① 小鼠的基本實驗操作
一、實驗目的： 通過實際操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、標記、給葯（灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾靜脈注射）、取血（眶後靜脈叢，摘眼球）、脊椎脫臼法處死、大體解剖。
二、實驗動物： 昆明小鼠2隻（1雌1雄）
三、實驗步驟
1、抓取和固定，標記
2、去毛
3、給葯：消化道、腹腔往射、尾靜脈注射
4、取血：眼眶後靜脈叢、尾靜脈、眼球摘除法、斷頭法
5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉
6、處死：脊椎脫臼法
7、解剖：
雄性：睾丸、附睾、輸精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，膠質狀，透明）
雌性：雙角子宮、卵巢
腎上腺、膽囊、甲狀腺、胃、肝臟、脾、肺、腎、心臟、甲狀腺
四、實驗結果
1、抓取和固定標記：
抓取：抓小鼠的尾根部
固定：抓住小鼠的尾根部，讓小鼠在粗糙平面上爬行，後拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠兩耳及其間的頸部皮膚，小指和無名指將尾巴固定在手掌面。
2、灌胃法：左手抓取小鼠固定後，右手持特製灌胃針，沿一側口角進針，緊貼咽後壁，頭後仰以便伸直消化道，進針2/3後灌生理鹽水0.5ml
3、注射給葯：
腹腔注射：
從下腹部的兩側進針，進針時針與腹部成45°。進針後稍微晃動針，如無粘滯感則可注射葯物。
尾靜脈注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指將尾拉直，食指托住尾部在尾動脈位置進針注射0.5ml生理鹽水。注射完畢拔出針頭，用無菌棉球壓迫止血。
4、采血
從眼角內側0.5cm處進針
眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠，右手持彎頭鑷在眼球根部將眼球摘除，頭朝下，眼眶內血迅速流出。
5、麻醉：
0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的葯量給葯，2分鍾麻醉成功
6、處死：
脊椎脫臼法：按住頭部，將尾根部向後上方以短促的力量拉即可致死
7、解剖：
雄性：尋找到睾丸、附睾、輸精管、鼠蹊腺
雌性：雙角子宮、卵巢3.7.2腎上腺：米粒大小
胰腺：位於胃下方，類似於脂肪組織，渾濁狀3.7.4， 膽囊：芝麻大小，淺綠色，半透明，甲狀腺：緊貼環狀軟骨，另可解剖出胃、肝臟、脾、肺、腎、心臟。
五、實驗討論
1、小鼠抓取的感受：
小鼠性情較溫順，一般不會咬人，比較容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴將其放在鼠籠蓋或其它粗糙表面上，在小鼠向前掙扎爬行時，用左手拇指和食指捏住其雙耳及頸部皮膚，將小鼠置於左手掌心、無名指和小指夾其背部皮膚和尾部，即可將小鼠完全固定。如要進行手術或心臟采血應先行麻醉再操作，如進行解剖實驗則必須先行無痛處死後再進行。
2、小鼠尾靜脈注射感受：
首先，注射前尾巴用稍熱的水浸泡幾分鍾，有利於注射；其次，先遠後盡，不要一開始就從尾根部，那樣失敗了不好辦；再次，進血管後注意保持穩定，針尖很容易刺穿血管的。尾靜脈就在尾巴的正左右兩邊，先用酒精用力擦，可以去掉部分角質，然後按住近心端讓充血，就很容易看到了。進針大概1~2厘米是最合適的。
尾靜脈注射時，可用45~50度的溫水浸潤半分鍾或用酒精擦拭，可使血管擴張，同時也可軟化表皮角質。以左手拇指和食指夾住鼠尾，使靜脈充盈，中指幫助無名指和小指捏住鼠尾末梢，右手持注射器（連5號細針頭），針頭與靜脈夾角一般小於30度，從距尾尖2 - 3厘米處進針，此處皮薄易進入，先抽回血，見到血後再緩慢注入少量葯液，如無阻力，表示針頭已進入靜脈，可繼續往入。一般推注速度為0.05 - 0.10m秒，一次注入量為0.05 - 0.25ml/10g體重。如反復注入，應盡可能從尾末端開始，以後向尾根部方向移動注射。
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