❶ 食品中致病菌的檢測方法
痢疾桿菌其致病作用主要是侵襲力和毒素。病菌黏附於腸粘膜的上皮細胞內，繼而生長繁殖並引起炎症，在內毒素的作用下使腸壁組織壞死，腸功能紊亂，以致出現毒血症。有些痢疾桿菌能產生腸毒素，導致腸炎。
致病性大腸桿菌的污染源是帶菌動物（牛、羊、豬、雞等）和病人及隱形帶菌者。主要通過攝入污染該菌的動物性食品導致發病，或者嚴重污染飲水和其他食品污染及食物鏈的交叉污染也可導致發病。
傷寒和副傷寒病人和健康帶菌者是沙門氏菌的傳染源。病菌隨糞尿排出體外，通過污染的食物、飲水、手、食具或經蠅、蟑螂等媒介污染食物，經口感染。食物或水源污染可導致暴發流行。
霍亂弧菌的傳染源是病人或健康帶菌者，隱性感染者和症狀較輕的患者呈間歇排菌，危害性比重症患者更大。病菌隨糞便及嘔吐物排出，污染飲用水、食物和環境，並通過水、手、污染的食物、食具、蠅、蟑螂等媒介而經口感染。感染人體後，能吸附於腸粘膜表面，並大量繁殖，其內毒素損害腸粘膜，外毒素引起腸液分泌過度增加，發生腹瀉，大量丟失腸液，產生嚴重脫水、酸中毒及電解質紊亂。
炭疽桿菌其致病原因是炭疽桿菌產生的毒素（致死毒素和水腫毒素），人的皮膚傷口通過直接接觸病畜的血液、分泌物、排泄物以及被污染的皮、毛、骨粉等，可引起皮膚炭疽；經口攝入病畜肉類以及被細菌污染的食物和水等，可引起腸型炭疽；吸入帶有炭疽芽孢的塵埃，可引起肺炭疽。
❷ 食品安全檢驗中細菌總數的測定有哪幾中方法
現在一般是用平板計數法，以前的標準是用營養瓊脂，新標准時用平板計數瓊脂。還可以用快速測試紙檢驗。前者比較普遍。
❸ 如何測定乳酸菌的含量
菌種的分離 取lmL鹵汁以10倍遞增稀釋方法（一份酸奶，九份無菌水，再取一份第一隻管中溶液，加九份無菌水，依次類推），將其稀釋至1/10～10的-10次冪（我打不上去），然後從不同濃度稀
釋液中分別取lmL傾注在平皿中，再倒入培養基相混合，待培養基凝固後倒置於30~C恆溫下
培養48h。挑取長勢良好的單個茵落劃線分純，直至純化(茵落單個大小一致，革蘭氏染色鏡
檢，茵體一致)。結果分離得到3株不同菌株，分別編號為菌株1、菌株2、菌株3。再分別轉移
到試管斜面上進行保存。
分離用培養基：牛肉膏5g，蛋白腖10g，氯化鈉5g，蒸餾水1 000 mL，瓊脂20g，pH7．0—7．2
；保存用斜面培養基：酵母膏1％ ，碳酸鈣2％ ，葡萄糖1％ ，瓊脂2％ ，pH 7．0。
培養條件
將分離出的菌株1、菌株2、菌株3分別接種在上述4種不同的培養基上，
在30。【=恆溫條件下培養48h後觀察並測定其培養結果。
測定方法 菌落總數採用逐級稀釋法來計數；pH值用pHS一2C酸度計測定；乳酸定性
及含量測定依據食品檢驗技術
1I．2．1乳酸菌的分離與篩選的試驗程序 自然發酵酸奶---稀釋---培養---挑起單菌落染色、鏡檢一挑
選革蘭氏陽性球菌單菌落一Ⅲ號培養基一挑選溶鈣圈大的球菌反復在Ⅲ號培養基上幾次純化篩選一單菌落優
良菌株一試管穿刺低溫保存。
