大腸桿菌檢測方法分為三種:
1、細菌分離鑒定法
分離培養與鑒定:糞便標本直接接種腸道桿菌選擇性培養基。血液先經肉湯增菌,然後轉種血瓊脂平板。其他標本同時接種血瓊脂平板和腸道桿菌選擇性培養基。
37℃孵育18~24小時後,觀察菌落塗片染色鏡檢。腸致病性大腸桿菌須先作血清學定型試驗。必要的時候檢定腸黴毒素。
2、衛生細菌學檢查法
大腸桿菌會不斷隨糞便排出體外,污染周圍環境水源、食品等。取樣檢查時,樣品中大腸桿菌越多,則表示樣品被糞便污染的越嚴重,表明樣品中存在腸道致病菌的可能性也就越大。
大腸菌數指數:指每立升中大腸菌群數,採用乳糖發酵法檢測。中國衛生標準是每1000ml飲水中不得超過3個大腸菌群,瓶裝汽水和果汁中每100ml大腸菌群不能超過5個。
3、全自動微生物定量分析儀(TEMPO)檢測法
全自動微生物定量分析(TEMPO)儀大腸桿菌群計數檢測有TEMPOTC和TEMPOCC兩種方法。
TEMPOTC的開發是為獲得NF ISO4832標准相當性能水平。
TEMPOCC法是TEMPO儀器上根據BAM方法專門用於24h計數食品中大腸桿菌群方法。
(1)益生菌大腸菌群檢測方法擴展閱讀:
大腸桿菌在生物技術中的應用
這些菌株由於失去了細胞壁等重要組分,所以在自然條件下已無法生長。甚至普通的清潔劑都可以輕易地殺滅這類菌株。即便由於操作不慎導致活菌從實驗室流出,也不易導致生化危機。
生物工程用的菌株基因組都被優化過,使之帶有不同基因型(例如β半乳糖苷酶缺陷型),可以更好的用於分子克隆實驗。
真核基因在大腸桿菌中表達,必須有合適的表達載體(Vector),常用載體:pBV220,pET系統。
目的基因在大腸桿菌中表達的情況:
大腸桿菌更適合原核基因的表達,外源基因表達產量與單位體積產量是正相相關的,外源基因拷貝數和表達 產物產量之間存在動態平衡,單個細胞的產量又與外源基因拷貝數,基因表達效率,表達產物的穩定性和細胞代謝負荷等因素有關。
❷ 如何檢測大腸桿菌
大腸菌群測定的操作細則(***研究所測試中心)
大腸菌群系指一群能發酵乳糖、產酸產氣、需氧和兼性厭氧的革蘭氏陰性無芽胞桿菌。該菌主要來於人畜糞便,故以此作為糞便污染指標來評價食品的衛生質量,推斷食品中有否污染腸道致病菌的可能。
食品中大腸菌群數系以100mL(g)檢樣內大腸菌群最可能數(MPN)表示。
1 設備和材料
1.1 溫箱:36±1℃。
1.2 冰箱:0~4℃。
1.3 恆溫水浴 :44.5±0.5℃。
1.4 天平。
1.5 顯微鏡。
1.6 均質器或乳缽。
1.7 平皿:直徑為90mm。
1.8 試管。
1.9 吸管。
1.10 廣口瓶或三角燒瓶:容量為500mL。
1.11 玻璃珠:直徑約5mm。
1.12 載玻片。
1.13 酒精燈。
1.14 試管架。
2 培養基和試劑
2.1 乳糖膽鹽發酵管:按GB 4789.28中4.9規定。
2.2 伊紅美藍瓊脂平板:按GB 4789.28中4.25規定。
2.3 乳糖發酵管:按GB 4789.28中4.10規定。
