⑴ 簡請述一種檢測空氣微生物的方法，急用·····
沉降菌、浮游菌監測.
4.1.7培養基平皿的制備：將直徑9cm的培養皿經160℃乾燥滅菌2小時備用。按培養基的管理及培養基的配製使用和制備營養瓊脂培養基，取已配製好的營養瓊脂培養基加熱溶化，並冷卻至45℃時，在無菌操作區將約15-20 ml培養基注入培養皿。待凝固後，倒置平皿培養，30℃-35℃培養48小時。檢查有無菌生長。無菌生長的培養皿宜在2~8℃環境中保存，待用。
4.2測試方法
4.2.1沉降菌測定時，培養皿應放置在有代表性和氣流擾動極小的地方。
4.2.2采樣點的位置：工作區測點位置離地0.8m～1.5 m左右（略高於工作區）；送風口檢測點位置離開送風面30cm左右。
4.2.3培養皿數與采樣點數根據房間面積放置，見潔凈室監測程序SOP 02-QA-02-029後附表：沉降菌、浮游菌、懸浮粒子測試點分布圖（JZ-PM-002-01）
4.2.3.1最低限度采樣點數及最少培養皿數
面 積（m2） 潔凈級別
100級 10000級 100000級
＜10 2-3 2 2
≥10~<20 4 2 2
≥20~<40 8 2 2
≥40~<100 16 4 2
≥100~<200 40 10 3
≥200~<400 80 20 6
≥400~<1000 160 40 13
（註：表中面積指：對於單向流（層流）潔凈區，是指送風面面積；對於亂流（非單向流）潔凈區，是指房間面積。）
4.2.4將培養皿放置在采樣點處，打開蓋子，將蓋子口朝下，靠在皿上，放置30min，蓋上蓋子，放於不銹鋼桶中或用鋁箔包好。將培養皿放置培養箱中，30℃-35℃、48小時培養記數。用肉眼直接計數、標記，若平板上有2個或2個以上的菌落重疊，可分辨時仍以2個或2個以上菌落計數，結果按平皿菌落數的最大值計數。
4.2.5對照：在各潔凈區的做沉降菌檢測時，取空白培養基做陰性對照。
4.3檢測標准：
潔凈級別 100級 10000級 100000級
標准(菌落數最大允許值)
個/（Φ90mm·0.5h） 平均≤1 平均≤3 平均≤10
4.4注意事項
測試前應仔細檢查每個培養皿的質量，培養基及培養皿有變質、破損或污染的不能使用。
⑵ 有關大腸桿菌、金色葡萄糖球菌等有關醫療監測的檢測指標和方法啊
檢測原理：
大腸菌群是一群能發酵乳糖、產酸產氣、需氧和兼性厭氧的革蘭氏陰性無芽孢桿菌，該菌主要來源於人畜糞便，故以此作為糞便污染指標來評價食品的衛生質量，推斷食品中有否污染腸道致病菌的可能。食品中的大腸菌群數系以100ml(g)檢樣內大腸菌群最可能數(MPN)表示。
2.儀器設備與器具：
2.1 恆溫培養箱：36±1℃。
2.2 1000ml三角燒瓶、1ml、10ml移液管。
2.3 接種針。
2.4 顯微鏡。
2.5 超凈工作台。
2.6 玻片、酒精燈、洗耳球、試管架。
2.7 天平：感量0.01g。
2.8 滅菌釜。
2.9 培養皿（直徑為90mm）、試管，經121℃、30分鍾滅菌。
2.10試管夾、酒精燈、秒錶、載玻片 3.培養基及試劑：
3.1 乳糖膽鹽發酵管：按照製造廠家使用說明進行配製，滅菌。
3.2 伊紅美蘭瓊脂平板： 按照製造廠家使用說明進行配製，滅菌。
3.3 乳糖發酵管： 按照製造廠家使用說明進行配製，滅菌。
3.4 革蘭氏染色液。
3.4.1 結晶紫染色液：
結晶紫 1g
95%乙醇 20ml
1%草酸銨水溶液 80ml
將結晶紫溶解於乙醇中，然後與草酸銨溶液混合。
3.4.2 革蘭氏碘液：
碘 1g
碘化鉀 2g
蒸餾水 300ml
