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液相色譜的檢測方法

發布時間:2023-03-02 12:06:07

① 苯並(a)芘的高效液相色譜法測定

方法提要

利用正己烷-液-液萃取、固相萃取C18柱-二氯甲烷淋洗等提取水樣中苯並[a]芘,提取液經硅膠柱凈化、濃縮、定容後,高效液相色譜-紫外-熒光檢測器串聯分離檢測,外標法定量。

方法適用於地下水、地表水、飲用水及污水等水樣中苯並[a]芘的分析,其中固相萃取適用於潔凈水分析。方法檢出限隨儀器靈敏度和樣品基質而定。當取樣量為1.0L潔凈水時,本方法檢出限為0.50ng/L。

儀器與裝置

高效液相色譜儀帶紫外檢測器和熒光檢測器。

固相萃取裝置。

旋轉蒸發儀。

恆溫水浴氮吹儀。

振盪器。

帶聚四氟乙烯活塞的1L分液漏斗。

固相萃取C18柱1000mg,6mL。

硅膠凈化柱1000mg,6mL。

分析柱WastersPAHsC18液相色譜專用柱,250mm×4.6mm,粒徑5μm;或性質相似的液相色譜柱,250mm×4.6mm,粒徑5μm。

離心機。

試劑與材料

無水硫酸鈉、氯化鈉優級純,在600℃高溫爐中灼燒4h放置在乾燥器中備用。

正己烷、二氯甲烷、丙酮等均為農殘級。

甲醇HPLC級。

替代物標准p-三聯苯稱取固體三聯苯替代物標准,以甲醇溶液溶解、定容,並用甲醇逐級稀釋為10.0μg/mL儲備液。替代物標准1-氟萘100.0μg/mL,有證標准物質。替代物標准均在-18℃下保存備用。

標准儲備溶液苯並[a]芘,-18℃下避光保存,購自國家標准物質中心。

1L棕色樣品瓶。

針頭過濾器及注射器針頭過濾器型號孔徑0.45μm,直徑4mm,聚四氟乙烯濾膜。

樣品採集與保存

采樣前不能用水樣預洗采樣瓶,採集時樣品要充滿整個樣品瓶,不留氣泡。樣品采滿後迅速放置在低溫冷藏箱中並盡快送實驗室檢測,到達實驗室後樣品應盡快轉移至4℃冷藏設備中保存。7d天內完成樣品提取、40d內完成檢測。苯並(a)芘對光敏感。在樣品採集、運輸、儲存以及分析全過程應盡可能避光操作,防止光解。

分析步驟

1)試樣提取。

a.液-液萃取。將1.0L水樣倒入預先加有30gNaCl的1L分液漏斗中,待NaCl溶解後加入50mL正己烷、5μL10.0μg/mL的p-三聯苯替代物標准溶液;並用20mL丙酮淋洗樣品瓶,淋洗液轉入分液漏斗,振盪5min。靜置10~20min,將水相轉移至原樣品瓶,正己烷相轉入150mL平底燒瓶中。原樣品再進行第二次萃取,萃取方法同第一次,正己烷量減少為30mL。合並正己烷相,並加入3g無水硫酸鈉,稍稍搖動,觀察有無結塊現象,如有結塊,需補加無水硫酸鈉至沙狀,繼續放置20min,之後過濾至另一150mL平底燒瓶中,濾液旋轉蒸發濃縮至約3mL。如果是潔凈地下水,樣品可以不凈化,直接轉移至KD濃縮瓶中,氮氣吹掃至0.3mL,加入甲醇0.5mL,氮氣吹掃至0.3mL,再加甲醇0.50mL,氮氣吹掃至0.3mL,最後甲醇定容1.0mL,0.45μm濾膜過濾,HPLC測定。如污染較重,則需凈化。凈化方法見2)樣品凈化。