1．2 1．2 乳酸菌的鑒定 用光學顯微鏡、放大鏡進行乳酸菌的形態特徵鑒定。生理生化特徵鑒定：產乳
酸定性試驗——乳酸紙層析法0- 、過氧化氫酶(接觸酶)反應�6�8、明膠水解反應 、硫化氫反應 、乳酸菌
發酵營養型試驗0 、耐鹽、酸、溫度試驗。
1．2．I．3 乳酸菌的保存�6�8 採用定期移植低溫保藏法。培養基配方：葡萄糖1％ 、蛋白腖0 2％ 、
l(}l2PQ|0．2％、瓊脂20％、pH值7 0，分裝試管，121。c滅菌30min。將使用對數生長期後期的細胞進行穿刺
培養，然後密封存於冰箱玲藏室內(5qc左右)，2個月移植1次。
1．2．2 分離乳酸菌的生理特點試驗
1 2 2．1 最適生長溫度的測定OD值以同溫下不接種培養基作對照，定期取出接種培養基在721分光光度
計上，用最大吸收光波長 =6001RIifl測定。
1．2．2．2 生長周期的測定oD值(方法同上)；pH值：PHB一4pH計；可滴定酸(以乳酸計)：吸取ImL菌液
加入9Ⅱ1L蒸餾水，加入1～2滴酚酞，用0．1NNaOH滴定。
1．2 2．3 最適pH值的測試、最適鹽濃度的測試。
供試樣品及培養基
分離用樣品：酸奶、酸奶及西紅柿均為市售
分離用培養基：①BCP培養基：酵母膏2 5g，蛋白腖5g，葡萄糖5g，溴甲酚紫0 04g，瓊脂15g，
蒸槽水lO00ml，pH7 0；②MRS培養基見文獻 。
菌種保藏用培養基：脫脂乳培養基：新鮮牛乳離心去掉上層乳脂，下層奶液分裝試管，105℃
滅菌20mln。
菌利 鑒定用培養基見文獻 6。
1 2 方法
1 2 1 乳酸菌的分離純化 取泡菜汁、酸奶、西紅柿表面洗液進行梯度稀釋，分別用傾注法、塗布
法和劃線法在BCP和MRS培養基平板上進行菌種分離。挑取在BCP平板上有透明目的菌落，在
MRS平扳上有溶鈣圈的菌落，反復純化至純種，挑菌至脫脂牛奶試管中保存
1．2 2 乳酸菌復篩對初篩菌株進行革蘭氏染色，保留革蘭氏陽性菌株．並對其所產乳酸能力進
行定性、定量分析，篩選出產酸高的菌株保存，再把產酸高的菌株經蘿l、汁發酵 】，進一步選擇產
酸高、_l】味純正的菌株保存鑒定
1 2 3 乳酸定性測定果用紙層析法。溶劑系統為乙醇：濃氨水：水=80：5：15，顯色劑為0 04％
的溴甲酚紫酒精溶液。層析時將乳酸、檸檬酸配成1％ 的標准溶液，兩種標准溶液 及乳酸發酵液
均點樣3 ．上行層析，顯色與標准樣比較
1．2 4 乳酸的定量測定採用氣相色譜法，利用苄酯化法制備乳酸衍生物，將待測乳酸菌株在產
酸培養基內37"C培養3d，離心。取上清液剃備衍生物，氣相色譜分析含量。氣相色譜工作條件為：
EGS色譜柱，柱溫160'C，氣化溫度180'17．，檢測器溫度l70"C，載氣為N，。
1．2 5 菌種鑒定根據《簡明第八版伯傑細菌鑒定手冊》 和《一般細菌常用鑒定手冊》[6 對復篩
出的菌株的形態、生理生化、碳源利用等方面進行系統鑒定，並提取乳酸菌株DNA，採用熔鏈溫度 .