將碘與碘化鉀先進行混合，加入蒸餾水少許，充分振搖，待完全溶解後，再加蒸餾水至300 ml。
3.4.3 沙黃復染液：
沙黃 0.25g
95%乙醇 10ml
蒸餾水 90ml
將沙黃溶解於乙醇中，然後用蒸餾水稀釋。
3.5 生理鹽水。
4.檢驗程序：
檢樣
↓
稀釋
↓
乳糖膽鹽發酵管，36±1℃，24±2hr
↓ ↓
不產氣 產氣
↓ ↓
大腸菌群陰性 伊紅美蘭瓊脂平板，36±1℃，24±2hr
↓
報告 ↓ ↓
革蘭氏染色 乳糖發酵管，36±1℃，24±2hr
↓
↓ ↓ ↓ ↓
G+ G-，無芽孢桿菌 產氣 不產氣
↓ ↓
大腸菌群陰性 大腸菌群陰性
↓ ↓ ↓
報告 大腸菌群陽性 報告
5.測定方法：
5.1 檢樣稀釋：
5.1.1 以無菌操作將檢樣25ml(或25g)放於含有225ml滅菌生理鹽水的滅菌塑料燒杯中，經充分振搖成1：10均勻稀釋液。
5.1.2 用1ml滅菌吸管吸取1：10稀釋液1ml，注入含有9ml滅菌生理鹽水的 試管中，振搖成1：100稀釋液。
5.1.3 重復5.1.2的操作，使成1：1000稀釋液。
5.2乳糖膽鹽發酵試驗：根據食品衛生標准要求或對檢樣污染情況的估計，選擇二個稀釋度，每一稀釋度接種3管，接種量在1ml以上者，用雙料乳糖膽鹽發酵管。1ml及1ml以下者，用單料乳糖膽鹽發酵管。然後置於36±1 ℃培
養箱內，培養24±2hr，如所有乳糖膽鹽發酵管都不產氣，則可報告為大腸菌
群陰性；如有產氣者，則可按以下程序進行。
5.3分離培養：將產氣的發酵管分別接種於伊紅美蘭瓊脂平板上，置36±1℃溫箱內，培養24hr後取出，觀察菌落形態，並作革蘭氏染色。
5.4證實試驗：在上述平板上，挑取可疑大腸菌群菌落1～2個進行革蘭氏染色同時接種乳糖發酵管，置於36±1℃溫箱內培養24±2hr，觀察產氣情況。乳糖發酵管產氣，革蘭氏染色為陰性的無芽孢桿菌，即可報告為大腸菌群陽性。
5.5報告：根據證實為大腸菌群陽性的管數，查MPN檢索表，報告每100ml(g)大腸菌群的最可能數。
食品中金黃葡萄球菌的檢測方法
金黃色葡萄球菌是一種引起人類和動物化膿感染的重要致病菌，也是造成人類食物中毒的常見致病菌之一。本菌廣泛分布於自然界，如空氣、土壤、水及其它環境中。在人類和動物的皮膚及外界相通的腔道中，也經常有本菌存在。據報導，在正常人群中的帶菌率可達30%~80%，其中皮膚帶菌率為8~22%，鼻腔和咽喉部等上呼吸道的帶菌率在40~50%以上，因此其可通過各種途徑和方式，尤其是經工作人員的手和上呼吸道而污染食品。由於致病金黃葡萄球菌能產生腸毒素，故一旦細菌污染食品，並在合適的溫度環境下，細菌可以大量繁殖並產生腸毒素，從而引起消費者食物中毒。
由金黃色葡萄球菌引起的食物中毒，在世界各國都極為普遍。特別是在北美及歐洲等地區發病率更高。在上述這些國家中，每年有金黃色葡萄球菌引起的食物中毒病例，僅次於沙門氏菌，而在細菌性食物中毒病例排到第2~3位，有此而造成的經濟損失也相當慘重，在我國由金黃色葡萄球菌引起的食物中毒病例也時有報導，所以目前世界各國都把金黃色葡萄球菌列為食品衛生的法定檢測項目。
我國對金黃色葡萄球菌目前採用的方法是以國家標准GB.4789-10-84及檢驗檢疫系統行業標准SN.0172-92作為依據。整個檢測過程獲得最終結果須時5天左右，既費時又費力，並造成貨物積壓，也影響貨物的及時出運，並使貨主的倉儲成本提高，造成較大的經濟損失。
多年來很多食品微生物實驗室都在探索和尋找一些准確性高，並快速的檢測方法，最近我們分別從美國3M公司和法國生物梅里埃公司獲得兩種快速檢測致病性金黃色葡萄球菌的培養基，其名稱為：
