『壹』 葉綠體色素用什麼方法可以提取與分離
葉綠體中含有綠色素（包括葉綠素a和葉綠素b）和黃色素（包括胡蘿卜素和葉黃素）兩大類。它們與類囊體膜上的蛋白質相結合，而成為色素蛋白復合體，這兩類色素都不溶於水，而溶於有機溶劑，故可用乙醇或丙酮等有機溶劑提取。提取液可用色層分析的原理加以分離。因吸附劑對不同物質的吸附力不同，當用適當的溶劑推動時，混合物中各成分在兩相（流動相和固定相）間具有不同的分配系數，所以它們的移動速度不同，經過一定時間層析後，便將混合色素分離。
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『貳』 為什麼要用到酒精洗葉綠體
:因為葉片經過酒精加溫後葉綠體將會死亡，葉綠體就會停止分泌葉綠素.因為葉片進行了光合作用，滴碘液的時候，葉片顏色會變藍。如果不將葉片做褪色處理，那麼碘液的藍色將不那麼明顯。葉片會變成黃色.
『叄』 葉綠體分離的實驗原理是什麼在分離葉綠體時應注意些什麼問題
將植物組織勻漿後懸浮在等滲介質中進行差速離心，是分離細胞器的常用方法。一個顆粒在離心場中的沉降速率取決於顆粒的大小、形狀、稠密度，也與離心力以及懸浮介質的粘度有關。在一給定的離心場中，同一時間內，密度和大小不同的顆粒其沉降速率不同。依次增加離心力和離心時間，就能夠使非均一懸浮液中的顆粒按其大小、密度先後分批沉降在離心管底部，分批收集即可獲得各種亞細胞組分。
然後在3000 r/min的條件下離心5min，即可獲得沉澱的葉綠體(混有部分細胞核)。分離過程最好在0～4℃的條件下進行；如果在室溫下，要迅速分離和觀察。
『肆』 分離葉綠體中常用的方法是
（1）分離葉綠體中的色素常用的方法是紙層析法．由於胡蘿卜素易溶於有機溶劑，因此常用有機溶劑來萃取胡蘿卜素．
（2）獲得純凈培養物的關鍵是防止外來雜菌的入侵．常用的對培養皿進行滅菌的方法是乾熱滅菌法．
（3）微生物的鑒定常用鑒別培養基，在尿素為唯一氮源的培養基中加入酚紅指示劑．
（4）純化菌種和統計某活菌的數目時，計數方法一般有稀釋塗布平板法和顯微鏡直接計數法．用稀釋塗布平板法進行微生物計數時，由於所產生的菌落可能是由兩個或多個細胞形成的，所以統計的菌落數往往比活菌的實際數目偏少．
故答案為：
（1）紙層析法 萃取
（2）防止外來雜菌的入侵 乾熱滅菌法
（3）以尿素為唯一氮源的 酚紅
（4）稀釋塗布平板法 當兩個或多個細胞連在一起時，平板上觀察到的只是一個菌落
『伍』 昆蟲腸道微生物 怎樣分離葉綠體
葉綠體的分離
【原理】
研磨葉片得到的勻漿，經過濾、離心可制備葉綠體。葉綠體的被膜比較脆弱，分離葉綠體應在等滲的緩沖溶液中，0~4℃溫度下進行。葉綠體活力會隨著離體時間延長而不斷下降，因此，分離工作盡可能在短時間內完成。
【儀器與用具】
冰箱；離心機；扭力天平；顯微鏡；pH計；研缽；量筒；移液管；離心管；脫脂紗布等。分離器皿都須在0℃下預冷。
【試劑】
①分離介質
含0.33mol/L 山梨醇，50mmol/L Tris-HCl（或Tricine） pH7.6，5mmol/L MgCl2，10mmol/L NaCl，2mmol/L EDTA，2mmol/L 異抗壞血酸鈉。
配法：稱60g山梨醇、6.06g Tris、1g MgCl2·6H2O、0.6g NaCl、0.77g EDTA-Na2、0.4g異抗壞血酸鈉，溶解後用1mol/L HCl調pH至7.6，定容至1000ml。
②懸浮和測定介質Ⅰ
0.66mol/L 山梨醇，2mmol/L MgCl2， 2mmol/L MnCl2，4mmol/L EDTA，10mmol/L焦磷酸鈉，100mmol/L Tris-HCl pH7.6。
配法：稱60g山梨醇、0.2g MgCl2·6H2O、0.2g MnCl2·4H2O、0.75g EDTANa2、2.23g Na4P2O7·10H2O、6.06g Tris，溶解後用1mol/L HCl調pH至7.6，定容至500ml。
③懸浮和測定介質Ⅱ：測定介質Ⅰ稀釋1倍。
【方法】
1. 選用生長健壯，最好是連續幾個晴天下生長的菠菜葉片，洗凈後去除中脈，放入0~4℃冰箱或冰瓶中預冷。
2. 分離介質30~50ml，置於研缽中，並在冰箱中預冷至現薄冰。
3. 取冷卻的菠菜葉片10~20g，撕碎後放入研缽，用手工快速研磨0.30~1min，注意不要用力過猛，也不必研磨過細，以葉片磨成小塊時即可，研磨後將勻漿用兩層新紗布過濾。
4. 將濾液裝入預冷過的二個離心管，經天平平衡後，用離心機以1000r/min離心2min。
