多糖的鑒別方法

Ⅰ 如何區分單糖和多糖

單糖：不能水解的多羥基醛或多羥基酮。如葡萄糖、果糖等。

二糖：水解後生成兩分子單糖的糖。如蔗糖、麥芽糖等。

多糖：能水解生成許多分子單糖的糖。如澱粉、糖原、纖維素等

Ⅱ 怎樣鑒別單糖,多糖和二糖

看糖是否還能水解單糖不能水解，例如葡萄糖，核糖，脫氧核糖，果糖二糖可水解兩個單糖，例如蔗糖，麥芽糖，乳糖多糖可水解多個單糖，先水解為多糖小分子，後水解為二糖，最後水解為單糖，例如澱粉，纖維素，糖原

Ⅲ 如何鑒別真假黃芪多糖

但加入葡萄糖能提高其檢驗濃度。 看顏色優質黃芪多糖為淡黃色或類白色；
被氧化過的黃芪多糖為紅糖色或咖啡色，活性很低！不要使用。
注意：很多廠家在黃芪多糖葯粉中加入葡萄糖，應付葯檢所檢驗，但仔細觀察黃芪多糖葯粉顏色會發現裡面有白色的小顆粒。
吸濕性是黃芪多糖固有特性，不能改變！
換句話講如果黃芪多糖不吸潮了，那它就不是黃芪多糖了，但通過工藝的改進可使黃芪多糖吸潮性降低，因此不吸潮的黃芪多糖目前來講是不存在的。
實驗鑒別實驗原理：黃芪多糖不溶於80%酒精，75%的酒精也能鑒別。
將待檢黃芪多糖倒入75%或80%的酒精中，若：
A：黃芪多糖抱團，且酒精清澈，則為優質黃芪多糖。

Ⅳ 糖類的鑒定有哪些應用

1. Fehling試驗：生葯的水浸液加Fehling試劑，於沸水浴加熱數分鍾，若有還原性糖類成分存在，則產生磚紅色氧化亞銅沉澱。若有非還原性低聚糖及多糖存在，則必須加稀酸水解後，才能與Fehling試劑呈陽性反應。
2. Molish試驗：生葯水浸液，加a -萘酚試劑數滴，搖勻後沿管壁滴加濃硫酸，若有糖類成分與甙類存在，則在二液面交界處出現紫紅色環。 醫學教.育網搜集整理
3. 成脎試驗：生葯的水浸液與鹽酸苯肼液共熱，只要有糖類成分存在，即生成黃色的糖脎結晶。鏡檢結晶，可視結晶的形狀而鑒定出糖的種類。
4. 層析法：取生葯浸出液（多糖類需水解），以某種糖為對照品一起進行層析檢測。常用紙層析法，正丁醇-乙酸-水（4 : 1 : 5上層）作展開劑，新配製的氨化硝酸銀溶液為顯色劑，結果還原糖形成黑色斑點。
以上資料僅供參考。

Ⅳ 怎麼鑒定多糖,單糖,低聚糖和苷類,

單糖用斐林試劑可以鑒別出；多糖用碘；聚合度很低的低聚糖與糖苷可以用鹼水解然後再用斐林試劑鑒別，糖苷不反應。 最好使用HPLC，看圖譜

Ⅵ 如何用化學試劑鑒別單糖雙糖多糖

糖類有分為單糖，二糖，多糖。多糖一般為澱粉利用碘溶液可以鑒別，至於單糖可以利用酶作催化劑水解多糖過程，驗證其產物，單糖又包括醛糖和酮糖，可利用溴水檢測出醛糖，因為醛糖還原性可使其褪色，或者使用新制氫氧化銅懸濁液，或者銀氨，苯肼溶液等都可以，其實還可以利用糖類旋光度不同來檢測