① Petrifilm RSA. Count Plate（由美國3M公司研製生產），是一種薄膜型快速檢測金黃色葡萄球菌的計數平板。
② Baird-parker + RPF Agar.（由法國生物梅里埃公司研製生產的用Baird-Parker瓊脂加免血漿纖維蛋白原的金黃色葡萄球菌檢測計數平板）。
原理：Petrifilm. RSA. 測試薄膜是由二部分組成。第一部分是由黃金色葡萄球菌培養基片，此培養基中含有經修正的Barid-Parker，營養成分加上以冷水可溶解的膠質。第二部分是一種耐熱核酸酶（TNase）反應片，含有DNA及甲苯胺蘭 ( Toluidine Blue - O )及四唑指示劑 (Tetraeolium)。此指示劑有助於菌落的計數及確定葡萄球菌耐熱核酸酶的存在。
耐熱去氧核糖核酸（deoxyribonulcas Dnase）為產毒金葡菌之典型特徵，此酶非常耐熱，在100℃加熱30min，不易喪失活性，在130℃之下，其D值為16.6min，此酶之分子量為16800，等電點PH為9.6,耐熱去氧核糖酸與檢測血漿凝固酶相似，是一種鑒定金黃色葡萄球菌的方法，在Petrifilm. RSA 檢測片上，耐熱DNA酶反應看起來，呈粉紅色環帶包圍著一個紅色或蘭色的菌落。
Petrifilm.RSA檢測片，必須與Peyrifilm耐熱核酸酶反應片一起使用，單獨使用將不會顯示菌落，因為具有輔助計數菌落的指示劑是在反應片上，而不是在Petrifilm.RSA檢測片上。
Baird-parker + RPF agar，這一培養基中含有豐富的營養成分，其中以氯化鋰代替亞碲酸鉀，使菌落顏色呈黑色，RPF補充有兔血漿和牛纖維蛋白原，以便檢測凝固酶活力，胰酶可以抑制全部或部分圍繞凝固酶陽性菌落周圍沉澱暈環纖維蛋白的溶解，因此凡存在血漿凝固酶陽性的金黃色葡萄球菌，將在培養基中呈現有暈環的黑色菌落，即可確認，並作計數。
實驗實施
材料和方法：
本次實驗採用以下3種試劑：
1. 美國3M公司提供的Petrifilm. Rapid. S. aureus Count Plate.
2. 法國生物~梅里埃公司提供的Baird-Parker + RPF agar .
3. 實驗室自配Baird-Park瓊脂（英國Oxoid）及新鮮兔血漿。
菌種來自美國菌種保存中心（America TyP Culture Collection）。金黃色葡萄球菌共10株菌株，其菌號分別為：
ATCC 27661 ATCC 27664 ATCC 13565 ATCC 51704
ATCC(K) 12600 ATCC(R) 65389 ATCC 25923 ATCC 29213
ATCC 8095 ATCC 12598
非金黃色葡萄球菌菌種5株，其菌號分別為：
ATCC 51813 （大腸桿菌）、ATCC 624 （無乳鏈球菌）、ATCC 51816 （陰溝腸桿菌）、ATCC 6051 （枯草桿菌）、ATCC 49214 （腸炎沙門氏菌）、自然食品檢樣，任意購自市場。
本次實驗是以同一測試樣品經均質並通過無菌生理鹽水作10倍遞增稀釋後取1至2個稀釋度同時接種上述三種培養基作平行實驗，在取得最終結果後相互進行比對。
上述三種培養基的接種方法是按生產商所提供的使用說明進行操作，另外Baird-Parker Agar 培養基是按SN0172-92標准進行操作。
A、 本次實驗共測試已知標准菌種共15株，其中葡萄球菌10株，其他菌種5株（包括大腸桿菌、陰溝腸桿菌、腸炎沙門氏菌、枯草桿菌和無乳鏈球菌）。
B、 測試自然食品檢樣共101隻（其中包括肉11隻、肉類14隻、水產品17隻、牛奶25隻、蔬菜22隻、豆製品12隻）。
