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汁液檢測方法

發布時間:2023-07-03 20:00:56

『壹』 植物病毒檢測的血清學技術都有哪些

植物病毒的外殼是一種核蛋白,在蛋白的表面帶有抗原決定簇,當植物病毒進入動物體內時,即可產生與抗原相應的抗體,這種帶有抗體的血清即為抗血清。相應的抗原抗體之間可產生專化性的結合,即抗體只能與其相應的抗原結合並產生一定的反應,此即血清反應。這種反應在植物體外也能進行,根據這種反應可以測定兩種病毒間的關系。因而,血清學檢測成為植物病毒的重要鑒定技術。常見的血清反應主要有以下幾種:

中和反應:使含有植物病毒的汁液與相應抗血清中的抗體充分結合,當抗體過量時,可將所有植物病毒抗原全部吸收掉,此時因植物病毒汁液中已沒有病毒粒子存在而失去侵染性。此即為中和反應,不僅可對植物病毒進行定性,還可用於定量測定。

沉澱反應:將一系列稀釋度的抗原(病毒)和一系列稀釋的抗體(抗血清)分別混合,在兩者稀釋比例適宜范圍內可出現沉澱物,此即為沉澱反應。此類反應如:微量沉澱反應,瓊脂雙擴散反應,及免疫電泳等,都是在植物病毒檢驗中最常見的血清學技術。

凝集反應:把病毒的抗體先吸於一種與免疫無關的顆粒表面,然後使其與相應的抗原結合而出現的凝集,即為凝集反應。常用於吸附抗體的顆粒有皂土、乳膠、炭末、血細胞、A蛋白等。

抗體標記:對抗體用熒光素、酶或同位素等進行標記,然後通過對標記物的檢測追蹤抗原,常用的有酶聯免疫吸附、熒光免疫、同位素免疫實驗等,這類檢測技術靈敏度極高,適於對微量抗原的檢測。

現將在植物檢疫中常用的幾種血清學技術介紹於下。

1.微量沉澱反應

在溶有抗原的溶液內按適當比例加入抗血清時,抗原與抗體互相結合而沉澱。其方法如下:

(1)用蠟筆在培養皿底部各劃8條橫豎線形成方格。

(2)取兩排小試驗管,每排7~8個,一排用於抗原,一排用於抗血清,每試管中加0.2ml的緩沖液。

(3)制備1mg/ml純化病毒原液,在抗原稀釋排中加0.2ml原液於第一試管,用1ml的移液管再從中吸0.2ml移至第二管,然後再移0.2ml於第三管,一直移到最後一管,各管的稀釋度分別為原液的1/2至1/128。

(4)在小試管中加1.5ml含0.025%防腐劑NaN3的緩沖液,在緩沖液內混入0.1ml未稀釋的抗血清,制備出1/16稀釋度的抗血清作為原液;在第二排的第一試管中加0.2ml的原液,混合後移0.2ml至第二管,如此一直到最後一管,制備出1/32~1/2048的稀釋系列的抗血清。

(5)用微量移液管從抗血清最高稀釋度(1/2048)開始,在培養皿的第七橫排的每個方格滴加1滴,同樣將1/1024稀釋度的抗血清加到第六橫排,這樣將板上所有的方格均滴加各種稀釋度的抗血清。

(6)用另一移液管從最稀的抗原液開始,在第七縱排每方格內滴加1滴,按同樣方法在第一至第七縱排各方格內滴加各種稀釋度的抗原。在所有第八橫排和縱排的方格內滴一滴緩沖液做對照。隨後在反應液滴上復蓋一層液體石蠟油防止蒸發。

(7)將制備好的培養皿在室溫濕潤環境下孵育2h後,在暗室用雙目解剖鏡觀察,然後在普通冰箱內過夜,第二天繼續觀察結果,此時沉澱已清晰可見。

以最濃的沉澱為四,以下逐漸減弱的梯度分別記為三、二、一,以三為抗原最大稀釋度和產生沉澱的最小血清用量,作為抗原抗體最適比例

微量沉澱技術測定抗原抗體最適反應濃度表

(8)實際測定時,用最適稀釋度的抗血清與其相應的抗原和異種抗原進行反應,或用最適稀釋度的抗原與其相應的抗血清和異種抗血清進行反應,均可觀察它們間的血清學關系。如表0-4-2所示,

微量沉澱技術測定多種抗原間血清學關系表

各供試抗原的稀釋度為1.56mg/ml,與1/4至1/1024的不同稀釋度的抗血清反應結果表明,第一、二、五、六、七橫排的抗原與抗血清的相應抗原是相同的,第三、四兩排抗原與抗血清的相應抗原雖然不同,但有一定親緣關系,第八、十排抗原則與抗血清的相應抗原有遠緣關系或無血清學關系,第九排的抗原則完全無關。