5. 傾去上層液，沉澱即為葉綠體。隨後每管加2ml懸浮和測定介質Ⅱ，並用吸管沖散沉澱。葉綠體懸浮液合並後放冰瓶中備用。
6. 用滴管吸取少量葉綠體，加少量懸浮和測定介質Ⅱ稀釋，置顯微鏡（400~600倍）下，觀察葉綠體的形態。
上述是機械法從葉片中分離葉綠體，此外也可從原生質體中分離高活性的葉綠體，具體方法可參照《生物生產力和光合作用測定技術》（科學出版社，1986）一書。
『陸』 將葉綠體等各種細胞器從葉肉細胞中分離出來，常用的方法是___。葉片充分研磨後用..……提取色素，得
差速離心法，無水乙醇，層析液，擴散速率不同色素在葉片中的含量不同。
『柒』 葉綠體和線粒體分離的方法是什麼，其原理是什麼
線粒體的增殖是通過已有的線粒體的分裂，有以下幾種形式：
1、間壁分離，分裂時先由內膜向中心皺褶，將線粒體分類兩個,常見於鼠肝和植物產生組織中。
2、收縮後分離，分裂時通過線粒體中部縊縮並向兩端不斷拉長然後分裂為兩個，見於蕨類和酵母線粒體中。
3、出芽，見於酵母和蘚類植物，線粒體出現小芽，脫落後長大，發育為線粒體。
在個體發育中葉綠體由原質體發育而來，原質體存在於根和芽的分生組織中，由雙層被膜包圍，含有DNA，一些小泡和澱粉顆粒的結構，但不含片層結構，小泡是由質體雙層膜的內膜內折形成的。
1、在有光條件原質體的小泡數目增加並相互融合形成片層，多個片層平行排列成行,在某些區域增殖，形成基粒，變成綠色原質體發育成葉綠體。
2、在黑暗性長時，原質體小泡融合速度減慢，並轉變為排列成網格的小管的三維晶格結構，稱為原片層，這種質體稱為黃色體，黃色體在有光的情況下原片層彌散形成類囊體，進一步發育出基粒，變為葉綠體。
3、葉綠體能靠分裂而增殖，這各分裂是靠中部縊縮而實現的，在發育7天的幼葉的基部2-2.5cm處很容易看到幼齡葉綠體呈啞鈴形狀，從菠菜幼葉含葉綠體少，ctDNA多,老葉含葉綠體多，每個葉綠體含ctDNA少的現象也可以看出葉綠體是以分裂的方式增殖的，成熟葉綠體正常情況下一般不再分裂或很少分裂。
『捌』 提取葉綠體色素的常用方法是
（1）用紙層析法分離葉綠體的色素，用萃取法提取胡蘿卜素，水蒸氣蒸餾法是植物芳香油提取的常用方法．
（2）在DNA的粗提取與鑒定實驗中，提取較純凈的DNA利用了DNA不溶於酒精的特點；鑒定DNA可利用二苯胺試劑．
（3）從土壤中分離出尿素分解菌，平板內的固體培養基應以尿素作為唯一的氮源，培養基中加入指示劑酚紅，培養後若變紅則鑒定其中含有所需細菌．
（4）純化菌種和統計某活菌的數目，宜採用的接種方法是稀釋塗布平板法．該方法統計的菌落數比活菌的數目偏低，原因是當兩個或多個細胞連在一起時，平板上觀察到只是一個菌落．
故答案為：
（1）紙層析法 萃取法 水蒸氣蒸餾
（2）不溶於酒精 二苯胺
（3）酚紅
（4）稀釋塗布平板法 當兩個或多個細胞連在一起時，平板上觀察到只是一個菌落
『玖』 葉綠體和線粒體分離的方法是什麼,其原理是什麼
可以利用差速離心法把葉綠體和線粒體分離。
原理是利用葉綠體和線粒體的質量和密度不同，通過不同轉速的離心使葉綠體和線粒體分離。
『拾』 葉綠體分離的實驗原理是什麼在分離葉綠體時應注意些什麼問題
將植物組織勻漿後懸浮在等滲介質中進行差速離心，是分離細胞器的常用方法。一個顆粒在離心場中的沉降速率取決於顆粒的大小、形狀、稠密度，也與離心力以及懸浮介質的粘度有關。在一給定的離心場中，同一時間內，密度和大小不同的顆粒其沉降速率不同。依次增加離心力和離心時間，就能夠使非均一懸浮液中的顆粒按其大小、密度先後分批沉降在離心管底部，分批收集即可獲得各種亞細胞組分。葉綠體的分離應在等滲溶液(0.35mol/L
氯化鈉或0.4mol/L
蔗糖溶液)中進行，以免滲透壓的改變使葉綠體受到損傷。將勻漿液在1000
r/min
的條件下離心2min，以去除其中的組織殘渣和一些末被破碎的完整細胞。然後在3000
r/min的條件下離心5min，即可獲得沉澱的葉綠體(混有部分細胞核)。分離過程最好在0～4℃的條件下進行；如果在室溫下，要迅速分離和觀察。
2.
某些物質一定短波長的光（如紫外光）的照射下吸收光能進入激發態，由激發態回到基態時，就能在極短的時間內放出比照射光波長更長的光（如可見光），這種光就稱為熒光。若停止供能熒光現象立即停止。有些生物體內的物質受激發態光的照射後可以直接發出熒光，稱為自發熒光（或直接熒光），如葉綠體的火紅色熒光和木質素的黃色熒光等。這些物質本身不發光，但他它吸收熒光染料後同樣也能發出熒光，這種熒光稱為次生熒光（或間接熒光），如葉綠體吸附吖啶橙後可以發出桔紅色熒光。