小鼠常用的給葯途徑和方法

A. 動物學實驗的實驗動物常見的處理方法

一、編號
實驗動物常需要標記以示區別。編號的方法很多，根據動物的種類數量和觀察時間長短等因素來選擇合適的標記方法。
(一)掛牌法：將號碼烙壓在圓形或方形金屬牌上(最好用鋁或不銹鋼的,它可長期使用不生銹),或將號碼按實驗分組編號烙在栓動物頸部的皮帶上，將此頸圈固定在動物頸部。該法適用於狗等大型動物。
(二)打號法：用刺數鉗(又稱耳號鉗)將號碼打在動物耳朵上。打號前用蘸有酒精的棉球擦凈耳朵，用耳號鉗刺上號碼，然後在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。該法適用於耳朵比較大的兔、狗等動物。
(三)針刺法：用七號或八號針頭蘸取少量碳素墨水，在耳部、前後肢以及尾部等處刺入皮下，在受刺部位留有一黑色標記。該法適用於大小鼠、豚鼠等。在實驗動物數量少的情況下，也可用於兔、狗等動物。
(四)化學葯品塗染動物被毛法：經常應用的塗染化學葯品有
塗染紅色：0.5%中性紅或品紅溶液
塗染黃色：3-5%苦味酸溶液
塗染黑色：煤焦油的酒精溶液
根據實驗分組編號的需要，可用一種化學葯品塗染實驗動物動物背部被毛就可以。如果實驗動物數量較多，則可以選擇兩種染料。該方法對於實驗周期短的實驗動物較合適，時間長了染料易退掉；對於哺乳期的子畜也不適合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五)剪毛法：該法適用於大、中型動物，如狗、兔等。方法是用剪毛刀在動物一側或背部剪出號碼，此法編號清楚可靠，但只適於短期觀察。
(六)打孔或剪缺口法：可用打孔機在兔耳一定位置打一小孔來表示一定的號碼。如用剪子剪缺口,應在剪後用滑石粉捻一下,以免癒合後看不出來。該法可以編至1～ 9999號，此種方法常在飼養大量動物時作為終身號採用。
二、分組
(一)分組的原則：進行動物實驗時，經常需要將選擇好的實驗動物按研究的需要分成若干組。動物分組應按隨機分配的原則，使每隻動物都有同等機會被分配到各個實驗組與對照組中去，以避免各組之間的差別,影響實驗結果，特別是進行准確的統計檢驗,必須在隨機分組的基礎上進行。
每組動物數量應按實驗周期長短、實驗類型及統計學要求而定。如果是慢性實驗或需要定期處死動物進行檢驗的實驗，就要求選較多的動物，以補足動物自然死亡和認為處死所喪失的數量，確保實驗結束時有合乎統計學要求的動物數量存在。
(二)建立對照組：分組時應建立對照組。1.自身對照組：是指實驗數據而言。實驗動物本身在實驗處理前、後兩個階段的各項相關數據就分別是對照組和實驗組的實驗結果，此法可排除生物間的個體差異。2.平行對照組：有正對照組和負對照組兩種。給實驗組動物某種處理，而給正對照組用同樣方法進行處理，但並不採用實驗所要求的葯物或手段，負對照組則不給任何處理。3.具體分組時，應避免人為因素, 隨機把所有的動物進行編號，然後令其雙數為A組(實驗組),單數為B組(對照組)即可或反之。如果要分若干個組時，應該用隨機數字表示進行完全隨機分組。 一、實驗動物的除毛
在動物實驗中，被毛有時會影響實驗操作與觀察，因此必須除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脫毛等。
(一)剪毛法：剪毛法是將動物固定後，先用蘸有水的紗布把被毛浸濕，再用剪毛剪刀緊貼皮膚剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮膚。剪下的毛應集中放在一容器內，防止到處飛揚。給狗、羊等動物采血或新生乳牛放血制備血清常用此法。
(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳緣靜脈注射或尾靜脈注射時常用此法。
(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去動物被毛的方法。如動物被毛較長，先要用剪刀將其剪短，再用刷子蘸溫肥皂水將剃毛部位浸透，然後再用剃毛刀除毛。本法適用於暴露外科手術區。
(四)脫毛法：脫毛法是用化學葯品脫去動物被毛的方法。首先將被毛剪短，然後用棉球蘸取脫毛劑，在所需部位塗一薄層，2～3分鍾後用溫水洗去脫落的被毛，用紗布擦乾，再塗一層油脂即可。