結果：
A、 被檢菌種10株，金黃色葡萄球菌在三種培養基上都能檢出生長情況良好，同一稀釋度的菌液，除個別菌株外在3種培養基計數檢測結果基本都在一個數量級上，無顯著差異。而5株非金黃色葡萄球菌的菌株在三種培養基上全部不能生長。
B、 自然食品檢樣共接種101隻，每一檢樣同一稀釋濃度分別同時種三種培養基，最終共檢出金黃色葡萄球菌45隻，佔全部檢樣的44.5％，其中Petrifilm RSA 檢出陽性結果為42隻，佔全部陽性檢樣的93.3％，Baird-Parker＋RPF Agar. 檢出陽性結果26隻，佔全部陽性檢樣的57.7％。Baird-Parker. Agar 檢出陽性結果32隻，佔全部陽性檢樣的71.1％。
討論
1. 用15株標准菌在3種培養基中的檢測，10株金黃色葡萄球菌以同一濃度接種，結果生長良好，其最終計數基本一致，定位在同一數量級，5株非金黃色葡萄球菌接種上述三種培養基全部不長，說明上述三種培養基對金黃色葡萄球菌選擇良好。
2. 以101隻自然樣品同一均質稀釋液，同時接種三種培養基，從最終結果來看，對金黃色葡萄球菌的陽性檢出率為44.5％
3. 從檢測程序來年，Petrifilm. RSA及Baird-Parker＋RPF. Agar. 都在樣品接種後28~30h觀察結果，並不必再做證實試驗，而如以Baird-Parker Agar檢測，須在接種後48h觀察平板，並挑取可疑菌落轉種到營養肉湯中，在經18-24h後做血漿凝固酶或耐熱DNA酶試驗進行證實，最終計數，前後約須80h。
4. 從本次試驗中觀察，使用上述三種培養基對食品中金黃色葡萄球菌含量的直接計數檢測，其樣品接種液的含量擬控制在100個/ml以內，比較容易分清並計數，如菌量過濃，則將會影響最後的讀數，因此對新送的被檢樣品，如在不了解污染的情況下一般必須要做2個以上的稀釋度，同時分別接種，才能獲得較為滿意的結果。
而在Baird-Parker＋RPF Agar及Baird-Parker. Agar接種時必須將1ml樣液作三隻平板塗布（0.3、0.3、0.4ml）這樣就會造成手續繁瑣試劑消耗較大，但Baird-Parker. RPF. 培養基也可以1ml樣液作傾注培養，並作計數。
5. 在整個測試過程中，我們發現，按使用說明對Petrifilm. RSA. 及Barid-Parker＋RPF. Agar，操作規定在接種24h後觀察結果，此時往往由於菌落長得經較小，特徵瓜不明顯，但如果繼續放置一夜以後金葡萄菌落特徵明顯，並可能會經第一天觀察數量有所增加，這樣可以提高檢測結果的可信度。
6. 由於對上述兩種培養基的試用期間我們尚未獲得供應商的報價，故無法測算每一樣品的測試成本價格。但可以予計上述兩面種快速檢測培養基的耗材費用要高於常規經典方法（Baird-Parker Agar）的費用。
7. 通過本次實驗，我們感到使用美國3M公司生產的Petrifilm. RSA Plate培養基和法國生物－梅利埃公司生產的Baird-Parker RPF. Agar培養基檢測中的金黃色葡萄球菌。可以比目前常規檢測方法時間可縮短一半。並可以明顯節省大量人力。這完全符合實驗室快速檢測的要求，尤其是對基層較簡陋的實驗室條件中，更顯其使用方便的優越性。
⑶ 食品中大腸菌群的檢驗，有哪些需要注意的實驗步驟
食品微生物學檢驗 大腸菌群計數：大腸菌群平板計數法（GB 4789.3-2010）
一 試劑和儀器
煌綠乳糖膽鹽肉湯（BGLB肉湯）
結晶紫中性紅膽鹽瓊脂（VRBA）
恆溫培養箱
自動稀釋儀
