懸於油或其他溶劑中的葯物時,常採用肌肉注射。肌肉注射一般選用肌肉發達、無大血管經過的部位，多選臀部。注射時針頭要垂直快速刺入肌肉，如無回血現象即可注射。給大、小鼠作肌肉注射時，選大腿外側肌肉進行注射。
4. 腹腔注射先將動物固定,腹部用酒精棉球擦試消毒，然後在左或右側腹部將針頭刺入皮下，沿皮下向前推進約0.5厘米，再使針頭與皮膚呈45 度角方向穿過腹肌刺入腹腔，此時有落空感，回抽無腸液、尿液後，緩緩推入葯液。此法大小鼠用的較多。
5. 靜脈注射是將葯液直接注射於靜脈管內，使其隨著血液分布全身,迅速奏效。但排泄較快，作用時間較短。
6. 淋巴囊注射蛙類常採用此法,其皮下有數個淋巴囊，注入葯物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭部淋巴囊常作為蛙類給葯途徑。一般多選用腹部淋巴囊給葯。注射時將針頭從蛙大腿上端刺入，經大腿肌層入腹壁肌層，再進入腹壁皮下，即進入淋巴囊，然後注入葯液。
(二)經口給葯法
1. 口服法：把葯物放入飼料或溶於飲水中讓動物自動攝取。此法優點在於簡單方便，缺點是不能保證劑量准確。一般適用於對動物疾病的防治或某些葯物的毒性實驗，製造某些與食物有關的人類疾病動物模型。
2. 灌胃法：在急性實驗中,多採用灌胃法。此法劑量准確。灌胃法是用灌胃器將所應投給動物的葯灌到動物胃內。灌胃器由注射器和特殊的灌胃針構成。小鼠的灌胃針長約4～5cm，直徑為1mm，大鼠的灌胃針長約6～8cm，直徑約1.2mm。灌胃針的尖端焊有一小圓金屬球，金屬球為中空的。焊金屬球的目的是防止針頭刺入氣管或損傷消化道。針頭金屬球端彎曲成20°左右的角度，以適應口腔、食道的生理彎曲度走向。
(三)其它途徑給葯方法
1. 呼吸道給葯：呈粉塵、氣體及蒸氣或霧等狀態的葯物或毒氣,均需要通過動物呼吸道給葯。如實驗時給動物乙醚作吸入麻醉、用鋸末煙霧製作慢性氣管炎動物模型等，特別在毒理學實驗中應用更為廣泛。
2. 皮膚給葯：為了鑒定葯物或毒物經皮膚的吸收作用、局部作用、 致敏作用和光感作用等，均需採用經皮膚給葯方法。如兔和豚鼠常採用背部一定面積的皮膚脫毛後，將一定的葯液塗在皮膚上，葯液經皮膚吸收。
3. 脊髓腔內給葯：此法主要用於錐管麻醉或抽取腦脊液。
4. 腦內給葯：此法常用於微生物學動物實驗,將病原體等接種於被檢動物腦內，然後觀察接種後的各種變化。
5. 直腸內給葯：此種方法常用於動物麻醉。兔直腸內給葯時,常採用灌腸的膠皮管或用14號導尿管代替。
6. 關節腔內給葯：此法常用於關節炎的動物模型復制。