❹ 如何檢驗酸奶中的乳酸菌要具體的實驗步驟和方法及原理
太麻煩的，要有條件，把樣品稀釋後，例如估計含乳酸菌的量，稀釋到每毫升大約30-300個左右，再用特殊的平板培養基，添加了1%碳酸鈣的平板培養基，採用傾注法與呈液體狀態的40度含碳酸鈣的瓊脂營養培養基混合，倒制於90毫米在小平皿中，培養後，長出菌落，同時，菌落周圍有透明圈的，就是乳酸菌，還可以計數，再剩稀釋倍數，還可得含量。
❺ 乳品中大腸桿菌檢測國標GB/T4789.38-2008的具體步驟及達標的標准
第一法大腸桿菌MPN 計數
操作步驟
6.1、 樣品的稀釋
6.1.1、 固體和半固體樣品：以無菌操作取259 樣品，置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液的無菌均質杯內，8000r / min ～1000r/ min 均質1 min～2 min ，製成l:10 樣品勻液，或置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液的無菌均質袋中，用拍擊式均質器拍打1 min～2 min 製成1:10 的樣品勻液。
6.1.2、 液體樣品：以無菌吸管吸取樣品25 mL 置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液的無菌錐形瓶（瓶內預置適當數量的玻璃珠）中，充分振搖，製成1:10 的樣品勻液。
6.1.3、 樣品勻液的pH 值應在6.5～7.5 之間，必要時分別用1mol/L 氫氧化鈉（NaOH）或1mol/L 鹽酸（HCI）調節。
6.1.4、 用1mL 無菌吸管或微量移液器吸取1:10 樣品勻液1mL ，沿管壁徐徐注人盛有9 mL 磷酸鹽緩沖液的無菌試管中（注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面），振搖試管或換用1支1mL無菌吸管或吸頭反復吹打，使其棍合均勻，製成1:100 的樣品勻液。
6.1.5、 根據對樣品污染狀況的估計，按上述操作，依次製成10 倍遞增系列樣品勻液。每遞增稀釋1次，換用1支1mL無菌吸管或吸頭。從制備樣品勻液至樣品接種完畢，全過程不得超過15 min 。
6.2、 初發酵試驗
每個樣品，選擇3 個適宜的連續稀釋度的樣品勻液（液體樣品可以選擇原液）。每個稀釋度接種3 管月桂基磺酸鹽胰蛋白陳（LST ）肉湯，每管接種1 mL（如接種量超過1 mL ，則用雙料LST 肉湯）。36℃±1℃ 培養24h±2h ，觀察小倒管內是否有氣泡產生，如未產氣則繼續培養至48h±2h 。記錄在24h～48h 內產氣的LST 肉湯管數。如所有LST 肉湯管均未產氣，即可報告大腸桿菌MPN 結果；如有產氣者，則進行復發酵試驗。
6.3、 復發酵試驗
用接種環分別從所有培養48h±2h 內發酵產氣的LST 肉湯管中取培養物1 環，移種於已提前預溫至45 ℃ 的EC 肉湯管中，放人帶蓋的44.5℃ ±2 ℃ 水浴箱內。水浴的水面應高於肉湯培養基液面，培養24h±2h ，檢查小倒管內是否有氣泡產生，如未產氣則繼續培養至48h ±2h 。記錄在24h 和48h 內產氣的EC 肉湯管數。如所有EC 肉湯管均未產氣，即可報告大腸桿菌MPN 結果；如有產氣者，則進行EMB 平板分離培養。
6.4、 伊紅美藍平板分離培養
輕輕振搖各產氣管，用接種環取培養物劃線分別接種於EMB 平板，36 ℃ ±1 ℃ 培養18h～24h 。檢驗平板上有無具黑色中心有光澤或無光澤的典型菌落。
6.5、 營養瓊脂斜面或平板培養
從每個平板上挑5 個典型菌落，如無典型菌落則挑取可疑菌落。用接種針接觸菌落中心部位，移種到營養瓊脂斜面或平板上，36 ℃ ±1 ℃ ，培養18h～24h 。取培養物進行革蘭氏染色和生化試驗。
6.6 、生化試驗
6.6.1、 靛基質試驗：將培養物接種蛋白陳水，36 ℃±1℃ 培養24h±2h 後，加Kovacs 靛基質試劑0.2 mL～0.3 mL ，上層出現紅色為靛基質陽性反應。