2.瓊脂雙擴散試驗

瓊脂凝膠的含水量極高,允許分子質量20萬u以下的大分子物質自由通過,絕大多數的抗原和抗體分子質量都在20萬u以下,在瓊脂凝膠中的運動所受阻力甚小,可自由擴散,免疫雙擴散就是應用這一原理,在一塊瓊脂凝膠板上打幾個小孔,分別置入抗原及其相應抗體,抗原與抗體分別向凝膠中擴散,形成濃度梯度,在抗原抗體濃度最適比例處,形成肉眼可見的抗原抗體結合物的沉澱帶,帶的大小形狀數量和密度決定於所測試的抗原抗體的特性。本法適於檢測植物粗汁液、澄清液和高度純化的抗原。試驗時需設置健康植物汁液及標准抗原作為陰性和陽性對照。本法的特點是可同時檢測一種抗原對多種抗體,或一種抗體對多種抗原間的血清學關系,對病毒的鑒別極為方便。缺點是靈敏度較低,抗血清用量大,檢測時間長。具體檢測技術如下:

(1)稱取瓊脂加入適當的緩沖液中,用水浴或微波爐加熱至瓊脂溶解,按0.1%加疊氮化鈉。置培養皿或玻璃平板於水平檯面,當瓊脂冷卻至60℃時,倒適當量於板上厚2mm(50mm*9mm的板需9ml,100mm*13mm的板需26ml)。靜置至凝固。

(2)將模式圖置於板下,用打孔器打孔,挑除孔中瓊脂,孔的排列有多種形式,常用的排列,由一個中央孔和周圍六個孔組成,孔的直徑7mm,周圍孔與中央孔的距離為3~4mm。

(3)用緩沖液或生理食鹽水在小試管中稀釋抗原,在周圍孔中加最適稀釋度的抗原,在中央孔中加最適稀釋度的抗血清。外圍孔中加倍比稀釋系列的抗原,中央孔加倍比稀釋系列的抗血清,產生緻密狹窄的沉澱線的組合為最適濃度。

(4)將培養皿在保濕環境下進行孵育,次日在暗背景下觀察沉澱線出現情況。在印有排列模式團的紙上,圖記沉澱線的形式,沉澱線圖形可用照相或染色保留。

(5)結果的判斷:根據沉澱線的形狀分析抗原與抗體,及抗原互相間的關系。

對長形病毒進行瓊脂雙擴散檢測時,可在瓊凝膠介質中加入十二烷基磺酸鈉(SDS),此劑為一種陽離子表面活性劑,可將病毒裂解成具有抗原活性的可擴散的片斷利於檢測。

3.對流免疫電泳

在以瓊脂凝膠為介質的情況下,免疫球蛋白帶有微弱負電荷不能抵消電滲作用,故在電泳時向負極遷移,而一般抗原蛋白帶有較強的負電荷,抵消電滲後仍向正極遷移。依此設計的對流免疫電泳是將瓊脂電泳與免疫沉澱相結合的方法,將抗原病毒放在瓊脂凝膠靠近陰極一側,抗體放在靠近陽極一側,在直流電場中,抗原遷向正極,免疫球蛋白遷向負極,相遇後形成免疫沉澱線。具體技術如下:

(1)凝膠床的制備。取定量瓊脂粉用蒸餾水浸泡2~3d,每日換水1~2次,用硼酸緩沖液配成1%~1.2%的瓊脂液,加0.1%疊氮化鈉。將玻璃放在水平台上用吸管將緩沖液瓊脂注到板面,製成2mm厚的凝膠床並打孔。

(2)將制好的凝膠床放在電泳槽內,加緩沖液(用配製瓊脂凝膠的緩沖液稀釋1倍)離床面2~4cm,在瓊脂板陰極一端孔中加入抗原,在靠陽極一端孔中加入特異性抗血清,在瓊脂床的兩端用兩層紗布使瓊脂板與電泳槽中的緩沖液相連,進行電泳。

(3)進行電泳時,電壓、電流和時間,根據緩沖液離子強度、電泳床大小和抗原性質而有所不同。只要不使病毒抗原變性,盡量保持較高的電壓,如電流超過2mA,電泳應在低溫下進行。

(4)電泳完畢後,將電泳板放在黑色背景處觀察,也可將電泳完畢的瓊脂凝膠板先浸在生理食鹽水中30min,然後放在苦味酸溶液中20min,可將背景染成黃色,沉澱為白色,便於觀察。

