A. 實驗小白鼠2怎麼生產血清
同一隻小鼠需要多次采血
由於小鼠體重限制，一次取血後需要一定的恢復期以保證下次血液樣本的質量，嚴格遵守動物福利也是操作者的基本要求。小鼠的總血量一般是占體重的6-7%，一次性取血10%不會引起造血系統過度活化及血液成分的重建。（例：若20克小鼠，它的總血量約佔1.2-1.4毫升，即每次取120ul-140ul血液不會對小鼠有太大的影響）。
小鼠只需采單次采血
但如果想取小鼠的全血，一般能取體重的4%已經很不錯了。具體的參考計算：小鼠體重*6-7%（血液占體重百分比）*70%（循環血量佔全部血盯鏈量百分比）*90%（可以取到的循環血量比例）
常用的采血的方法
眼眶後靜脈叢采血
（大鼠 0. 4~0. 6 mL,小鼠 0. 2~0. 3 mL）取內徑為1.0-1.5mm的玻璃毛細管，臨用前折斷成2～2.5cm長的毛細管段，浸入1％肝素溶液中，乾燥後用。取血時左手抓住鼠兩耳之間的頸背部皮膚以固定頭部，輕輕向下壓迫頸部兩側，引起頭部靜脈血液迴流困難使眼眶靜脈叢充血，右手持毛細管由內眥部插入結膜，再輕輕向眼底部方向推進，輕輕旋轉毛細管以劃破靜脈叢，讓血液順毛細管流出，接收入事先准備的容器中。采血後紗布輕壓眼部止血。
摘眼球采血
此法常用於鼠類大量采血。采血時,用左手固定動物,壓迫眼球，盡量使眼球突出，右手用鑷子或止血鉗迅速摘除眼球，眼眶內很快流出血液。
尾尖采血
（小鼠可每次采血約0.1ml，大鼠約0.4ml）剪斷尾巴進行取血。注意，剪下來一點就可以，小鼠1-2mm，大鼠3-5mm，流出血液基則轎收集即可。過程中可以捋尾巴。血液可以用於塗片，試紙檢測血糖等。
心臟采血
（大鼠 1~1. 5 mL,小鼠 0. 5~0. 8 mL）心臟采血為無菌采血，采血量大，此方法需在麻醉狀態下進行，操作時，選擇胸部左側心臟博動最強處進針，緩慢回抽針筒可見血液流入針管。
後肢隱靜脈采血
隱靜脈采血常用於大小鼠的少量血液採集,單次采血的搏肆安全采血量為動物體重的0. 5%,間隔一天多次采血采血量為動物體重的0. 05%,隱靜脈采血無需麻醉,待動物固定後,後腿外側區域剃毛後暴露采血點,采血針刺入采血點,即可獲得血液樣本。圖片為隱靜脈的位置。
斷頭采血
左手拇指和食指從背部抓住鼠頸部皮膚，將鼠頭朝下，右手用剪刀剪斷鼠頸部約1/2-4/5，讓血液流入試管。但有由於過於血腥加上動物福利的原因，此方法不建議使用。
血清及血漿的制備
血清分離
經上述的方法取得血液後，在EP管中室溫靜置一小時以上（或37°水浴1小時，4°冰箱靜置2小時或者過夜）以3000rpm離心10分鍾，上清即為血清。可在-80°保存
B. 小白鼠采血三種方法的優缺點，謝謝！
1.采血部位：眼眶采血
采血方法：將鼠固定在實驗台邊緣，左手抓緊鼠頸部皮膚固定頭部，並輕輕向下壓迫頸兩側，使眼球充血。用事先准備好的10號金屬針頭頂端(針尖斜面朝內)垂直插入內眥並向眼底方向轉動以便切開靜脈叢，血液便會連續不斷地滴入采血管。用此法大約可取3~5mL血液。取血完畢，立刻用脫脂棉壓迫止血。坦稿
優點：眼眶後靜脈叢采血法方法簡單，便於掌握。血流較快，采血量多，能在較短時間內採到3~5mL血。傷口較小，癒合較快。成功率高，死亡率低。
缺點：不能避免組織液的混入，對於血樣要求較高的研究應謹慎使用。另外，多次使用易引起大鼠的感染。對後續試驗結果存在一定影響。
2.摘眼采血：鼠可以眼球取血，需要多多練習。一般來說，可以三人配合取血。取血前不需麻醉，用眼科剪剪掉大鼠的胡須（胡須過長，血液滴下的時候容易沾在胡須上，既浪費，又造成溶血，故應剪掉）。
所需器械：眼科小剪、眼科彎鑷、止血鉗。
一人抓大鼠並用眼科彎鑷摘眼球，一人用止血鉗夾住大鼠的嘴部以固定大鼠頭部，另一個人拿試管接血。