b.固相萃取(適用於潔凈水樣)。將固相萃取C18柱(1000mg,6mL),安放在固相萃取裝置上,用10mL二氯甲烷淋洗C18柱,再用10mL甲醇分兩次淋洗C18柱(第二次甲醇浸泡5min),最後用10mL空白水分兩次淋洗,等待上樣。在活化過程中不要讓柱子流干。在要富集的1.0L水樣中加入5g氯化鈉、40ng替代物標准p-三聯苯、30mL甲醇等混勻後樣品以5mL/min的流速流過已活化的C18柱。樣品流完後真空乾燥3min後取下C18柱,以3000r/min離心10min除水。除水後的C18柱安裝回固相萃取裝置,用5mL二氯甲烷浸泡C18柱5min後自然流下,收集洗脫液。用4mL二氯甲烷洗滌樣品瓶並與樣品洗脫液合並。洗脫液中加入1g無水Na2SO4,振搖後放置15min,用滴管將洗脫液轉移至25mLKD濃縮瓶中,用2mL二氯甲烷洗滌Na2SO4相後並入KD濃縮瓶,加入0.5mL甲醇,氮氣吹掃至0.5mL,再入甲醇1.0mL,氮氣吹掃到0.5mL,最後甲醇定容至1.0mL,過濾HPLC測定。

2)試樣凈化。凈化硅膠柱預先用10mL10%丙酮-正己烷溶液、10mL正己烷活化後,待正己烷接近硅膠頂層時迅速將待凈化樣品提取液轉入柱中,先用5mL正己烷淋洗,棄之,再用25mL正己烷-二氯甲烷(1+1)混合溶液淋洗,淋洗液用KD濃縮瓶承接,氮氣濃縮,甲醇換相、最後定容至1.0mL,過濾HPLC測定。

3)校準曲線。用甲醇分別稀釋1.93μg/mL苯並[a]芘二級標准溶液,配製成0ng/mL、1.93ng/mL、9.65ng/mL、19.3ng/mL、28.9ng/mL、38.6ng/mL標准系列,每個標准系列點加入4μL的10.0μg/mL三聯苯替代物標准溶液。通過濃度與對應峰面積建立標准曲線。

4)高效液相色譜分析條件。流動相為甲醇溶液,流速1.2mL/min(恆流方式),柱溫40℃。紫外檢測器(UV):波長254nm。熒光檢測器(FLD):0~6min,激發波長(Ex)250nm,發射波長(Em)370nm;6~15min,激發波長294nm,發射波長430nm.。

5)定性及定量分析。

a.定性分析。採用試樣中待測目標物保留時間與標准目標物保留時間相比較的方式進行定性分析。檢測方法採用熒光和紫外串聯檢測的方式。特別當有干擾存在時,應仔細分析熒光和紫外色譜圖排除干擾。如果試樣中待測目標物含量達到方法檢出限5倍以上,需GC-MS確證。

b.定量分析。採用熒光和紫外串聯檢測的方式進行定量分析。以熒光檢測定量為主,對有干擾存在應結合紫外檢測情況綜合確定。外標法定量。再根據試樣測定濃度、稱樣量計算出試樣中濃度。目標化合物峰面積和定量校準曲線可以由高效液相色譜儀工作站自動完成,定量校準曲線也可由EXCEL工作軟體完成。對自動積分的峰面積應逐一檢查各峰基線,對不合理基線進行必要修正。

對含量接近檢出限水平的試樣,可以採用與其濃度相近的標准單點校正。對於含量超過校準曲線上限的試樣應稀釋或減小取樣量,使其峰面積保持在校準曲線的線性范圍內,重新測定。

6)方法性能指標。分別配製質量濃度為19.3ng/L的苯並[a]芘、40ng/L三聯苯的空白加標試液1L,按試樣分析步驟進行分析,獲得方法精密度和加標回收率分別為2.07%和81.1%~93.0%(n=6)。

上述苯並[a]芘校準曲線的線性方程是y=55947x-5570.5,相關系數R2=0.9999。

將質量為3.86ng的苯並[a]芘標准分別加入到1.0L空白水樣中,餘下同試樣分析,以3倍信噪比對應濃度作為方法檢出限,其方法檢出限為1.00ng/L。

色譜圖的考察(圖82.9):

圖82.9苯並[a]芘標准高效液相色譜圖(熒光檢測)

質量控制

每批試樣或至多20個試樣必須至少進行一個全流程試劑空白、一個平行雙樣和基體加標分析,以監測分析流程中玻璃器皿、試劑、溶劑和其他硬體帶來的干擾和與之相關的試樣分析精度,加標濃度不得低於原始試樣的背景濃度。

當分析超過 8h 或每分析 10 個試樣後,應用標准曲線中等濃度的確證標准檢查儀器的工作狀態,確證標准與最初標准相比偏離大於 20%,需重新測定標准系列; 若偏離仍大於 20%,需重新配製標准曲線和分析試樣。