免疫電泳與瓊脂雙擴散相比有三個優點,快速、靈敏並可用於在瓊脂中擴散慢的長形病毒。

4.乳膠凝集試驗及A蛋白乳膠凝集試驗

用特異性抗血清提純的免疫球蛋白,將其吸附在乳膠粒子上,制備抗體免疫球蛋白致敏乳膠。當與相應的抗原相遇時即可產生凝集反應。這是一種靈敏度高特異性強的血清學技術,但是每次都要特異性抗血清提取抗體γ球蛋白,制備手續繁雜不便應用,如直接用抗血清致敏乳膠則顯著影響效果。其後Querfurth(1979)發現A蛋白可吸附免疫球蛋白且不影響與相應抗原結合。這樣就可先使A蛋白與乳膠粒子結合,再與抗血清中的免疫球蛋白結合,形成A蛋白-乳膠-免疫球蛋白的復合體。這種乳膠凝集試驗可簡化致敏免疫球蛋白的過程,而獲得同樣效果。具體做法如下。

(1)免疫球蛋白致敏乳膠的制備。

將特異抗血清用33%飽和硫酸鹽析法提取球蛋白,懸浮於0.05mol/L、pH7.2的Tris-HCl(含0.02%PVP)緩沖液內,取10%空白乳膠稀釋15倍後與等量適宜濃度的球蛋白液混合,置室溫2h後移入冰箱內過夜。經低速離心(7000r/min,20min)取沉澱懸浮於緩沖液內,經反復離心洗滌2次後將最後沉澱物懸浮於緩沖液內即可得抗體球蛋白的致敏乳膠。

(2)A蛋白乳膠致敏抗體的制備。

將市售A蛋白溶於0.1mol/L、pH8.2的甘氨酸緩沖液內,製成A蛋白溶液,與等量稀釋15倍的空白乳膠液混合,置室溫3h,移入冰箱過夜。低速離心(7000r/min20min)後將沉澱懸浮於甘氨酸緩沖液,反復離心洗滌2次,沉澱懸浮於甘氨酸緩沖液制備A蛋白乳膠溶液,與等量適宜稀釋度的抗血清混合,置室溫下3h後移入冰箱過夜。再反復離心洗滌2次,最後將沉澱懸浮於與抗血清等等量的甘氨酸緩沖液內,即可得A蛋白乳膠致敏抗體。

(3)檢測法。

用0.05mol/L、pH7.2的Tris-HCl緩沖液(含0.02%PVP,0.02%NaN3)按等倍比稀釋抗原,製成20、40、80、160、320、640、1280的系列濃度,在一潔凈玻璃板上,用筆畫好方格,每格加2滴不同稀釋度的抗原,然後再加1滴乳膠致敏抗體(或A蛋白乳膠致敏抗體)用微量血液振盪器以120r/min振盪混合後,用肉眼或10~25倍解剖鏡觀察結果。同時設空白乳膠液和健汁液對照。

陽性反應表現有明顯的絮狀或顆粒狀凝集物,背景清明透亮,陰性反應則仍為均勻的牛乳狀液。也可用濁度計檢測其凝集度。

此法受健康植株蛋白的干擾較小,適於直接采自病株的澄清液,不但適合球狀病毒,對桿菌狀病毒,棒狀病毒,線狀病毒也適用,並有較高的靈敏度。但對效價低的抗血清或含有乳狀膠體的植物不適用。

5.酶聯免疫吸附試驗

酶聯免疫吸附試驗是一種固相吸附和免疫酶技術相結合的方法,將抗原或抗體包被在固相支持物上,使免疫反應在固體表面進行,並藉助標記在抗體上的酶與底物所產生的顏色,檢測相應的抗原。此法靈敏度高,特異性強,快速簡便極適宜植物檢疫應用。常用的檢測方法有以下幾種:

(1)直接法。

將待測樣品抗原(病毒)加入聚乙烯多孔板內,保溫後洗滌,使附著於壁上的抗原與加入的酶標抗體γ球蛋白反應,洗滌後保留與抗原結合的酶標γ球蛋白,加入酶的底物,用分光光度計進行檢測。

(2)間接法。

先用抗兔球蛋白山羊抗體與酶結合制備酶標記抗體,將待檢抗原包被於固相載體,經過孵育洗滌,加入特異性兔抗血清,孵育洗滌後加羊抗兔酶標記抗體,孵育洗滌後加入底物,觀察結果。

(3)雙抗體夾心法。

先將特異抗體免疫球蛋白包被於固相載體,保溫洗滌後,加待測抗原,使與吸附於載體上的抗體反應,保溫洗滌後再加入特異抗體的酶標記物,最後加底物觀察反應結果。

(4)A蛋白酶聯法。

將A蛋白用pH9.6的甘氨酸緩沖液稀釋後包被微板,加入特異性抗血清,使其與已固定在微板上的A蛋白結合,再加入待測抗原使其與特異性抗體反應,再加入特異性抗體,使其與抗原反應,再加酶標記A蛋白,最後加酶的底物測其光密度值。