2.4 EC 肉湯:按GB 4789.28中4.11規定。
2.5 磷酸鹽緩沖稀釋液:按GB 4789.28中3.22規定。
2.6 生理鹽水。
2.7 革蘭氏染色液:按GB 4789.28中2.2規定。
3 操作步驟
3.1 檢樣稀釋
3.1.1 以無菌操作將檢樣25mL(或g)放於有225mL滅菌生理鹽水或其他稀釋液的滅菌玻璃瓶內(瓶內予置適當數量的玻璃珠)或滅菌乳缽內,經充分振搖或研磨做成1:10的均勻稀釋液。固體檢樣最好用均質器,以8 000-10 000 r/min的速度處理1min,做成1:10的均勻稀釋液。
3.1.2 用1mL滅菌吸管吸取1:10稀釋液1mL,注入含有9mL滅菌生理鹽水或其他稀釋液的試管內,振搖試管混勻,做成1:100的稀釋液。
3.1.3 另取1mL滅菌吸管,按上條操作依次做10倍遞增稀釋液,每遞增稀釋一次,換用1支1mL滅菌吸管。
3.1.4 根據食品衛生標准要求或對檢樣污染情況的估計,選擇三個稀釋度,每個稀釋度,接種3管。
3.2 乳糖發酵試驗
將待檢樣品接種於乳糖 膽鹽發酵管內,接種量在1mL以上者,用雙料乳糖膽鹽發酵管,1mL及1mL以下者,用單料乳糖膽鹽發酵管。每一稀釋度接種3管,置36±1℃ 溫箱內,培養24±2h,如所有乳糖膽鹽發酵管都不產氣,則可報告為大腸菌群陰性,如有產氣者,則按下列程序進行。
3.3 分離培養
將產氣的發酵管分別轉種在伊紅美藍瓊脂平板上,置36±1℃ 溫箱內,培養18-24h,然後取出,觀察菌落形態,並做革蘭氏染色和證實試驗。
3.4 證實試驗
在上述平板上,挑取可疑大腸菌群菌落1-2個進行革蘭氏染色,同時接種乳糖發酵管,置 36±1℃溫箱內培養24±2h,觀察產氣情況。凡乳糖管產氣、革蘭氏染色為陰性的無芽胞桿菌,即可報告為大腸菌群陽性。
3.5 報告
根據證實為大腸菌群陽性的管數,查MPN檢索表,報告每100mL(g)大腸菌群的MPN值。
4 糞大腸菌群(faecal coliform)
4.1 用接種環將所有產氣的乳糖膽鹽發酵管培養物(見3.2條)轉種於EC肉湯管內,置44.5±0.2℃水浴箱內(水浴箱內的水面應高於EC肉湯液面),培養24±2h,經培養後,如所有EC肉湯管均不產氣,則可報告為陰性;如有產氣者,則將所有產氣的EC肉湯管分別轉種於伊紅美藍瓊脂平板上,置 培養18-24h,凡平板上有典型菌落者,則證實為糞大腸菌群陽性。
4.2 結果報告
根據證實為糞大腸菌群的陽性管數,查MPN檢索表,報告每100mL(g)糞大腸菌群的MPN值。
❸ 食品微生物的檢測 大腸菌群的測定最好採用什麼方法啊
請問什麼企業的大腸菌群?通常我們都採用多管發酵法,執行標準是HJ/T347-2007。這個方法是B類,還有紙片法,也有不少環保部門採用,但這個方法是C類方法。首選的還是多管發酵法,它屬於經典方法。
我在環保部門從事細菌學項目的測定工作,就採用這種經典方法。對於河流等地表水,或是地表水飲用水源地、城市污水處理廠及肉禽場等企業,都進行水樣中糞大腸菌群的分析。對於地下水及地下水飲用水源地,都進行總大腸菌群的測定。