6.6.2 、MR -VP 試驗：將培養物接種MR -VP 培養基，36 ℃ ±1 ℃ 培養48h±2h 。移取培養物1mL至13 mm×100mm 試管中，加5 % α-蔡酚乙醇溶液0.6mL、40 ％氫氧化鉀溶液0.2mL 和少許肌酸結晶，振搖試管後靜置2h ，如出現伊紅色，為VP 試驗陽性。
將MR 一VP 培養液的剩餘部分再培養48h 後滴加5 滴甲基紅指示劑。培養物變紅色，為甲基紅試驗陽性，若變黃色則為陰性反應。
6.6.3、 檸檬酸鹽利用試驗：將培養物接種Koser 氏檸檬酸鹽肉湯，36℃±1 ℃ 培養96h±2h,記錄有無細菌生長。
6.7、 大腸桿菌MPN 計數的報告
大腸桿菌為革蘭氏陰性無芽胞桿菌，發酵乳糖、產酸、產氣，IMViC 生化試驗為＋＋- -或-＋- -。只要有1 個菌落鑒定為大腸桿菌，其所代表的LST 肉湯管即為大腸桿菌陽性。依據LST 肉湯陽性管數查MPN 表，報告每克（或毫升）樣品中大腸桿菌MPN 值。
第二法大腸桿菌VRB - - MUG 平板計數法
8、樣品稀釋
按6.1 進行。
9、 檢驗
選取2 個～3 個適宜的連續稀釋度的樣品勻液，每個稀釋度分別取1 mL 注人兩個無菌平皿。另取1 mL 稀釋液注人一個無菌平皿中，作空白對照。將45 ℃±0.5 ℃ 的VRB 瓊脂10 mL～15 mL 傾注於每個平皿中。小心旋轉平皿，將培養基與樣品勻液充分混勻。待瓊脂凝固後，再加3 mL～4mL VRB-MUG 瓊脂覆蓋平板表層。凝固後翻轉平板，36 ℃±1 ℃ 培養18h～24h 。選擇菌落數為10～ 100 的平板，暗室中360 nm～366 nm 波長紫外燈照射下，計數平板上發淺藍色熒光的菌落。
檢驗時用已知MUG 陽性菌株（如大腸桿菌ATCC 25922 ）和產氣腸桿菌（如ATCC 13048 ）做陽性和陰性對照。
10、 大腸桿菌平板計數的報告
兩個平板上發熒光菌落數的平均數乘以稀釋倍數，報告每克（或毫升）樣品中大腸桿菌數，以CFU/g ( CFU /mL ）表示。
第三法大腸桿菌PetrifilmTM 測試片計數法
12、 樣品稀釋按6.1 進行。
13、 檢驗
13.1、 接種和培養
選取2 個～3 個適宜的連續稀釋度的樣品勻液，每個稀釋度接種兩張測試片。將測試片置於平坦實驗檯面，。揭開上層膜，用吸管吸取樣品勻液1ml勻液垂直滴加在測試片的中央，將上層膜緩慢蓋下，避免氣泡產生和上層膜直接落下，將壓板（平面底朝下）放置在上層膜中央處，輕輕地壓下，使樣品勻液均勻覆蓋於圓形的培養膜表面，切勿扭轉壓板。拿起壓板，靜置至少1 min 以使培養基凝固。將測試片的透明面朝上置於培養箱內，堆疊片數不超過20 片，36℃±1 ℃ 培養。肉、家禽和水產品，培養時間為24h±2h；其他食品，培養時間為48h±2h 。
13.2、 判讀
可肉眼觀察計數，或用菌落計數器、放大鏡、PetrifilmTM 自動判讀儀計數。藍色有氣泡的菌落確認為大腸桿菌，不論藍色的深淺，部分藍色的帶氣泡菌落也判定為大腸桿菌。圓形培養膜邊緣及邊緣以外的菌落不計數。當測試片出現大量氣泡、不明顯的小菌落，培養區呈藍色時，需要進一步稀釋樣品勻液，重新檢驗。 14 大腸桿菌測試片計數的報告
選擇菌落數在15～150 之間的稀釋度，兩張測試片菌落平均數乘以稀釋倍數，即為每克（或毫升）樣品中大腸桿菌數，以CFU/g ( CFU/mL ）表示。
如果所有稀釋度測試片上的菌落數都小於15 ，計數最低稀釋度測試片上的平均菌落數乘以稀釋倍數報告；如果所有稀釋度的測試片上均無菌落生長，以「小於1 乘以最低稀釋倍數」報告；如果所有稀釋度的菌落數都大於150 ，計數最高稀釋度測試片上的平均菌落數乘以稀釋倍數報告。計數菌落數大於150 個的測試片時，可計數一個或兩個具有代表性的方格內的菌落數，換算成單個方格內的菌落數後乘以20 ，即為測試片上估算的菌落數（圓形生長面積為20 cm " ）。
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