(5)異種動物雙抗體夾心法。

先將第一抗體(兔血清抗體)包被微量反應板,加待測抗原後,加適宜濃度的第二抗體(鼠腹水抗體),再加入市售羊抗鼠酶標記物,最後加底物觀察反應,一般8h即可得出結果。此法保持了雙抗體夾心法快速准確靈敏度高的特點,對球狀病毒、桿狀病毒、線狀病毒、棒狀病毒均可應用。抗體不必純化可直接使用(但未純化的抗血清需先選擇其最適工作濃度),使用市售酶標記物,可省去制備酶標記抗體的復雜手續,還可克服間接法非特異性反應干擾大的弱點。

(6)生物素抗生物素酶聯法。

生物素具有很強的親和力,是抗原抗體反應的1萬倍,兩者一旦結合就難以離解,且不受酸鹼變性劑蛋白溶解酶及有機溶劑的影響,具有高度穩定性,生物素一經活化可與蛋白質呈偶聯結合,即一個大分子可結合多個生物素分子,生物素又可大量結合在酶標記物上,使酶標記物成為多價,而抗生物素本身又是一個多價分子,每一亞基均可結合一個生物素分子,因此,這種方法可產生多級放大,使靈敏度提高10倍以上,並降低非特異性反應,把酶聯免疫吸附技術又提高一步。具體方法如下:

先將第一特異抗體(兔抗體或鼠腹水抗體)包被在固相載體,加待檢抗原,加第二特異性抗體(鼠腹水抗體或兔抗體),再加入相應生物素化(羊抗鼠或羊抗兔)免疫球蛋白,再加抗生物素酶結合物,最後加入底物觀察O.D.值。

(7)膜上斑點酶聯法。

先用軟鉛筆在一張適宜大小的硝酸纖維素膜上劃好邊長1cm的方格網,把纖維素膜浸入TBS緩沖液漂洗30min,然後將膜放在兩張濾紙之間,在室溫下風干,用移液器將抗原抽提液滴在各方格中央,室溫下風干,用TBS-T緩沖液(含0.5%Tween的TBS液)洗膜5min,取出後放在濾紙上至膜表面水滴消失,然後浸入封閉液(含1%牛血清蛋白,和2%聚乙烯吡咯烷酮的TBS-T液),在37℃下保溫1h,取出晾乾後,浸在用封閉液稀釋的第一抗體溶液,在37℃下保溫1h,用TBS-T液洗膜10次,每5min換液一次。將膜浸入稀釋度1/200的酶聯球蛋白,室溫保溫1h,用上法洗膜後,用鹼性磷酸酯酶緩沖液沖洗兩次,每次10min,將膜浸入酶底物溶液內,室溫下避光5~15min,顯色完全後棄去底物液,用終止液(10mmol/LTris-HCl,pH7.5,5mmol/LEDTA)洗膜30min,置膜於濾紙內徹底風干後觀察結果。

此法可克服塑料板的不足,只用目測就可對結果定性,不需要復雜的儀器,所需抗原抗體量均很少,靈敏度比常規酶聯法高10倍以上,適合大量抗原的檢測。

6.免疫電鏡

電鏡檢測可快速確定病毒粒子的形狀,是鑒定病毒不可缺少的技術,但有的樣品濃度很低,用普通的電鏡技術不易觀察,如將病毒粒子包被後,抗體可把病毒粒子捕捉成聚集物便於觀察。同時還可從病毒粒子與抗體的結合情況,觀察兩者間的血清學關系。通常使用的有以下幾種方法:

(1)葉片浸沾血清技術。

把一滴稀釋的抗血清,滴在有膜的銅網上,將葉片的新鮮切口浸入血清滴中1~2s,置於室溫下5~10min,使血清與相應的病毒聚集並裝飾起來,再進行負染檢鏡。

(2)Derrick氏法。

把火棉膠膜銅網在24℃下,置於按1∶10比例稀釋於Tris緩沖液的抗血清內,然後將銅網用緩沖液沖洗後使用。把病毒的粗提液稀釋於含HCl的Tris緩沖液內,將已用血清包被的銅網浮於0.1ml的病毒稀釋液內1h(24℃),先用Tris-HCl液再用水沖洗,然後乾燥噴鍍。

(3)聚集法。

把抗血清用磷酸緩沖液稀釋到1/100的濃度,取10μl滴於載玻片,將切成2mm見方的病葉在血清滴中壓碎,在濕室中保濕15min,用鑷子持有膜銅網蘸取液滴,用20倍磷酸緩沖液沖洗後,再用蒸餾水洗,最後用5滴醋酸氧鈾染色觀察。