替代物標准三聯苯 (或 1-氟萘) 回收率: 應為 65%~130%; 若不在限值之內,需要重新檢查並確認計算、替代標物准、儀器是否問題。

注意事項

苯並 (a) 芘是強致癌物,提取液濃縮及凈化過程應在通風櫃中進行,必要時戴防毒面具、手套以減少對人體的危害。

② 高效液相色譜儀(HPLC)檢測水中的多環芳烴的方法

高效液相色譜儀檢測水中的多環芳烴;此方法適用范圍:僅適用於水中的多環芳烴的檢測

取樣;取1000mL水樣(富集時可根據水質情況適當增減),加入5g氯化鈉和10mL甲醇待凈化。凈化;SPE柱:WelchromCI8E(500mg/6ml)活化:10ml二氧甲烷、10ml甲醇以及10ml水上樣:將處理好的水樣加入到SPE柱洗脫:10ml正已烷分三次洗脫,收集洗脫液,60°CN濃縮近干,用乙睛定容至1ml,供HPLC分析色譜條件;試驗儀器:APS80-16PLUS高效液相色譜儀色譜柱:APS-C18(250mmx4.6mm,5μm)柱溫:20°C進樣量:20μl流速:1.0ml/min流動相:甲醇-水採用梯度洗脫:如表1所示

③ 高效液相色譜法測定中葯含量採用的方法有哪些

遵照下面的要求選擇合適的方法,HPLC法外標、內標兩種,檢測器一般UV即可.
含量測定分析方法驗證的可接受標准簡介
摘要:本文介紹了在對含量測定所用的分析方法進行方法學驗證時,各項指標的可接受標准,以利於判斷該分析方法的可行性.
關鍵詞:含量測定 分析方法驗證 可接收標准
在進行質量研究的過程中,一項重要的工作就是要對質量標准中所涉及到的分析方法進行方法學驗證,以保證所用的分析方法確實能夠用於在研葯品的質量控制.為規范對各種分析方法的驗證要求,我國已於2005年頒布了分析方法驗證的指導原則.該指導原則對需要驗證的分析方法及驗證的具體指標做了比較詳細的闡述.但是文中未涉及各具體指標在驗證時的可接受標准,國際上已頒布的指導原則中也未發現相關的要求.另一方面,大多數葯品研發單位在進行質量研究時,已逐步認識到分析方法驗證的必要性與重要性,大都也在按照指導原則的要求進行分析方法驗證,但驗證完後卻因沒有一個明確的可接受標准,而難以判斷該分析方法是否符合要求.本文結合國外一些大型葯品研發企業在此方面的要求,提出了在對含量測定方法進行驗證時的可接受標准,供國內的葯品研發單位在進行研究時參考.
1.准確度
該指標主要是通過回收率來反映.驗證時一般要求分別配製濃度為80%、100%和120%的供試品溶液各三份,分別測定其含量,將實測值與理論值比較,計算回收率.
可接受的標准為:各濃度下的平均回收率均應在98.0%-102.0%之間,9個回收率數據的相對標准差(RSD)應不大於2.0%.
2.線性
線性一般通過線性回歸方程的形式來表示.具體的驗證方法為:
在80%至120%的濃度范圍內配製6份濃度不同的供試液,分別測定其主峰的面積,計算相應的含量.以含量為橫坐標(X),峰面積為縱坐標(Y),進行線性回歸分析.
可接受的標准為:回歸線的相關系數(R)不得小於0.998,Y軸截距應在100%響應值的2%以內,響應因子的相對標准差應不大於2.0%.
3.精密度
1)重復性
配製6份相同濃度的供試品溶液,由一個分析人員在盡可能相同的條件下進行測試,所得6份供試液含量的相對標准差應不大於2.0%.
2)中間精密度
配製6份相同濃度的供試品溶液,分別由兩個分析人員使用不同的儀器與試劑進行測試,所得12個含量數據的相對標准差應不大於2.0%.
4.專屬性
可接受的標准為:空白對照應無干擾,主成分與各有關物質應能完全分離,分離度不得小於2.0.以二極體陣列檢測器進行純度分析時,主峰的純度因子應大於980.
5.檢測限
主峰與噪音峰信號的強度比應不得小於3.
6.定量限
主峰與噪音峰信號的強度比應不得小於10.另外,配製6份最低定量限濃度的溶液,所測6份溶液主峰的保留時間的相對標准差應不大於2.0%.
7.耐用性
分別考察流動相比例變化±5%、流動相pH值變化±0.2、柱溫變化±5℃、流速相對值變化±20%時,儀器色譜行為的變化,每個條件下各測試兩次.可接受的標准為:主峰的拖尾因子不得大於2.0,主峰與雜質峰必須達到基線分離;各條件下的含量數據(n=6)的相對標准差應不大於2.0%.
8、系統適應性
配製6份相同濃度的供試品溶液進行分析,主峰峰面積的相對標准差應不大於2.0%,主峰保留時間的相對標准差應不大於1.0%.另外,主峰的拖尾因子不得大於2.0,主峰與雜質峰必須達到基線分離,主峰的理論塔板數應符合質量標準的規定.
望採納,謝謝

