Ⅰ 還原糖測定方法
糖果—還原糖的測定—直接滴定法
2 原理
樣品經除去蛋白質後，在加熱條件下，直接滴定標定過的鹼性酒石酸銅液，以次甲基藍作指示劑，根據樣品液消耗體積，計算還原糖量。
3 試劑
3.1 鹼性酒石酸銅甲液
稱取15g硫酸銅（CuSO4•5H2O）及0.05g次甲基藍，溶於水中並稀釋至1000mL。
3.2 鹼性酒石酸銅乙液
稱取50g酒石酸鉀鈉及75g氫氧化鈉，溶於水中，再加入4g亞鐵氰化鉀，完全溶解後，用水稀釋至1000mL，貯存於橡膠塞玻璃瓶內。
3.3 乙酸鋅溶液
稱取21.9g乙酸鋅，加3mL冰乙酸，加水溶解並稀釋至100mL。
3.4 亞鐵氰化鉀溶液（10.6+89.4）
稱取10.6g亞鐵氰化鉀，加水溶解並稀釋至100mL。
3.5 葡萄糖標准溶液（1mg/mL）
精密稱取1.000g經過98～100℃乾燥至恆量的純葡萄糖，加水溶解後加入5mL鹽酸，並以水稀釋至1000mL。此溶液每毫升相當於1mg葡萄糖。
3.6 鹽酸
4 儀器
4.1 實驗室常規儀器和設備
4.2 古氏坩堝或G4垂融坩堝
5 操作步驟
5.1 樣品處理
將樣品搗碎混勻待用，樣品應避免暴露在空氣和陽光下，並盡可能迅速地進行分析。
稱取約2.5～5g樣品，置於250mL容量瓶中，加50 mL水，搖勻後慢慢加入乙酸鋅溶液5mL及亞鐵氰化鉀溶液（10.6+89.4）5mL，加水至刻度，混勻。靜置30min，用乾燥濾紙過濾，棄去初濾液，濾液備用。
5.2 標定鹼性酒石酸銅溶液
吸取5.0mL鹼性酒石酸銅甲液及5.0mL乙液，置於150mL錐形瓶中，加水10mL，加入玻璃珠2粒，從滴定管滴加約9mL葡萄糖標准溶液，控制在2min內加熱至沸，趁沸以每兩秒1滴的速度繼續滴加葡萄糖標准溶液，直至溶液藍色剛好褪去為終點，記錄消耗葡萄糖標准溶液的總體積，同時平行操作三份，取其平均值，計算每10mL（甲、乙液各5mL）鹼性酒石酸銅溶液相當於葡萄糖的質量（mg）。
5.3 樣品溶液預測
吸取5.0mL鹼性酒石酸銅甲液及5.0mL乙液，置於150mL錐形瓶中，加水10mL，加入玻璃珠2粒，控制在2min內加熱至沸，趁沸以先快後慢的速度，從滴定管中滴加樣品溶液，並保持溶液沸騰狀態，待溶液顏色變淺時，以每兩秒1滴的速度滴定，直至溶液藍色剛好褪去為終點，記錄樣液消耗體積。
5.4 樣品溶液測定 1
吸取5.0mL鹼性酒石酸銅甲液及5.0mL乙液，置於150mL錐形瓶中，加水10mL，加入玻璃珠2粒，從滴定管滴加比預測體積少1mL的樣品溶液，使在2min內加熱至沸，趁沸繼續以每兩秒1滴的速度滴定，直至藍色剛好褪去為終點，記錄樣液消耗體積，同法平行操作三份，得出平均消耗體積。
6 結果計算
按下式計算糖果中還原糖的含量： 100100025021×××=VmmX
式中：X—樣品中還原糖的含量（以葡萄糖計），%；
m1—10mL鹼性酒石酸銅溶液（甲、乙液各5mL）相當於還原糖（以葡萄糖計）的質量，mg；
m2—樣品質量，g；
V—測定時平均消耗樣品溶液體積，mL。
7 精密度
同一樣品兩次平行測定值相對差不得超過15%。
Ⅱ 還原糖含量的測定有哪些方法,說出他們的優缺點
摘要 常用的還原糖測定方法有：直接滴定法、高錳酸鉀滴定法、比色法。直接滴定法測定的是一大類具有還原性的糖，包括葡萄糖、果糖、乳糖、麥芽糖等，適用於所有食品中還原糖的快速測定。
Ⅲ 發酵液中還原糖的測定用DNS法和斐林試劑法，哪個方法好些
用DNS法測發酵液還原糖含量時，測出的吸光度值很小甚至有負值出現，是 我記得做標准曲線的時候,是用DNS+蒸餾水做空白,不加葡萄糖溶液.你測的時候如果樣品是不經過稀釋,直接加DNS的,就用DNS做空白咯.