(4)修飾法。

取2mm見方的病葉在載玻片上的10μl蒸餾水中壓碎,持有膜銅網沾此液滴,將病毒粒子吸附於銅網上,然後將銅網用20滴的磷酸緩沖液沖洗,吸去水分後加1滴稀釋成1/100的抗血清,在濕室中保濕15min後,將銅網用20滴磷酸緩沖液和30滴蒸餾水沖洗,最後用醋酸氧鈾染色檢鏡。

(5)誘捕修飾法。

先將銅網用稀釋1/10或1/100的特異性抗血清包被,再把病毒樣品滴於銅網,保濕15min,用緩沖液及蒸餾水沖洗吸干,再加1滴稀釋成1/100的特異性抗血清,孵育15min後,用緩沖液和蒸餾水沖洗,吸干染色檢鏡。

(6)羊抗兔血清誘捕修飾法。

在誘捕修飾法未染色以前,再加1滴稀釋1/20的羊抗兔血清,孵育15min,洗滌後染色鏡檢。此法因病毒粒子外殼包被有兩層血清,明顯加粗,在2000倍的低倍電鏡下即可清晰地看到病毒粒子。

(7)A蛋白誘捕修飾法。

在福爾馬膜的銅網上滴1滴50mg/ml的A蛋白液,孵育後洗去多餘的A蛋白,再包被稀釋100倍的特異性抗血清,滴加抗原,再滴加特異性抗血清,最後染色鏡檢。此法比一般誘捕修飾法靈敏度高,能捕捉更多病毒粒子。

『貳』 怎樣判斷或檢驗牛奶里是否有 增稠劑

牛奶中是否添加了增稠劑,暫時也沒有明確的檢測方法。
但是如果你買到牛奶以後,發現牛奶很稠,而且儲存了很長的時間(指UHT牛奶)沒有出現或輕微的脂肪上浮的現象的話,那麼他一定是添加了增稠劑或乳化劑,因為普通的牛奶並沒有市場上出售的牛奶那麼稠,而且香味也比較弱。目前我知道的是市場上出售的所有的品牌的超高溫產品都加增稠劑和香精,只是不說罷了。

最推薦的是低溫奶,即巴氏殺菌奶。它是在62℃—75℃條件下將牛奶中的有害微生物殺死,保留了對人體有利的細菌和營養物質。但低溫奶不易保存,如果沒有時間每天逛超市,那就要推薦常溫奶了,它是超高溫滅菌奶。高溫滅菌技術則是將牛奶中的細菌全部殺死,營養不如低溫奶,但可長時間保存。
對孩子和老年人來說,應該選擇高鈣奶,因為他們需要更多的鈣。對於普通成年人則無此必要,牛奶中所含的鈣已足夠多了,每天喝300克牛奶可獲約300毫克鈣,加上其他食物中的鈣,基本能夠滿足正常成年人需要。消化不良的病人、老年人和兒童,適合喝酸奶。它易於吸收,促進消化。但應注意酸奶別喝太涼的。對於那些乳糖不耐受者,舒化奶是最為合適的,酸奶也可以。酸奶最好挑選固態的,營養成分比較多。
還原奶是把奶粉按比例加水還原而成的奶,從營養角度而言,還原奶的營養價值低於純鮮奶,但是它的保存時間可達8個月,適合旅遊出行攜帶。
還有乳飲料,它沒有牛奶營養豐富,但其口味多樣,可以適當給孩子換換口味。乳飲料為了口味好,會添加一些香料,所以應該挑選大牌子,以保證安全可靠。

牛奶也不是越新鮮越好 乳製品檢測時間長達十個小時:
國家規定從2007年1月開始,液態奶包裝上標明的生產日期必須為該產品的灌裝日期。牛奶的檢測需要花費很長時間,全程大概要十個小時,由於牛奶是灌裝完成後才進行檢測,因此上市時間一般會晚一到兩天。根據國家對巴氏殺菌乳的檢驗規定,乳製品是按批次抽樣檢測,同一天生產的牛奶為一批次,每批次抽取5袋進行檢測。
檢測分為感觀檢測、理化檢測以及微生物檢測,感觀檢測和理化檢測都有專門的檢測儀,檢測時間只需半小時。而微生物檢測則耗費時間較長,微生物需要在培養基里進行培養,再將培養結果對比國家標准,大約要8-10小時才有初步結果。

選牛奶須避開六大誤區:
天津市營養學會理事長付金如教授告訴筆者,雖然市場上每種牛奶都推行著健康理念,但選牛奶關鍵在於真正的營養含量有多少。消費者在平時的選購中,須避開以下六大誤區。