大鼠在掙扎過程中，很容易導致血液丟失，因此固定頭部很重要，否則只有眼看著血液亂飛，卻不入試管。摘眼球也需要技巧，否則眼球摘下來了，而血液卻不流出來，應多多練習
優缺點不太清楚啊，只知道我一個學長摘眼球的時候被咬了一口，挺殘忍的
3.采血部位：心臟取血（其實這個一般用在家兔）
采血方法：將實驗動物做仰卧有助手固定，術者在其左前肢腋下處剪毛及消毒。在胸部心臟跳動最明顯處，用一寸長的12好針頭直刺心臟，感到以針頭跳動或有血液內流動時。即可抽血。一次可采血15-20ml
優點：抽血快，血液不易凝集，心區面積大, 進針准確性較高, 易一針見血, 且采血量能滿足大量試驗需要
缺點：心臟損傷較大，難以迅速癒合，不利於短期連續采血。
3『.采血部位：心臟采血（剪開皮膚）
采血方法：從胸部正中剪開皮膚2.0~2.5cm。暴露肋骨和肌肉。左手拇指和食指從胸廓兩則擠壓，以確定心臟的位置，此時可觸摸到心尖的搏動。然後拇指松開，右手持注射器（7號針頭），在胸骨左側（對操作者來說是右側），離胸骨0.5cm的第三肋和第四肋之間進針，並使針頭與肋骨側成90°左右的夾角。進針的深度為2cm左右（根據動物大小而定）。進針時用左手拇指和食指夾住心臟博動的位置，使之固定，進針要快。若針頭清游進入心室，由於壓力的原因血液會自動進入針管，抽起來很容易。若進針過深，就一邊回退一邊抽。若進針過淺，可感覺到針頭隨心臟的博動而搖動，這時可再進深一些。
優點：采血量大，樣本質量可靠。
缺點 ：不能保證完全是動脈血，因進針的方向或操作問題亦可采出靜脈血。另外，應用本采血方法後，有部分鼠可造成死亡，因此不適合對動靜脈血有嚴格要求的實驗研究，亦不適用於試驗中間過讓正孝程的采樣。
C. 小鼠眼球采血和眼眶采血是一樣的嗎
一樣的，
我根據自己的經驗給你回答一點，可能不全，但常用的應該就是這幾種。
對小白鼠來說最常用的方法是眼眶取血，即用毛細管刺入小鼠眼眶。由於眼球下有大量毛細血管首仿逗，而且眼附近毛較少，這樣可以取得較多的比較干凈的血液，而且一隻眼睛沒做好還可以用另一隻，小白鼠不會很快死亡，有需要的話還可以做點別的實驗，但這種方法的采血量有限，一般一次就幾毫升而且如果做的不是很好的話，血液很容易凝固而且可能搞得小鼠「面目全非」。
第二種方法是尾部采血，即用剪刀剪斷小鼠的尾巴采血，這種方法沒我怎麼用過，對其不好做評價。
第三種方法是斷頭采血，用這種方法最大者賣的優點是采血量大而快速，血液不易凝固，但這樣的話，小鼠再就不能做別的了，當然有可能的話我們可以在做完別的操作後再來做這個。
不大穗同的動物有不同的采血方法，如對兔子來說我們可以用耳緣靜脈采血、心臟采血的方法，但對小鼠來說主要的應該就是上面說的三種了。
D. 如何給鸚鵡抽血
脈和心臟采血法，前者所采血量一般能夠滿足檢測所需要的量，後一種方法的技術要求比較高，因此禽類翼下靜脈采血法是一種比較常用的采血方法。禽類翼下靜脈采血：
1.由助手將禽固定好，並使禽翅膀展開，露出腋褲含窩部，拔去該部羽毛，即可見到由翼根進入腋窩的一條較粗的靜脈，這就是翼根靜脈。其遠心端有一條較細的靜脈，即翼下靜脈。消毒後，術者用左手拇指壓迫翼下靜脈的近心端，使血管怒張，右手持帶6號或7號針頭的采血器，由翼根的肌肉處進針，向翅膀方向斜向刺入翼下靜脈，即可抽取血液。
2.抽胡絕笑血時，一定要緩慢、輕柔，否則會使靜脈癟陷而采不出來。采血完畢，拔出采血針，采血部位以酒精棉按壓片刻即可，由於肌肉自身的收縮壓迫止血，一般不會出血或者是形成出血性水腫。
此種方法克服了傳統由皮膚直接刺向血管，拔出針頭後一般都會出血或形成宏孝皮下出
E. 動物抽血抽什麼部位
大型動物，如牛馬可以抽頸下靜脈血，雞鴨可以抽翅膀下血管
F. 怎麼給牛采血方法及需要的東西~