Ⅶ 單糖與多糖怎麼鑒別

單糖多是還原性糖，可用斐林試劑檢驗。（麥芽糖除外）

Ⅷ 用什麼方法鑒定糖

鑒定糖是一個很嚴謹的過程，這並不是什麼簡單的方法就能鑒定的。糖為多羥基醇與多羥基醛類化合物，由於化學結構隨便變動一個氫就可以變成另外一種物質，所以這里給出具體的測定流程。
在有標准品的情況下：
首先，通過紙層析法、凝膠柱色譜法進行分離，得到單個化合物（多糖化合物）。之後，將此化合物通過一定的試劑水解成眾多單糖化合物。用氣相色譜和凝膠柱層析分析，與眾多標准品進行比較如：葡萄糖、半乳糖、甘露糖、阿拉伯糖、半乳糖醛酸等。採用三種以上的不同展開劑展開，對比比移值，如果比移值三次以上都是同樣的數字，那麼可以說是同一種物質。從而，確定此為什麼物質。在通過氣象色譜法-質譜法連用，進行官能團的結構內連接、排列與數量的分析。
在沒有標准品的情況下：
如果是未知物質，沒有標准品的話。可採用四大光譜聯合應用並與儀器分析進行聯合分析。
四大光譜：紫外光譜，核磁共振，紅外光譜，質譜。
將四大廣譜數據匯總，進行大量計算。如還不能判斷是什麼物質的不話。如果物質結晶，則可考慮用X射線單晶衍射（X射線單晶衍射，是世界上最先進的檢測結構的方法了）。
相關知識拓展：隨著科技的發展，鑒定物質的方法已經不僅僅局限於上述方法。網傳的什麼「鑒定還原糖」的方法。這里說一句：這種方法不過是利用了某些糖的性質而已，並不代表所有糖都有。鑒定不是鑒別，需要說出具體結構以及內部分子鏈接方式，這些不可能是一個簡單的化學反應就可以鑒定出來的。如果本體題目說的是「鑒別」，那麼方法會簡單很多，可以把糖分成還原糖與非還原糖兩種進行分別鑒別。但是本題說的是鑒定，那麼就不能通過簡單的方法進行測定。

Ⅸ 多糖類的分析方法

下面將簡單介紹化學方法和物理分析方法。⑴化學方法測定多糖結構還是目前最常用的方法，測定的手段很多，其中經典而有效的是甲基化分析、高碘酸氧化和Smith降解、部分酸水解以及乙醯解和甲醇解等。① 乙醯解：多糖的乙醯解反應是在由乙酸酐、乙酸和硫酸組成的混合液中加熱進行的，在一定的糖苷鍵處裂解。研究表明，相同糖苷鍵在酸水解和乙醯解中的速度是不同的。乙醯解是酸水解的一種有用的補充，多糖可從這兩種不同的方法中獲得不同的片段，從不同的角度獲得多糖的結構信息。甲醇解：多糖在80-100℃條件下與無水甲醇氯化氫反應能將多糖變成組成單糖的甲基糖苷，這些甲基糖苷能轉化為三甲基硅醚衍生物或乙醯基衍生物，然後進行GC分析並與標准單糖對照，可得到組成多糖的各單糖的定量數據。⑵物理分析法 ①IR法：IR在多糖結構分析上主要是確定吡喃糖的苷鍵構型，以及常規觀察其他官能團。一般主要觀察730-960cm-1的范圍，如對於α-吡喃糖，δC1-H在 845 cm-1，而β-吡喃糖，δC1-H在890cm-1有最大吸收峰。②MS、GC-MS：GC分析多糖雖受樣品揮發性和熱穩定性的限制，但GC-MS是多糖結構分析不可缺少的工具，特別是對水解單糖、甲基化單糖及甲基化寡糖的分析，而且能鑒別出糖的異構體。MS在多糖結構分析中不僅在鑒別各種甲基衍生物的碎片，確定各種單糖殘基的連接位置時必不可少，而且由於FAB-MS、ESI-MS和 MALDI-MS等技術的出現，利用質譜還可以測定多糖的分子量及一級結構。③NMR：用NMR技術研究多糖結構的一個特點是不破壞樣品，對多糖的結構特徵可通過化學位移、偶合常數、積分面積、NOE及馳豫時間等參數來表達。一維、二維圖譜 NMR在分析糖的構型、相互連接的位置及順序等方面具有廣闊的應用前景。2、分子量及分子量分布多糖具有分子大小不均一的特點，近年來發現這些生物大分子的某一分子量范圍成分具有葯理活性，而另一分子量范圍的成分不具有葯理活性或具有一定的毒副作用，因此分子量及其分布既是這類葯物的有效性控制的指標又是安全性控制的指標，質量標准中制訂該項檢查十分必要，這也是近年來大分子聚合物葯物質量標准發展的一個明顯的特點。多糖分子量只是代表相似鏈長的平均配布，不同方法所測得的分子量不同，即使是同一多糖，其重均分子量與數均分子量也相差較大，通常採用凝膠色譜法控制這類葯物的分子量及其分布，應經研究選用與供試品分子大小相適應的色譜柱填充劑；使用的流動相通常為水或緩沖液，其pH值不應超過填充劑的耐受范圍，可加入適量的有機溶劑，但濃度不應超過30%，流速以 0.5-1.0ml/min為宜，因這類分子多無紫外吸收，一般採用示差折光檢測器，選用對照品的分子量范圍及顆粒形狀應與供試品匹配，測定數據經適宜的GPC軟體處理求得相關參數。3、含量測定一般來講，多糖不含蛋白和氨基酸，蛋白或氨基酸檢測應呈陰性或符合限度檢查要求，如為糖蛋白或糖肽，應提供其證據，以保證產品不是多糖與蛋白的混合物；並提供其氨基酸構成及蛋白含量范圍，以保證質量穩定可控。對從天然植物中得到的多糖，在結構研究中尤其對糖組成分析，確定其中是否含有糖醛酸殘基具有很重要的意義。糖醛酸的含量測定目前較常用的是硫酸咔唑法，但容易受中性糖殘基的干擾。為了消除測定的干擾，可先測定樣品中中性糖的吸收度，然後從樣品的吸收度減去中性糖的吸收度，即為樣品中糖醛酸的吸收度值。間羥基聯苯法也是一種常用的多糖中糖醛酸含量測定方法，該法較硫酸咔唑法受中性糖殘基的干擾更小。多糖的含量測定可分為兩大類：一類是直接測定多糖本身，如高效液相色譜法和酶法；另一類是利用組成多糖的單糖縮合反應而建立的方法，如苯酚-硫酸法、蒽酮-硫酸法等。前者需要多糖的純品和特定的酶，後者測定時方法學干擾較大，現有的比色重現性差，受影響因素多。但由於目前國內的實驗條件，多糖的含量仍然主要採用這種方法，其原理為：多糖在濃硫酸水合產生的高溫下迅速水解，產生單糖，單糖在強酸條件下與苯酚反應生成橙色衍生物。在波長490nm左右處和一定濃度范圍內，該衍生物的吸收值與單糖濃度呈線性關系，從而可用比色法測定其含量，所用的單糖對照品盡量採用與其多糖組成一致或為含量較高的單糖，這樣測得的值較准確。需要強調的是，這種方法所測定的是總糖的含量而不是總多糖的含量，因此首先應測定樣品中游離的單糖含量，然後將總糖的含量減去游離單糖的含量，即為總多糖的含量。另外還可以採用3，5-二硝基水楊酸比色法（DNS法），它是在鹼性條件下顯色，較准確測定還原糖與總糖的含量從而求出多糖的含量，可消除還原性雜質的干擾。