一、牛奶並非越香濃越好。付教授說,擠出來的牛奶很淡,有一股淡淡的乳香,喝起來非常爽口。但許多企業推出了香濃概念,添加增稠劑和香精,消費者逐漸認為香濃才是牛奶的味道,而真正的純牛奶反而被認為沒味兒或加了水。
二、高鈣牛奶意義不大。付教授說,牛奶本身就是一種含鈣量很高的食物,再往其中加鈣意義不大。並且高鈣牛奶里加的大多是碳酸鈣,這種鈣在人體內的吸收效果並不是很理想。過多地在牛奶中加入鈣、鐵、鋅等無機鹽,如果不能吸收,反而會對人體腎臟以及消化系統造成很大負擔。
三、喝牛奶不是為了補蛋白。不少高端牛奶打著優化蛋白的旗號,付教授表示,牛奶中的蛋白含量其實很低,所以喝牛奶主要不是為了補充蛋白質,而是為了補充B族維生素和鈣。
四、脂肪不一定越低越好。付教授說,每個人對脂肪的需求量並不一樣,血脂高和需要減肥的人以及孕婦可以選擇低脂或脫脂奶。但對於孩子和上班族這種對能量需求比較大的人來說,最好還是喝全脂奶。
五、穀物奶適合做早餐食用。付教授指出,所謂的穀物奶和早餐奶,其中加的大部分是澱粉,沒什麼營養價值,但能讓人產生飽腹感,維持能量的時間比較長,適合早餐時喝。
六、果蔬奶營養太少。付教授說,果蔬奶里添加果粒必須經過高溫處理,營養價值會受很大影響。而它能夠增加的膳食纖維微乎其微,遠不如分開吃更有營養價值。

選擇牛奶產品的七個問題:
一、超市裡牛奶的品種和名目越來越多,高鈣奶、鐵鋅奶、低脂奶、早餐奶、果蔬奶……層出不窮。怎樣選擇適合自己的奶呢?
即便是同一類人群,也有不同體質,所以沒法給他們推薦統一的哪種奶。一般來說,我推薦純的牛奶,什麼都不加。因為牛奶只需要起到牛奶的作用就非常好了,不必越俎代庖,替代其他食品。如果需要果蔬,我們可以自己吃新鮮果蔬,比陪著牛奶高溫高壓滅菌之後的果蔬效果肯定會更好,數量也要多得多。如果早餐食用,我們用牛奶配主食吃就很好,完全不必省掉主食然後喝加了一丁點麥片和大量糖的所謂早餐奶。如果需要補鐵補鋅,直接吃魚、肉、海鮮、堅果之類就好,何必指望奶里加進去的那一丁點鐵和鋅。
二、如何判別買回來的奶是優質奶呢,有什麼簡單易行的判斷方法?
不純的牛奶因為加了糖、香精、增稠劑之類,沒什麼好判斷的方法。如果是純的牛奶,不要用香味或濃厚程度來評判,因為這些都是可以人工添加造出來的。首先看口感是否滑爽。經過標准化和均質處理的牛奶,質感黏稠是不正常的,均勻而滑爽,很容易滑到嗓子里去,才是正常的狀態。把它倒在干凈玻璃杯里,停幾分鍾,再倒出去。如果杯壁上均勻一層薄薄的掛杯,是正常的。但如果杯壁上有細小顆粒、細小團塊,說明原奶曾經有過結塊現象,是原料奶質量不好的表示。然後再品味道,如果有濃香,或者發甜,說明添加了香精或增味劑。牛奶基本上是不甜的,香氣也沒那麼濃烈。但如果有輕微的苦味、酸味等,說明原料質量差。加熱到還沒有沸騰的時候,就發現牛奶有分層或凝聚的現象,說明奶中微生物已經大大超標。
三、所謂的有機奶,比普通奶真的更營養更健康嗎?
有機產品或AA級綠色食品需要從飼料到飼養方式、飼養環境全程遵守相關生產規程,它們的安全性高得多,比如說抗生素殘留很低,農葯殘留也很少,不會使用激素,等等。這樣,對小寶寶的安全是非常有利的。因為寶寶的肝臟沒發育成熟,解毒能力比成年人差,特別是對抗生素會比較敏感。這類產品生產的成本會高得多,產量卻會低很多,價格高一些是非常合理的。但有機並不意味著營養素含量必然高出一截,也不意味著風味比其他奶都更加濃厚。因為不能加任何添加劑,所以它的風味是自然的,不會發甜、濃香、黏稠,而是自然的滑爽狀態。
四、現在超市裡出現的高價盒裝牛奶,宣傳說營養更全面,真的是越貴的牛奶就越好嗎?
商家的宣傳是不能全信的。牛奶的品質未必與價格絕對成正比,因為價格的構成當中包含了包裝、廣告、營銷費用和利潤等很多方面。一般來說,牛奶的紙盒包裝就要好幾毛錢,而這些是消費者享受不到的。大量的廣告也必須讓消費者來買單。你是否願意買,那就是願打願挨的事情了。就我個人所知,沒有發現方盒裝的高檔奶比冰櫃里的巴氏奶營養價值高出那麼多來。
五、包裝上註明的蛋白質和脂肪含量,是不是蛋白質含量越高越好,脂肪含量越低越好?
包裝上的蛋白質、脂肪含量,是牛奶內在品質的反映。牛奶蛋白質含量高一點,的確說明質量好一些,但是否要花兩倍價錢買高15%的蛋白質,決定權在你手裡。2.8%還是3.3%,對於一杯奶來說,只意味著1克蛋白質,只相當於一個雞蛋蛋白質含量的1/6而已。牛奶脂肪含量高一些,意味著它的風味、口感明顯改善。作為喜好來說,多數人更愛喝脂肪多一點的奶,喝脫脂奶實在沒味道,我情願用它來烹調,比如蒸蛋羹,配飲料,或者做麵食。一杯脫脂奶和全脂奶相比,脂肪含量只減少4克,只相當於1/3湯匙的烹調油,其實在一天當中來看,起不到明顯的瘦身作用。
六、盒裝奶和袋裝奶有什麼區別?
因為包裝不同,殺菌條件不同,保質時間和儲藏條件也不同。和牛奶的內在品質不一定有直接的關系。薄塑料袋的冷藏奶只能在冷藏條件下48小時內使用,而屋脊盒裝奶可以在冷藏室放7-10天。枕袋裝奶可以常溫放40天,方盒裝奶可以常溫放8個月。一般來說,冷藏的奶更能保持新鮮牛奶的營養和口味品質。既然家裡有冰箱,既然每周都出去采購兩次,如果不是為了出門攜帶方便,何必要買能放8個月的牛奶呢?從環保角度來說,長時間高溫加熱的奶耗能更多,而常溫奶的紙盒消耗資源也更多,不利於低碳環保。
七、高鈣奶里真的含有高鈣嗎,這些鈣人體能充分吸收嗎?
不一定。奶本身已經含鈣很多,人為再加入鈣是一件莫名其妙的事情。所以國外幾乎見不到什麼高鈣奶。因為很多中國消費者不懂得牛奶本身富含鈣這個事實,商家便打出高鈣奶的牌子來吸引人們購買。我們調查也發現這一點,越是不懂牛奶營養價值的人,越容易受到高鈣奶的誘惑。牛奶加鈣是一件很難的事情,因為外加鈣太多會導致牛奶蛋白質的沉澱,影響口感。因此,加鈣的量是很有限的,遠不如牛奶里原有的鈣那麼多。同時,外加的鈣不一定是牛奶中原有鈣的狀態,沒有人能證明額外加的鈣和牛奶原來的鈣能保持一樣的吸收率。所以,個人建議就買普通牛奶好了。不要被各種概念炒作所誘惑。相信奶牛,要比相信廣告靠譜得多。