均質器
振盪器
二 樣品處理
固體樣品應在無菌條件下充分粉碎。本次演示以乳粉為例，取密封狀態良好的試樣，備用待測。
三 檢測過程
實驗前准備
進入無菌操作室前應更換無菌實驗服，戴帽子、口罩、無菌手套。進入無菌操作室後，首先用鑷子夾取適量酒精棉全面擦拭雙手，然後才能進行實驗操作。
酒精易燃，因此在擦拭雙手的過程中應離開酒精燈火焰一定距離，防止出現危險，待手上的酒精揮發完全後，再進行實驗操作。
樣品的稀釋
取一潔凈無菌均質袋於自動稀釋儀上，用酒精棉充分擦拭樣品袋，將剪刀置於酒精燈外焰上充分灼燒，小心剪開樣品袋。將稱樣勺於酒精燈外焰灼燒片刻，准確稱取25g樣品於無菌均質袋中。用酒精燈外焰灼燒注水口片刻，在盛有樣品的均質袋中注入225mL無菌生理鹽水或磷酸鹽緩沖液。取下均質袋，將均質袋放入拍擊式均質器中，用均質器拍打1min～2min，製成1:10的樣品勻液。
注意：樣品勻液的pH值應在6.5～7.5之間，必要時可用1 mol/L無菌氫氧化鈉或1mol/L無菌鹽酸溶液調節。
均質完畢後，做好標記，將均質袋置於樣品框中。
在裝有9mL生理鹽水的無菌試管上做好標記，用1mL無菌吸管吸取1:10樣品勻液1mL，沿管壁緩緩注入裝有9mL生理鹽水的無菌試管中，稀釋前後試管口都應在酒精燈上灼燒片刻。加塞後於振盪器上混合均勻，製成1:100的樣品勻液。同理，按上述操作，依次製成十倍遞增系列稀釋樣品勻液。稀釋樣品時，注意吸管或吸頭尖端不得觸及稀釋液面；每遞增稀釋1次，換用1支1mL無菌吸管或吸頭。
接種及培養
在事先經滅菌處理的培養皿底部做好標記。根據對樣品污染狀況的估計，選取2～3個適宜的連續稀釋度。本次演示只做1:10和1:100的樣品稀釋液。
用無菌吸管吸取1:10樣品稀釋液1mL，加入到培養皿中，備用。同理，加入1:100稀釋液和空白液。注意，每個稀釋度應接種2個無菌培養皿，空白液即為以1mL生理鹽水代替1mL樣品稀釋液。
加完樣品梯度稀釋液後，即可傾倒培養基。傾倒前應將錐形瓶的瓶口在酒精燈上充分灼燒。灼燒後及時傾注15mL～20mL結晶紫中性紅膽鹽瓊脂於每個培養皿中，小心旋轉培養皿，將培養基與樣液充分混勻。傾注培養基時應將錐形瓶口盡量伸入培養皿內，防止傾倒時培養基掛在培養皿的內壁或外壁上，且傾倒過程應果斷，防止培養基沿錐形瓶外壁流出、滴落。培養基的溫度以46℃為宜，不能過高或過低，溫度過高不利於操作且對菌體有害，溫度過低培養基迅速凝固，菌體不能在培養皿內均勻的分布，導致菌落計數困難。轉動培養基時用力須均勻，防止培養基沾到培養皿上蓋或灑出。
倒完培養基後，靜置培養皿，等待培養基冷卻凝固。
待培養基凝固後，再加3mL～4mL 結晶紫中性紅膽鹽瓊脂覆蓋平板表層。加兩次培養基的主要目的是：使菌體均在培養基內部生長，以便於觀察典型菌落形態。等待培養基冷卻凝固。待培養基凝固後，翻轉平板，置於培養箱中於36℃±1℃條件下培養18h～24h。
平板菌落計數
選取菌落數在15CFU～150CFU之間的平板，分別計數平板上出現的典型和可疑大腸菌群菌落，其中典型菌落的特徵為紫紅色，菌落周圍有紅色的膽鹽沉澱環，菌落直徑為0.5mm或更大。
證實實驗
先在煌綠乳糖膽鹽肉湯管上做好標注。將接種環置於紅外滅菌器中滅菌，再用接種環從結晶紫中性紅膽鹽瓊脂平板上挑取10個不同類型的典型和可疑菌落，分別移種於煌綠乳糖膽鹽肉湯管內，振搖均勻。每次接種後都應及時將接種環在滅菌器中滅菌。將接種完的煌綠乳糖膽鹽肉湯管置於培養箱中，於36℃±1℃條件下培養24h～48h。培養完畢後，觀察煌綠乳糖膽鹽肉湯管中產氣情況。凡管內倒管有氣泡者，即可報告為大腸菌群陽性。