希望這些對你有幫助。
❹ 檢驗食品中的大腸菌群需要注意的實驗步驟有哪些
食品微生物學檢驗 大腸菌群計數:大腸菌群平板計數法(GB 4789.3-2010)
一 試劑和儀器
煌綠乳糖膽鹽肉湯(BGLB肉湯)
結晶紫中性紅膽鹽瓊脂(VRBA)
恆溫培養箱
自動稀釋儀
均質器
振盪器
二 樣品處理
固體樣品應在無菌條件下充分粉碎。本次演示以乳粉為例,取密封狀態良好的試樣,備用待測。
三 檢測過程
實驗前准備
進入無菌操作室前應更換無菌實驗服,戴帽子、口罩、無菌手套。進入無菌操作室後,首先用鑷子夾取適量酒精棉全面擦拭雙手,然後才能進行實驗操作。
酒精易燃,因此在擦拭雙手的過程中應離開酒精燈火焰一定距離,防止出現危險,待手上的酒精揮發完全後,再進行實驗操作。
樣品的稀釋
取一潔凈無菌均質袋於自動稀釋儀上,用酒精棉充分擦拭樣品袋,將剪刀置於酒精燈外焰上充分灼燒,小心剪開樣品袋。將稱樣勺於酒精燈外焰灼燒片刻,准確稱取25g樣品於無菌均質袋中。用酒精燈外焰灼燒注水口片刻,在盛有樣品的均質袋中注入225mL無菌生理鹽水或磷酸鹽緩沖液。取下均質袋,將均質袋放入拍擊式均質器中,用均質器拍打1min~2min,製成1:10的樣品勻液。
注意:樣品勻液的pH值應在6.5~7.5之間,必要時可用1 mol/L無菌氫氧化鈉或1mol/L無菌鹽酸溶液調節。
均質完畢後,做好標記,將均質袋置於樣品框中。
在裝有9mL生理鹽水的無菌試管上做好標記,用1mL無菌吸管吸取1:10樣品勻液1mL,沿管壁緩緩注入裝有9mL生理鹽水的無菌試管中,稀釋前後試管口都應在酒精燈上灼燒片刻。加塞後於振盪器上混合均勻,製成1:100的樣品勻液。同理,按上述操作,依次製成十倍遞增系列稀釋樣品勻液。稀釋樣品時,注意吸管或吸頭尖端不得觸及稀釋液面;每遞增稀釋1次,換用1支1mL無菌吸管或吸頭。
接種及培養
在事先經滅菌處理的培養皿底部做好標記。根據對樣品污染狀況的估計,選取2~3個適宜的連續稀釋度。本次演示只做1:10和1:100的樣品稀釋液。
用無菌吸管吸取1:10樣品稀釋液1mL,加入到培養皿中,備用。同理,加入1:100稀釋液和空白液。注意,每個稀釋度應接種2個無菌培養皿,空白液即為以1mL生理鹽水代替1mL樣品稀釋液。
加完樣品梯度稀釋液後,即可傾倒培養基。傾倒前應將錐形瓶的瓶口在酒精燈上充分灼燒。灼燒後及時傾注15mL~20mL結晶紫中性紅膽鹽瓊脂於每個培養皿中,小心旋轉培養皿,將培養基與樣液充分混勻。傾注培養基時應將錐形瓶口盡量伸入培養皿內,防止傾倒時培養基掛在培養皿的內壁或外壁上,且傾倒過程應果斷,防止培養基沿錐形瓶外壁流出、滴落。培養基的溫度以46℃為宜,不能過高或過低,溫度過高不利於操作且對菌體有害,溫度過低培養基迅速凝固,菌體不能在培養皿內均勻的分布,導致菌落計數困難。轉動培養基時用力須均勻,防止培養基沾到培養皿上蓋或灑出。
倒完培養基後,靜置培養皿,等待培養基冷卻凝固。