養生必知禁忌:牛奶之六不宜:
牛奶的營養價值如此之高,日常生活中我們飲用時,是否方法正確得當,將營養物質完全吸收了呢?下面我們再看看平時喝牛奶時的誤區。
一、牛奶煮沸:
將買回來的牛奶煮沸再喝,可以消毒殺菌,這是很多人的普遍認識,市面上銷售的正規牛奶都是已經過殺菌處理的產品,完全不必再次煮沸。
如果實在不放心,將牛奶在70攝氏度時煮3分鍾,50攝氏度時煮6分鍾就可以達到消毒目的,長時間煮沸就會使牛奶中的乳糖出現焦化現象,而焦糖可誘發癌症,其次煮沸後牛奶中的鈣會出現磷酸深沉現象。
從冰箱里取出的牛奶,加熱到適合飲用的溫度即可。
二、保存牛奶:
牛奶不宜受日光照射,經研究證實,鮮奶中的維生素B1、B2和維生素C遇光在很短的時間內,就會很快消失,因為這三大營養素在陽光下就會分解,造成牛奶營養成分的流失,所以牛奶盡量避光保存。
用微波爐加熱時容器最好有蓋,時間不宜過長。
三、空腹喝牛奶:
空腹喝牛奶,其中大量的蛋白質往往會作為熱能消耗掉,喝到胃中又會形成假飽現象,影響了進食量。
可以在早餐後1至2個小時喝,牛奶在胃中停留的時間較少,不利於人體對蛋白質的消化、吸收和利用。最好吃一些澱粉類的食物,如饅頭、麵包等再喝牛奶。
四、牛奶中加巧克力:
有家長以為,既然牛奶屬高蛋白食品,巧克力又是能源食品,二者同時吃一定大有益處。事實並非如此。
液體的牛奶加上巧克力會使牛奶中的鈣與巧克力中的草酸產生化學反應,生成「草酸鈣」。於是,本來具有營養價值的鈣,變成了對人體有害的物質,從而導致缺鈣、腹瀉、少年兒童發育推遲、毛發乾枯、易骨折以及增加尿路結石等疾病。
五、牛奶與葯物同服:
牛奶中含有許多鈣、鐵離子及微量元素,用牛奶送服葯物如四環素類,二者相互作用,能生成穩定的絡合物或難溶性的鹽。這樣不僅造成牛奶營養素的損失,而且會降低葯物的效力,所以在服葯前後的1—2小時內最好不要喝牛奶。
六、牛奶冷凍:
牛奶遇冷結冰時由外向內發展,即在容器壁的周圍先結冰,中心部分後結冰,這時牛奶中的脂肪、蛋白質分離,乾酪素呈微粒狀態分散於牛奶中,加熱溶化的冰凍牛奶,味道明顯淡薄,汁液呈水樣,降低了營養價值。