④ 高效液相色譜法檢測保健食品中肉鹼的含量要怎麼檢測

高效液相色譜法檢測保健食品中肉鹼的含量

1范圍

建立了高效液相色譜法測定保健食品中肉鹼含量的方法。

本法適用於以肉鹼為主要原料的保健食品中肉鹼的測定。

2原理

用0.5mmol/l鹽酸溶液超聲提取樣品中的肉鹼,用反相高效液相色譜法分離。標准樣品的保留時間是定性的,外部標准方法是定量的。

3試劑和材料

註:除非另有規定,本方法所用試劑均為分析純,水為GB/T 6682規定的一級水。

3.1 試劑

3.1.1 磷酸氫二鉀(K2HPO4)。

3.1.2辛烷磺酸鈉(C8H19NaO3S)。

3.1.3 鹽酸(HCl)。

3.1.4磷酸(H3PO4)。

3.1.5硅藻土(SiO2):化學純。

3.1.6乙腈(C2H3N):色譜純度。

3.2 試劑配製

3.2.1鹽酸溶液(0.50 mmol/L):吸收4.2 ml鹽酸,用水稀釋,體積為100 ml。然後取1mL上述溶液,用水稀釋,定容至1L·L~(-1)。

3.2.2緩沖液:分別稱取磷酸氫二鉀8.7g,辛烷磺酸鈉0.4325g,溶於水,稀釋至1L,用磷酸調節至pH 2.5。

3.3 標准品

肉鹼(C7H15NO3):純度≥98%或經國家認證認可的標准物質..

3.4 標准溶液配製

3.4.1肉鹼標准儲備液(1.0 mg/ml):肉鹼標准品25 mg(精確至0.1 mg)精密稱取25 ml容量瓶中,溶於鹽酸溶液中,定容至刻度,搖勻。

3.4.2肉鹼標准工作液:標准肉鹼標準保留液在5 mL瓶中,用鹽酸稀釋至規模化,經0.50 mL、1.0 mL、2.0 mL、3.0 mL、4.0 mL、5.0 mL准確吸收,得到0.10 mg/mL、0.20 mg/mL、0.40 mg/mL、0.60 mg/mL、0.80 mg/mL、1.0mg/mL的標准工作液。

4儀器

4.1高效液相色譜法:配備紫外檢測器或二極體陣列檢測器。

4.2平衡:靈敏度為0.1mg和0.01mg

4.3 超聲波提取器。

5分析步驟

5.1 試樣制備

5.1.1 試樣處理

5.1.1.1 固體試樣

樣品粉碎混合均勻稱取0.1g~2g(精確至0.001g)(含待測組分約5mg~50mg)。將鹽酸溶液加入50ml容量瓶中,超聲提取10min,冷卻,用鹽酸溶液稀釋至刻度,混勻,過濾,計數一次濾液毫升數,收集濾液,經0.45um水相膜過濾,取連續濾液進行檢測。

5.1.1.2 軟膠囊試樣

樣品被切開、擠壓和混合,重量為0.1g≤2g(精確到0.001g),加入相同量的硅藻土,進行均勻分散研究,並說其中一部分(精確到0.001g,約5 mg~50 mg),被測組分用塞狀三角瓶轉移到250 ml,吸收鹽酸溶液50 ml,加入三角瓶,稱重,填充超聲萃取10 min,冷卻,與鹽酸溶液混合,在毫升中丟棄初始濾液,收集濾液,經過0.45μm的水相濾膜,取濾液進行測量。

5.1.1.3 液體試樣

精密測量:1毫升~5毫升(含約5毫克~50毫克的待測組分),35毫升鹽酸溶液加入50毫升容量瓶,超聲提取10分鍾,冷卻,用鹽酸溶液稀釋,混合,過濾,丟棄一級濾液毫升,收集濾液,通過0.45微米水相濾膜,取連續濾液進行測定。