待培養基凝固後,再加3mL~4mL 結晶紫中性紅膽鹽瓊脂覆蓋平板表層。加兩次培養基的主要目的是:使菌體均在培養基內部生長,以便於觀察典型菌落形態。等待培養基冷卻凝固。待培養基凝固後,翻轉平板,置於培養箱中於36℃±1℃條件下培養18h~24h。
平板菌落計數
選取菌落數在15CFU~150CFU之間的平板,分別計數平板上出現的典型和可疑大腸菌群菌落,其中典型菌落的特徵為紫紅色,菌落周圍有紅色的膽鹽沉澱環,菌落直徑為0.5mm或更大。
證實實驗
先在煌綠乳糖膽鹽肉湯管上做好標注。將接種環置於紅外滅菌器中滅菌,再用接種環從結晶紫中性紅膽鹽瓊脂平板上挑取10個不同類型的典型和可疑菌落,分別移種於煌綠乳糖膽鹽肉湯管內,振搖均勻。每次接種後都應及時將接種環在滅菌器中滅菌。將接種完的煌綠乳糖膽鹽肉湯管置於培養箱中,於36℃±1℃條件下培養24h~48h。培養完畢後,觀察煌綠乳糖膽鹽肉湯管中產氣情況。凡管內倒管有氣泡者,即可報告為大腸菌群陽性。
❺ 食品中大腸桿菌的檢測
用大腸桿菌顯色培養基,檢測原理:蛋白腖和酵母膏粉提供碳氮源和微量元素;氯化鈉可維持均衡的滲透壓;瓊脂是培養基的凝固劑;十二烷基硫酸鈉抑製革蘭氏陽性菌;混合顯色底物分別與大腸菌群和大腸桿菌所對應的酶發生特異性反應,水解底物,釋放出顯色基團,在淡黃色平板上大腸菌群產生橙紅色的菌落,大腸桿菌產生藍綠色的菌落。
資料出自環凱官網。
❻ 腸道致病菌的分類及常用檢測方法
根據可培養細菌的數量分類在腸道菌群中,可以培養到的細菌有400餘種,依據其數量多少可以分為主要(優勢)菌群(predominant microflora)和次要菌群(sub—dominant microflora)。
①主要(優勢)菌群:指腸道菌群中數量大或種群密集度大的細菌,一般在10~10cfu/g以上,包括類桿菌屬、優桿菌屬、雙歧桿菌屬、瘤胃球菌屬和梭菌屬等專性厭氧菌,通常屬於原籍菌群。優勢菌群是對宿主發揮生理功能的菌群,在很大程度上影響著整個菌群的功能,決定著菌群對宿主的生理病理意義。
②次要菌群:數量在10~10cfu/g以下,主要為需氧菌或兼性厭氧菌,如大腸桿菌和鏈球菌等,流動性大,有潛在致病性,大部分屬於外籍菌群或過路菌群。
檢測方法:
1、采樣及稀釋
(1)按無菌操作法將檢樣25g(或25mL)放於含有225mL無菌水的三角瓶中(瓶內預置適當數量的玻璃珠)或滅菌乳缽內,經充分振搖或研磨做成1:10的均勻稀釋液。固體檢樣最好用無菌均質器,以8000~10000r/min的速度離心1min,做成1:10的稀釋液。
(2)用1mL滅菌吸管吸取1:10稀釋液1Ml,注入含有9mL無菌水的試管內,振搖混勻,做成1:100的稀釋液,換用1支lmL滅菌吸管,按上述操作依次作l0倍系列稀釋液。
(3)根據食品的衛生要求或對檢驗樣品污染情況的估計,選擇三個稀釋度,每個稀釋度接種3管。也可直接用樣品接種。
2、乳糖初發酵試驗
即通常所說的假定試驗。其目的在於檢查樣品中有無發酵乳糖產生氣體的細菌。將待檢樣品接種於乳糖膽鹽發酵管內,接種量在1mL以上者,用雙倍乳糖膽鹽發酵管。