Ⅳ 還原糖含量的測定有哪些方法,說出他們的優缺點
糖果—還原糖的測定—直接滴定法 2 原理 樣品經除去蛋白質後,在加熱條件下,直接滴定標定過的鹼性酒石酸銅液,以次甲基藍作指示劑,根據樣品液消耗體積,計算還原糖量。 3 試劑 3.1 鹼性酒石酸銅甲液 稱取15g硫酸銅(CuSO45H2O)及0.05g次甲基藍,溶於水中並稀釋至1000m
Ⅳ 還原糖測定有幾個步驟
步驟：
第二步：向1號試管注入其中的一種待測液2ml,向2號試管注入另一種待測液2ml
第三步：分別向1、2號試管中各注入1ml斐林試劑（甲、乙兩液等量混合均勻後再注入）
第四步：將兩支試管放入盛有50-65.C溫水的大燒杯中加熱約2min
結果分析：
結果：在1、2號試管中出現磚紅色沉澱的那種溶液就是葡萄糖溶液,未出現磚紅色沉澱的則是蔗糖溶液
Ⅵ 還原糖測定原理
含有醛基或酮基的糖，在鹼性條件下可轉變成非常活潑的烯二醇結構，具有一定的還原性，可被弱氧化劑氧化成相應的糖酸。這類糖稱為還原糖。單糖均是還原糖，雙糖中的乳糖、麥芽糖也具有還原性。還原糖常用的測定方法有直接滴定法、高錳酸鉀滴定法和比色法。
直接滴定法
原理
在加熱條件下，以次甲基藍為指示劑，以已除去蛋白質的被測樣品溶液，直接滴定已標定過的費林氏液，樣品中的還原糖與斐林試劑中的酒石酸鉀鈉銅絡合物反應，生成紅色的氧化亞銅沉澱，氧化亞銅再與試劑中的亞鐵氰化鉀反應，生成可溶性化合物，到達終點時，稍過量的還原糖立即將次甲基藍還原，使藍色褪色，呈現出原樣品溶液的顏色，即為終點。根據樣品消耗體積，計算還原糖量。
本方法測定的是一大類具有還原性的糖，包括葡萄糖、果糖、乳糖、麥芽糖等，只是結果用葡萄糖或其他轉化糖表示而已。
本法是國家標准分析方法，適用於所有食品中還原糖的快速測定。檢出限0.1mg。
高錳酸鉀滴定法
原理
樣品經除去蛋白質後，其中還原糖在鹼性環境下將銅鹽還原為氧化亞銅，加硫酸鐵後，氧化亞銅被氧化為銅鹽，以高錳酸鉀溶液滴定氧化作用後生成的亞鐵鹽，根據高錳酸鉀消耗量計算氧化亞同含量，再查表得還原糖量。
本法為國家標准方法（GB5009.7-85），適用於所有食品中還原糖的測定以及通過酸水解或酶水解轉化成還原糖的非還原性糖類物質的測定。准確度和重現性均優於直接滴定法。
Ⅶ 測定還原糖的化學分析法有哪些
現今普遍採用的方法是用糖液直接滴定鹼性銅試劑,而以次甲基藍為指示劑。該法的缺點是在反應過程中,析出紅色氧化亞銅。當溶液沸騰時,沉澱呈懸浮狀,使次甲基藍褪色,也就是反應的終點難以確定。為了避免這個缺點,一面將銅試劑的鹼度提高,一面加入黃血鹽。在這個條件下,氧化亞銅和黃血鹽生成可溶性化合物而不復析出,使終點易於辯別
Ⅷ 求還原糖的測定方法,及注意事項