Ⅹ 糖類的鑒別

戊糖與強酸共熱，可脫水生成糠醛（呋喃醛）。己糖會分解成甲酸、二氧化碳、乙醯丙酸以及少量羥甲基糠醛。糠醛和羥甲基糠醛能與某些酚類作用生成有色的縮合物，不同糖類與不同酚類反應，會出現不同結果。利用這些顏色反應可以進行糖的鑒別。

用來鑒別糖與非糖的有兩個反應：Molisch反應和蒽酮反應。Molisch反應以奧地利植物學家Hans Molisch命名，是用α-萘酚和濃硫酸與糖反應，生成紫紅色。具體做法是在少量樣品（如1毫升1%葡萄糖溶液）中加入幾滴莫氏試劑（3%α-萘酚乙醇溶液），混勻後傾斜試管，沿管壁緩慢加入1毫升濃硫酸。立起試管後溶液分為兩層，界面處有紫紅色環出現，所以又叫紫環反應。

Molisch反應為陰性可以確定無糖存在，如果為陽性則表明樣品中可能含有糖，但不能確定是單糖、寡糖、多糖、糖苷還是糖的衍生物，如糖醛酸等。該反應很靈敏，濾紙屑也會造成假陽性。丙酮、甲酸、乳酸、草酸等都會產生近似的顏色，干擾該反應。果糖濃度過高時會由於濃硫酸的焦化作用而呈褐色。另外，濃硫酸如果直接與莫氏試劑反應，會生成綠色，影響觀察。所以操作中加入莫氏試劑時，應該直接滴加到樣品中，不要碰到試管壁，以免影響實驗結果。下圖中右側試管底部的綠色應該就是試管壁上殘留的萘酚造成的。

蒽酮（10-酮-9，10-二氫蒽）反應原理與之相似，產物為藍綠色，在620nm有吸收，常用於定量測定總糖。色氨酸使反應不穩定。

鑒別酮糖與醛糖一般用Seliwanoff 試劑（間苯二酚和濃鹽酸），酮糖在20-30秒內生成鮮紅色，醛糖反應慢，顏色淺，增加濃度或長時間煮沸才有較淺的粉紅色。含有酮糖的多糖或寡糖（如蔗糖）會因為酸水解而產生顏色。該反應以俄羅斯化學家Theodor Seliwanoff命名。

Seliwanoff反應陽性結果，引自維基網路
鑒定戊糖的Bial反應以德國醫生Manfred Bial命名。Bial試劑（含0.025%氯化鐵，0.2%地衣酚的濃鹽酸）與戊糖在沸水中生成藍綠色物質，可能沉澱，但可溶於正丁醇。該反應以前常用於RNA定量，吸收峰為670 nm。己糖生成灰色或棕色沉澱，很容易區分，且不溶於正丁醇。

鑒定單糖的Barfoed反應由丹麥化學家Christen Thomsen Barfoed發明,原理類似費林反應。半縮醛羥基在微酸性條件下與乙酸銅反應，生成氧化亞銅的磚紅色沉澱。單糖還原快，在30秒到3分鍾內顯色，而寡糖要在20分鍾以上。樣品水解、濃度過大都會造成干擾，NaCl也有干擾。