『叄』 食品中可溶性固形物的測定常用什麼方法,用什麼儀器

目前最簡單常用的方法就是折光法,用折光儀可直接測出,屬於物理方法

『肆』 怎麼測定蔬菜或水果中維他命C的含量

1、證明蔬菜(水果)中維生素c的存在
2、比較不同蔬菜(水果)中維生素c含量的多少
【實驗原理】
本實驗利用維生素c的還原性,使其與氧化性的i2反應:
澱粉溶液遇到碘會變成藍紫色,這是澱粉的特性。維生素c能與藍紫色溶液中的碘發生作用,使溶液變成無色。通過這個原理,可以用來檢驗一些蔬菜中的維生素c。通過消耗i2的量可以計算維生素c的含量。
【儀器葯品】酸式滴定管,錐形瓶,研缽,碘水,澱粉試液
【實驗步驟】
1、取新鮮蔬菜或水果100克,切碎,磨成糊狀,擠出汁液。
2、取汁液10
ml,加澱粉溶液數滴。
3、用常溫下i2的飽和水溶液進行滴定,至溶液顯藍色。根據不同蔬菜或水果消耗的碘水的量判斷維生素c含量的多少。
【實驗討論】
1、方法選擇:
此方法簡單,操作易行,現象明顯,適合作為中學實驗。
此實驗有兩種操作方法:①用碘水滴定蔬菜或水果汁液,②用蔬菜或水果汁液滴定碘水。對於汁液較少的蔬菜或水果,選擇方法①較合適;對於方法②終點較易判斷,但需要較多的汁液。
2、維生素c的提取:
對於汁液較少的蔬菜或水果,需要使用提取液,可選用的提取液如下:
①2%草酸②...使溶液變成無色;對於方法②終點較易判斷:ph值對此反應有影響、證明蔬菜(水果)中維生素c的存在
2、維生素c的提取,需要脫色可選的脫色劑如下①30%znac溶液和15%k4fe(cn)6②活性炭③白陶土
4,可以用來檢驗一些蔬菜中的維生素c,加澱粉溶液數滴,錐形瓶,可選用的提取液如下、取新鮮蔬菜或水果100克。
2。根據不同蔬菜或水果消耗的碘水的量判斷維生素c含量的多少:
此方法簡單,擠出汁液:為了避免其他物質的干擾,研缽:
對於汁液較少的蔬菜或水果,操作易行。通過消耗i2的量可以計算維生素c的含量,需要使用提取液、比較不同蔬菜(水果)中維生素c含量的多少
【實驗原理】
本實驗利用維生素c的還原性,切碎,碘水。
3。通過這個原理,選擇方法①較合適,但需要較多的汁液。對於汁液較少的蔬菜或水果、用常溫下i2的飽和水溶液進行滴定,使其與氧化性的i2反應:
有些蔬菜或水果汁液顏色較深,對滴定終點的判斷有影響。
此實驗有兩種操作方法。
2、其它問題、脫色劑。
【實驗討論】
1、取汁液10
ml:
澱粉溶液遇到碘會變成藍紫色、方法選擇,磨成糊狀,澱粉試液
【實驗步驟】
1:
①2%草酸②偏磷酸-醋酸溶液
3,適合作為中學實驗,這是澱粉的特性。
5,整個過程不要超過2分鍾。維生素c能與藍紫色溶液中的碘發生作用,②用蔬菜或水果汁液滴定碘水,至溶液顯藍色。
【儀器葯品】酸式滴定管,滴定要迅速,現象明顯:①用碘水滴定蔬菜或水果汁液、滴定速度
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