5.1.2 稀釋

根據樣品中肉鹼的含量,將溶液中的肉鹼稀釋至0.10mg/mL~1.0mg/mL。用鹽酸溶液。

5.2 色譜參考條件

5.2.1柱:C18柱:4.6*250 mm,5微米或同性能柱。

5.2.2流動相:緩沖溶液90 10。

5.2.3流量:0.8ml/min。

5.2.4 檢測波長:210nm。

5.2.5 進樣量:20μL。

5.3 標准曲線的製作

將肉鹼標准工作液(3.4.2)分別從低濃度到高濃度注入高效液相色譜(HPLC)中,並測定相應的峰面積。以標准工作液濃度為橫坐標,峰面積為縱坐標繪制標准曲線

5.4待測溶液的測定

在相同的色譜條件下,將待測液(5.1.1.1,5.1.1.2,5.1.1.3,5.2.1)注入高效液相色譜法按保留時間定性測定峰面積,按標准曲線計算待測溶液中肉鹼的濃度

6 分析結果的表述

試樣中肉鹼含量按式(1)計算:

X—固體樣品中肉鹼含量為g/100g,液體樣品中肉鹼含量為g/100ml。

根據每毫升毫克標准曲線(毫克/毫升)計算待測溶液中肉鹼的濃度。

V—試樣的稀釋體積,單位為毫升(ml);

M/L-取樣質量,以克(G)為單位;抽樣量,以毫升(毫升)為單位;

F——稀釋倍數;

100——單位轉換;

1000——單位轉換。

⑤ 高效液相色譜有幾種定量方法其中那種是比較精確的定量方法並簡述

峰面積法、峰高法、歸一法、外標法。峰面積法是比較精確的定量方法

如何建立高效液相色譜法測定有關物質的方法

摘要 本文就如何建立TLC法測定有關物質的方法進行論述,系統地闡述了薄層色譜法各條件確定的原理,並列舉了質量標准制訂中存在的某些問題。
關鍵詞 薄層色譜法(TLC法) 有關物質 方法建立
有關物質是研究葯品中除主成分以外的雜質,它可能是原料葯合成過程中帶入的原料、中間體、試劑、降解物、副產物、聚合體、異構體以及不同晶型、旋光異構的物質,也可能是制劑過程中產生的降解物,或是在貯藏、運輸、使用過程中產生的降解物等[1]。這些雜質的存在直接反映葯品的有效性和安全性,故要對其進行研究,特別是在葯品申報的質量研究資料中需建立其檢測方法,並根據生產、穩定性考核等實際情況考慮是否在質量標准中制訂該檢查項,規定其限度。目前,有關物質的常用測定方法有高效液相色譜法(HPLC法)和薄層色譜法(TLC法)。
TLC的特點是快速、簡便,尤其是對無紫外吸收的雜質測定,更具有其應用價值。如能將TLC法與HPLC法有機地結合、或彼此間進行比對研究,便可得到更多、更為准確的有關雜質信息,做到兩方法間的相輔相成,相益得彰!本文將著重討論如何建立薄層色譜法測定有關物質的方法。
1.測定方法類型
常用的方法有雜質對照品法(適用於已知雜質)和自身(稀釋)對照法(適用於一般雜質檢查,雜質成分少且尚不能取得雜質對照品)。目前國內由於難以獲得雜質對照品、故一般均採用自身對照法。
2.展開劑的確定(即專屬性試驗)
專屬性的研究是提供被分析物在雜質和輔料存在時能被區分的證明,該點是色譜條件建立的關鍵。通常採用在被分析物的對照品或精製品中加入一定量的雜質或輔料,證明色譜條件可將各雜質與被分析物分離[1]。這里的關鍵是:將多少量的雜質加入到多少量的主成分中。正確的作法是將1%(w/w)濃度量的各雜質加入到100%濃度的主成分中,配製這樣的溶液來
驗證系統適用性。之所以如此配製,目的是模仿樣品中有可能存在的狀態,即有少量(1%左右)雜質存在時是否能與主成分達到完全分離,只有這樣才能比較客觀、科學地反映樣品中實際存在情況的(見圖1);而不應把該溶液配製成:主成分與中間體相同濃度的。因為一者實際檢測時樣品中不可能存在此種情況;二者該濃度不易確定,目前國內申報資料中一般的作法均是配製成較低的一致濃度,這樣各斑點當然易於完全分離了(見圖2),但在實際測定時,由於主斑點急劇增大,很易將相鄰雜質包含於主成分斑點中。同樣,質量標准中的系統適用性試驗用溶液的配製方法亦如此。