lmL及1mL以下者,用單倍乳糖膽鹽發酵管。每一個稀釋度接種3管,置36±1℃溫箱內,培養24±2h,如所有乳糖膽鹽發酵管都不產氣,則可報告為大腸菌群陰性,如有產氣者,則按下列程序進行。
3、分離培養
將產氣的發酵管分別劃線接種於伊紅美藍瓊脂平板,置36±1℃溫箱內培養18~24h,然後觀察菌落形態並作革蘭氏染色、鏡檢並作復發酵試驗。
4、乳糖復發酵試驗
即通常所說的證實試驗,其目的在於證明經乳糖初發酵試驗呈陽性反應的試管內分離到的革蘭陰性無芽胞桿菌,確能發酵乳糖產生氣體。
在上述選擇性EMB培養基上,挑取可疑的大腸菌群菌落1~2個進行革蘭染色,同時接種乳糖發酵管,置36±l℃溫箱內培養24±2小時,觀察產氣情況。
凡乳搪發酵管產氣,革蘭染色為陰性反應的無芽胞桿菌,即報告為大腸菌群陽性;凡乳糖發酵管不產氣或革蘭染色為陽性,則報告為大腸菌群陰性。
(6)益生菌大腸菌群檢測方法擴展閱讀:
有益菌菌群的生理功能:
如果腸內有益菌菌群占優,腸內黏膜呈現粉紅色,表示腸內環境相當良好。
1、吸收水分,糞便較軟,較易排泄
在胃部分解消化的食物,經由小腸吸收營養後,成為粘稠狀物體送至大腸。然後再經過18小時將水分及礦物質吸收,就變成容易排泄的糞便。腸道內環境良好時,糞便的軟硬適中,排便會較為順利。
2、緩和的蠕動,能順利將糞便排出
藉由腸的蠕動,將糞便緩慢的推送至肛門。如果蠕動過快或太慢,都將影響糞便的構成,導致便秘或者腹瀉。而如果腸內干凈,則蠕動的速度就相當的有規律,糞便可順利排出。
3、有助維他命的合成
比菲德氏菌等好菌能維護肌膚的健康,並具有合成有助熱量產生的維他命B1、B2及B6等,以及與止血、骨骼形成有關的維他命K等之功用。健康的腸道,好菌會不斷繁殖,維他命的合成也可順利進行。
4、迅速排出有害物質
健康的腸道並非完全沒有壞菌的存在,有害物質多少會產生。當然還包括,吃進體內的食品化學添加物或是無法成為營養成分的物質。只要腸內環境良好,這些物質在開始危害身體前就被排出體外。
5、避免病原菌的侵害
比菲德氏菌等好菌可以刺激並提高身體的免疫機能,而且易引起食物中毒等病原菌因具怕酸特質,所以像是含有好菌的乳酸飲料或健康食品等,都可抑制病原菌在腸內繁殖。
腸道有益菌菌群除了以上功能之外,對人體還有營養作用,如糖尿病、高血壓、高血脂等。B族維生素和非必需氨基酸對人類的毛發具有重要的作用,當缺少這些營養元素,會導致頭發脫落或毛發發黃、發叉,容易折斷等現象。
❼ 怎麼檢驗飲料中的大腸桿菌
大腸桿菌檢驗(包括(一)檢驗方法;(二)培養基 )
(一)檢驗方法
1.乳糖發酵試驗。以無菌操作採取樣品,採取量及稀釋倍數,依據國家或當地衛生標准要求及樣品污染情況而定。將待檢樣品接種於乳糖膽鹽發酵管內,接種量在l m J以上者,用雙料乳糖膽鹽發酵管,lm1及1mI以下者,用單料乳糖膽鹽發酵管。每一稀釋度接種3管,置36±l℃溫箱內,培養24±2小時,如所有乳糖膽鹽發酵管都不產氣,則可報告為大腸菌群陰性;如有產氣者,則按下列程序進行。