牛的采血方法多種多樣,根據不同的狀況採取不同的方法。筆者現將多年來的采血經驗總結如下,供大家在工作中參考。1采樣的一般原則1.1凡是血液凝固不良、鼻孔流血的動物不應采血。1.2采血時做好個人防護,預防人畜共患病感染及牛的踢撞。1.3免疫效果監測時,應在牛免疫21d後隨機採集同群牛血清。1.4疫情監測或流行病學調查時,根據區域內牛場戶數量和分布,按一定比例隨機抽取養殖場戶名單,然後每個牛場戶按預算的感染率計算采樣的數量,隨機採取。1.5用於病毒檢驗樣品,在牛發病初體溫升高期間採集;對於沒有症狀的帶毒牛,一般在進入隔離場後7d內采樣。1.6防止污染環境,防止疫病傳播,做好環境消毒和廢氣物的處理。1.7用於寄生蟲檢驗樣品,因不同的血液寄生蟲在血液中出現的時機及部位各不相同,因此,需要根據各種血液寄生蟲的特點,在相應時機取相應部位的血,製成血塗片,送實驗室。2采血的物品准備采樣箱、9號針頭、塑料試管、5ml注射器、離心管、酒精棉球、干棉球、牛鼻鉗子或繩子、不幹膠標簽、簽字筆、記號筆、采樣單、乳膠手套、線手套、防護服、防護帽、一次性手套、一次性鞋帽、試管架、易封口樣
G. 生物 實驗動物非洲爪蟾如何取血要不殺死，可重復取血的方法
一般青蛙蟾拿薯蜍類少量采血都是腹壁靜脈采血，當然本人認為心臟采血也可以。但是活體不損傷采血有點困難，腹壁靜脈需要開腹腔。體外心臟采血的話對慎指試驗手法要求比較高。
實消孝者驗器材和葯品
手術剪、鑷子、蛙板、探針、蛙釘1 mL注射器
實驗方法
1破壞蟾蜍腦和脊髓用探針從蛙枕骨大孔進
入,搗毀腦和脊髓,使骨骼肌鬆弛。
2固定蟾蜍將蟾蜍仰卧在蛙板上。用蛙釘固
定蛙體四肢,打開其胸腔和心包膜,暴露心臟。
3 采血 用注射器向心方向插入腹壁靜脈進行采血
H. 對實驗動物采血的要求
1.小鼠和大鼠采血
（1）眼眶取血：將小鼠抓牢固定，用拇指和食指將眼部皮膚扒開，使眼球充分突出，眼窩內眥處為眼靜脈竇。將毛細管由此刺入，捻轉，輕輕外提，使血液充滿毛細管，采血後用一塊干紗布將眼合上數分鍾以止血。小鼠每次采血0.2～0.3mL，大鼠為0.5～1.0mL。
（2）剪尾采血：固定動物，將尾尖剪掉1～2mm（小鼠）或5～10mm（大鼠），然後自尾根部向尖部按摩，血即自尾尖流出。如需較多血也可先將尾浸於近50℃的熱水中，再剪去尾尖。采血後用膠布包紮尾尖進行壓迫止血。由於鼠血凝集快，需要全血應事先置抗凝劑於采血管中，如用血球懸液，應立即與生理鹽水混合。小鼠可取血0.1mL，大鼠可取0.3～0.5mL。
（3）斷頭取血：斷頭時，左手抓鼠，右手持剪刀於頸部迅速剪掉鼠頭，立即將鼠頸向下，血液即可流入已准備好的容器中
（4）腹主動脈采血：將動物麻醉，仰卧固定，從腹中線切開皮膚，暴露腹主動脈，用注射器抽取血液。
（5）股動（靜）脈采血：將動物麻醉固定後，進行一側腹股溝動、靜脈分離手術，血管下方分別穿一根絲線，左手提起血管，右手持注射器將針平行刺入血管內取血。
（6）心臟采血：動物麻醉後，仰卧固定於鼠板上，在左胸側第三、四肋間，用左手食指觸摸到心搏動處，右手持注射器垂直刺入心臟，抽取所需血量。小鼠取0.5～0.6mL，大鼠取0.8～1.2mL。
2.家兔采血
（1）耳中央動脈采血：將兔固定後，在兔耳中央有一條粗而鮮艷的中央動脈。左手固定兔耳，右手持注射器，在中央動脈末端向心方向刺入動脈，慢慢回抽針芯，動脈血立即進入針筒，一次可取血15 mL。
（2）耳緣靜脈采血：拔去耳緣部被毛，用燈泡照射加熱耳朵或以75%酒精塗擦局部，使靜脈擴張，再用石蠟油塗擦耳緣，防止血液凝固。耳受熱後用小血管夾夾緊耳根部，用粗號針頭逆靜脈迴流方向刺破靜脈或用刀片切開靜脈，血液可自動流出，一般可采血2～3mL。取血後棉球壓迫止血。
（3）心臟采血：操作同鼠類。兔一次最多采血25mL。
（4）股靜脈、頸靜脈采血：做股靜脈、頸靜脈分離術，然後采血。