適用於狗等大動物的脫毛劑配方為：硫化鈉10g，生石灰15g，溶於100ml水中。
適用於兔、鼠等動物的脫毛劑的配方為：1. 硫化鈉3g,肥皂粉1g,澱粉7g,加適量水調成糊狀；2. 硫化鈉8g,澱粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3. 硫化鈉8g溶於100ml水中。
二、實驗動物的給葯
在動物實驗中，為了觀察葯物對機體功能、代謝及形態引起的變化，常需要將葯物注入動物體內。給葯的途徑和方法多種多樣，可根據實驗目的、實驗動物種類和葯物劑型、劑量等情況確定。
(一)注射給葯法
1. 皮下注射注射時用左手拇指及食指輕輕捏起皮膚，右手持注射器將針頭刺入,固定後即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在後大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外側注射，拔針時，輕按針孔片刻，防葯液逸出。
2. 皮內注射此法用於觀察皮膚血管的通透性變化或觀察皮內反應。 如將一定量的放射性同位素溶液、顏料或致炎物質、葯物等注入皮內，觀察其消失速度和局部血液循環變化，作為皮膚血管通透性觀察指標之一。方法是：將動物注射部位的毛剪去，消毒後，用皮試針頭緊貼皮膚皮層刺入皮內，然後使針頭向上挑起並再稍刺入，即可注射葯液。注射後可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射當給動物注射不溶於水而混懸於油或其他溶劑中的葯物時,常採用肌肉注射。肌肉注射一般選用肌肉發達、無大血管經過的部位，多選臀部。注射時針頭要垂直快速刺入肌肉，如無回血現象即可注射。給大、小鼠作肌肉注射時，選大腿外側肌肉進行注射。
4. 腹腔注射先將動物固定,腹部用酒精棉球擦試消毒，然後在左或右側腹部將針頭刺入皮下，沿皮下向前推進約0.5厘米，再使針頭與皮膚呈45 度角方向穿過腹肌刺入腹腔，此時有落空感，回抽無腸液、尿液後，緩緩推入葯液。此法大小鼠用的較多。
5. 靜脈注射是將葯液直接注射於靜脈管內，使其隨著血液分布全身,迅速奏效。但排泄較快，作用時間較短。
6. 淋巴囊注射蛙類常採用此法,其皮下有數個淋巴囊，注入葯物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭部淋巴囊常作為蛙類給葯途徑。一般多選用腹部淋巴囊給葯。注射時將針頭從蛙大腿上端刺入，經大腿肌層入腹壁肌層，再進入腹壁皮下，即進入淋巴囊，然後注入葯液。
(二)經口給葯法
1. 口服法：把葯物放入飼料或溶於飲水中讓動物自動攝取。此法優點在於簡單方便，缺點是不能保證劑量准確。一般適用於對動物疾病的防治或某些葯物的毒性實驗，製造某些與食物有關的人類疾病動物模型。
2. 灌胃法：在急性實驗中,多採用灌胃法。此法劑量准確。灌胃法是用灌胃器將所應投給動物的葯灌到動物胃內。灌胃器由注射器和特殊的灌胃針構成。小鼠的灌胃針長約4～5cm，直徑為1mm，大鼠的灌胃針長約6～8cm，直徑約1.2mm。灌胃針的尖端焊有一小圓金屬球，金屬球為中空的。焊金屬球的目的是防止針頭刺入氣管或損傷消化道。針頭金屬球端彎曲成20°左右的角度，以適應口腔、食道的生理彎曲度走向。
(三)其它途徑給葯方法
1. 呼吸道給葯：呈粉塵、氣體及蒸氣或霧等狀態的葯物或毒氣,均需要通過動物呼吸道給葯。如實驗時給動物乙醚作吸入麻醉、用鋸末煙霧製作慢性氣管炎動物模型等，特別在毒理學實驗中應用更為廣泛。
2. 皮膚給葯：為了鑒定葯物或毒物經皮膚的吸收作用、局部作用、 致敏作用和光感作用等，均需採用經皮膚給葯方法。如兔和豚鼠常採用背部一定面積的皮膚脫毛後，將一定的葯液塗在皮膚上，葯液經皮膚吸收。
3. 脊髓腔內給葯：此法主要用於錐管麻醉或抽取腦脊液。
4. 腦內給葯：此法常用於微生物學動物實驗,將病原體等接種於被檢動物腦內，然後觀察接種後的各種變化。
5. 直腸內給葯：此種方法常用於動物麻醉。兔直腸內給葯時,常採用灌腸的膠皮管或用14號導尿管代替。
6. 關節腔內給葯：此法常用於關節炎的動物模型復制。