2.分離培養。將產氣的發酵管分別轉種在伊紅美藍瓊脂平板上,置36±l℃溫箱內,培養18~24小時,然後取出,觀察菌落形態,並作革蘭氏染色和證實試驗。
3.證實試驗。在上述平板上,挑取可疑大腸菌群菌落l~2個進行革蘭氏染色,同時接種乳糖發酵管,置36±1℃ 溫箱內培養24±2小時,觀察產氣情況。凡乳糖管產氣,革
蘭氏染色為陰性的無芽胞桿菌,即可報告為大腸菌群陽性。
4.報告。根據證實為大腸菌群陽性的管數,查MPN檢索表,報告每l 00ml(g)大腸菌群的最可能數。
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(二)培養基
①乳糖膽鹽發酵培基
成分:蛋白腖:20g
豬膽鹽(或牛,羊膽鹽):5g
乳糖:10g
0.04%溴甲酚紫水溶液: 25m1
蒸餾水: 1 000m1
製法:將蛋白腖、膽鹽及乳糖溶於水中,校正pH,加入指示劑,分裝每管l 0ml,並放入一個小倒管,高壓滅菌115℃15分鍾。
附註:雙料乳糖膽鹽發酵培基除蒸餾水外,其他成分加倍。
用途:乳糖發酵試驗用。
原理:細菌分解糖類是依靠細菌細胞所產生的各種酶類的作用,細菌產生的分解糖類的酶,隨細菌種類不同而異,可以此來鑒別細菌。
乳糖是雙糖,細菌分解雙糖的酶大多是胞外酶。乳糖被乳糖酶水解成葡萄糖和半乳糖,葡萄糖可直接被細菌利用,而半乳糖則需在細胞內轉化為葡萄糖後再被利用。
糖發酵試驗主要是測定細菌分解糖類以後所產生的酸,以培基pH降低(指示劑變色)作為觀察結果的指標。
大腸桿菌等細菌在酸性環境中,由於甲酸脫氫酶的作用,可使甲酸分解成CO2和H2,在培基中產生大量氣體,進入倒管中,以便觀察。
註:常用於供發酵試驗的各種糖類、醇類和糖苷類(見表3-1)
②伊紅美藍瓊脂培基
成分:蛋白腖 10g
乳糖 10g
磷酸氫二鉀 2g
瓊脂 17g
2%伊紅Y溶液 20ml
0.65%美藍溶液 10ml
蒸餾水 1000ml
pH7.1
製法:將蛋l白腖、磷酸鹽和瓊脂溶解於蒸餾水中,校正pH,分裝於燒瓶內,高壓滅菌121℃15分鍾備用。臨用時加入乳糖,並加熱溶化瓊脂,冷至50一55℃,加入伊紅和美藍溶液,搖勻,傾注平板。
原理:大腸菌群細菌發酵乳糖產酸,使伊紅與美藍結合而成黑色化合物,故菌落呈黑紫色,有時還可產生金屬光澤。黑色程度與光澤產生情況與伊紅、美藍二者比倒有關。不發酵乳糖的細菌(如沙門氏菌、志賀氏菌)則為無色菌落。
③乳糖發酵培基
成分:蛋白腖 20g
乳糖 10g
O.04%溴甲酚紫水溶液 25ml
蒸餾水 1000ml
pH7.4
製法:將蛋白腖及乳糖溶於水中,校正pH,加入指示劑,按檢驗要求分裝30ml、10ml或3ml,並放入一個小倒管,高壓滅菌115℃15分鍾。
附註: 』
(1)雙料乳糖發酵管除蒸餾水外,其他成分加倍。
(2)30ml和10ml乳糖發酵管專供醬油及醬類檢驗用.3ml乳糖發酵管供大腸菌群
證實試驗用。
4.蛋白腖水
成分:蛋白腖(或胰蛋白腖) 20g
氯化鈉 5g
蒸餾水 1 000ml pH7.4