實驗原理還原糖與斐林試劑發生作用，可以生成磚紅色沉澱。試劑斐林試劑（主要由質量濃度為0.1g/mL的NaOH溶液和質量濃度為0.05g/mL的CuSO4溶液配製而成）實驗材料准備植物組織是常用的實驗材料,但必須加以選擇。在雙子葉植物中,光合作用的主要產物葡萄糖形成後合成為澱粉,暫時儲藏在葉子內,因此最好不用雙子葉植物的葉子作實驗材料。有些單子葉植物,如韭菜、鳶尾,並不將光合作用的初始產物轉變為澱粉,因此葉內含有大量的可溶性單糖,但是,由於葉片中葉綠素的顏色較深,對於鑒定時的顏色反應起著掩蓋作用,導致實驗現象不明顯,因此,也不宜用單子葉植物的葉子作實驗材料。本實驗最理想的實驗材料是含糖量較高的生物組織(或器官),而且組織的顏色較淺,或近於白色的,如蘋果和梨的果實。經試驗比較,顏色反應的明顯程度依次為蘋果、梨、白色甘藍葉、白蘿卜。操作方法1 取一支試管，注入2mL待測樣品2 向試管內注入2mL剛配製的斐林試劑。（必須將斐林試劑的甲液和乙液混合均勻後使用，切勿分別加入樣品中檢測）3 將這支試管放進盛有開水的大燒杯中，用酒精燈加熱煮沸2分鍾左右。 注意：如果溶液中還原糖含量較低，產生的氧化亞銅便會較少，試驗後只會有綠色、混濁的黃色或橙色等。在酸性環境中，Cu2 會變得較為穩定，不容易發生反應，所以不能進行試驗。醇和醛在這測試亦會產生磚紅色沉澱物，因為兩者都具有在這試驗中產生作用的官能團。
Ⅸ 還原糖的測定方法有哪幾種
總糖:主要指具有還原性的葡萄糖，果糖，戊糖，乳糖和在測定條件下能水解為還原性的單糖的蔗糖(水解後為1分子葡萄糖和1分子果糖)，麥芽糖(水解後為2分子葡萄糖)以及可能部分水解的澱粉(水解後為2分子葡萄糖)。 還原糖:在糖類中，分子中含有游離醛基或酮基的單糖和含有游離醛基的二糖都是還原糖。還原性糖包括所有單糖(除二羥丙酮)、乳糖、麥芽糖等。非還原性糖有蔗糖、澱粉、纖維素等，但它們都可以通過水解生成相應的還原性單糖。 分光光度計:分光光度法則是通過測定被測物質在特定波長處或一定波長范圍內光的吸收度，對該物質進行定性和定量分析。常用的波長范圍為:(1)200,400nm的紫外光區(2)400,760nm的可見光區,(3)2.5,25μm(按波數計為4000cm<-1>,400cm<-1>)的紅外光區。所用儀器為紫外分光光度計、可見光分光光度計(或比色計)、紅外分光光度計或原子吸收分光光度計。為保證測量的精密度和准確度，所有儀器應按照國家計量檢定規程或本附錄規定，定期進行校正檢定。分光光度計採用一個可以產生多個波長的光源，通過系列分光裝置，從而產生特定波長的光源，光源透過測試的樣品後，部分光源被吸收，計算樣品的吸光值，從而轉化成樣品的濃度。樣品的吸光值與樣品的濃度成正比。單色光輻射穿過被測物質溶液時，被該物質吸收的量與該物質的濃度和液層的厚度(光路長度)成正比。糖含量的檢測方法
Ⅹ 怎樣提取食品中的還原糖
摘要 直接滴定法