B. 小白鼠常見病及用葯處理方法

摘要 親您好

C. 小鼠給葯途徑實驗報告怎麼寫

一、實驗材料

Mice 18-22g，2隻/組鼠稱、苦味酸、1mL注射器、生理鹽水、小鼠灌胃針、2%ni
可剎米 四、實驗步驟

1、每組取性別相同，體重相近的小鼠2隻，承重、編號；

2、灌胃、皮下、腹腔給予2%ni可剎米0.2mL/10g（給葯後立即放入另一個備用帶
蓋鼠籠，防止驚厥小鼠竄出；注意按順序給葯）；

3、給葯後注意記錄給葯時間並仔細觀察小鼠反應；

4、記錄給葯後立即開始計時，記錄小白鼠驚厥出現的時間（潛伏期）；

5、結果 比較用三種不同給葯途徑給予葯物小鼠反應程度以及潛伏期時間的差異。對
全班實驗結果進行統計分析，得出結論並分析實驗結果（對本組實驗結果及全班實驗結果
進行分析討論）。
（註：數據統計時注意剔除可疑數據。）

二、實驗結果及分析

p>0.05,故差異顯著。以上實驗結果說明，不同的給葯途徑ni可剎米的對小白鼠作用效果不同。

不同給葯途徑對葯物作用影響

答：給葯途徑不同，葯物進入血液循環的時間和劑量都不同，葯物作用時間也不同。
例如：口服給葯由於首過效應和吸收等因素，血葯濃度曲線有較長的吸收期；而經脈注射的血葯濃度曲線沒有吸收期，葯物瞬間達到最大濃度，且起效快。

注意事項

1、在進行實驗之前，要對小白鼠進行稱重，然後進行分組進行實驗以使實驗結果更為可靠。

2、在實驗過程中，盡量減少不必要的吵鬧以免驚擾小白鼠，影響實驗結果。

3、數據統計時注意剔除可疑數據。若全班實驗結果數據量不夠，或差異性太大則將兩個班或本部京江學院的結果合在一起統計。

D. 地塞米松如何注射小鼠

葯理實驗中小鼠給葯常用並要掌握的有三個途徑：1、腹腔給葯 2、皮下注射給葯 3、經口給葯

E. 小鼠的免疫注射方法有哪些

腹腔注射、皮下注射、皮內注射、脾臟直接注射等。

F. 小鼠腹腔注射法的進針法叫什麼

klenow(站內聯系ta)我們一般給葯都是灌胃，腹腔採用的比較少。應該是灌胃更好模擬人體內作用。sw07(站內聯系ta)灌胃給葯吧，腹腔注射比較少見shilehappy(站內聯系ta)應該參考受試葯物臨床給葯途徑，如果臨床擬給葯途徑為灌胃，那就灌胃，如果臨床是靜脈注射，那你可以腹腔注射。腹腔注射吸收快，如果制劑沒有什麼刺激性，注射體積適量，注射14d應該沒有什麼問題。alvin775(站內聯系ta)一般都是灌胃給葯，更能體現葯物在體內的作用，腹腔注射一般用於造模victor_2006(站內聯系ta)你的葯物要是口服生物利用度低的話，可以試試腹腔binbinlxc(站內聯系ta)灌胃和口服有什麼區別啊？staffyujay(站內聯系ta)腹腔注射也不能避免首過效應吧~腸系膜吸收之後還是進入下腔靜脈啊~有首過效應的啊。。。建議還是灌胃把~要避免首過效應要麼舌下要麼靜脈注射

G. 為什麼做小鼠機能實驗時，硫酸鎂不同給葯途徑葯物作用不一樣，小鼠反應也不一樣

小鼠一般有口服（灌胃）、皮下注射、靜脈注射這三種方法，氣體的還可以吸入。

你可以這樣簡單理解一下：
經過胃腸道給葯，葯物是需要經過腸道吸收，並經過肝臟處理，那麼所給葯物已經是被機體消化系統處理過，而且胃腸道也不一定能完全吸收。
經皮下注射，雖然直接進入了機體中，但是一開始也是局限於注射局部，葯物要進入到循環系統來到身體各個部位（主要是靶器官），也有一個類似於吸收的過程，在此過程中也會被一定程度上處理過。
靜脈注射則葯物直接到達循環系統，流向全身各個部位，直接到達靶器官，葯物的起效自然也是最快的。

H. 小鼠給葯途徑實驗報告內容是什麼

一、實驗目的

1、研究不同劑量的xxx對小白鼠作用的效果的不同。

2、研究不同的給葯途徑的對小白鼠作用效果的不同。

二、實驗原理

1、葯物劑量的大小決定血葯濃度的高低，血葯濃度又決定葯理效應，因此葯物劑量決定葯理用強弱。

2、給葯途徑不同，吸收速度有差別，葯物反應的潛伏期和程度亦有差別，一般是腹腔大於皮下大於灌胃的葯效。

實驗一劑量對葯物作用的影響。

三、實驗材料

Mice18-22g，2隻/組鼠稱、xxx、1mL注射器、生理鹽水、xxx0.2%、0.4%、0.8%xxx鈉溶液。

四、實驗步驟

1、每組取性別相同，體重相近的小鼠2隻，承重、編號。

2、分別i.p0.2%、0.4%、0.8%xxx鈉溶液0.1mL/10g（注意注射器勿搞混）。

3、給葯後仔細觀察小鼠活動情況，並記錄在表1。

4、實驗結束後，對全班實驗結果進行統計分析，得出結論並分析實驗結果（對本組實驗結果及全班實驗結果進行分析討論）。

五、實驗結果及分析

1、劑量對葯物作用的影響（全班數據）p<0.001表示0.4%與0.8%作用維持時間有顯著差異。

2、以上實驗結果說明，不同劑量的xxx對小白鼠作用的效果不同。

3、本組實驗結果與全班實驗結果對比——潛伏期。