(1,3,4為雜質,2為主成分)
圖1 圖2 (雜質濃度均為供試品溶液濃度的1%)
3.檢出條件的確定
其基本出發點是:主成分與相關雜質均應在該條件下顯色,且在相同濃度下,斑點大小應基本一致。薄層板的類型根據被測物質的性質來選用,測定有紫外吸收的物質通常選用GF254或GF365板;測定無紫外吸收、需噴顯色劑的,常選用硅膠G板或H板,選用該類薄層板時,顯色方法根據被測物質的結構式選取,但當有多個顯色方法時,應分別進行試驗,選取靈敏度最高的顯色方法。如醋酸氫化可的松有關物質的測定,中國葯典2000年版採用鹼性四氮唑藍試液顯色,美國葯典26版採用硫酸-乙醇(10:90)溶液顯色,兩者均為激素類葯物的顯色方法。醋酸氫化可的松屬於激素類中的腎上腺皮質激素,四氮唑法是腎上腺皮質激素的重要顯色方法;而硫酸-乙醇顯色法則主要是針對激素類中的雌激素的顯色反應,對於屬於腎上腺皮質激素類的醋酸氫化可的松則反應活性不強,結果兩法的靈敏度相差10倍以上。因此,檢出條件的確定,一定要在查閱文獻的基礎上,並根據試驗結果進行綜合考慮。
4.供試品溶液濃度的確定(靈敏度試驗——最低檢出限的測定)
供試品溶液濃度的設定在有關物質檢測中是至關重要的,濃度越高、越能反映樣品中雜質存在的情況,但若設定得過高,則會產生主斑點嚴重拖尾、「斷腰」等超載現象的發生,產生錯誤結論;若設定太低,又將達不到檢測雜質的目的,觀測不到雜質量的變化。其設定是根據最低點樣量和最大點樣量來綜合考慮的。
最低檢出限雖然是個絕對值,但真正的意義卻是其相對值,即相對於供試品溶液的濃度多少而言,所以測定結果不僅要羅列出其絕對值又應列出其相對值,這樣最低檢出限才有意義!最大點樣量則是通過不斷加大供試品溶液濃度,直至主斑點嚴重拖尾、「斷腰」等情況出現時來得到的。然後根據最低檢出限,採用「上推法」來確定:如一般設定雜質斑點小於1.0%對照斑點,對照溶液的濃度至少應為最低檢出濃度(即最低檢出限)的20~50倍,則供試品溶液濃度是最低檢出濃度的2000~5000倍;反過來,最低檢出濃度應至少達到供試品溶液濃度的0.02%~0.05%。應注意的是:由於最低檢出量和最大點樣量因試驗環境、薄層板質量以及即時試驗時其他各因素的不同而改變(即耐受性因數),故供試品溶液的濃度在保證小於最大進樣量的情況下,可在此基礎上設定得再高一些,以保證該濃度可適用於各種條件下。舉例說明見表1(規定雜質限度為1.0%)。

表1 最低檢出量、最大點樣量、供試品溶液和對照溶液濃度之間的比例關系

最大點樣量
供試品溶液
對照溶液
最低檢出量 濃 度 8mg/ml 3mg/ml 30μg/ml 1μg/ml 點樣量 10μl 10μl 10μl 10μl 絕對量 30μg 0.3μg 10ng 相對於樣品測定濃度的 100% 1.0% 0.02% 倍 數 關 系 5000倍 30倍 「基準點」
供試品溶液濃度也可設定得再高些,但不可超過最大點樣量。
5.加樣回收試驗(即准確性試驗)
准確性試驗可採用在預經有關物質測定後的樣品中,加入已知量雜質的方法來評價。准確稱取各雜質,將含有1%(w/w)濃度的各雜質加入到樣品溶液中,以驗證所採用的薄層測定條件是否可分離檢測出相應的各雜質以及樣品中已存在的雜質是否累加,斑點是否加深。該原理同前面所述的專屬性研究是一致的。
6.強力破壞試驗
該項研究是為了揭示原料葯內在穩定性的特性,它是開發研究的一部分。這些試驗是在比加速試驗更劇烈的條件下進行的,其能夠包含葯品在銷售過程中所遇到的劇烈條件。可取一批樣品通過強光、高溫、高濕、氧化破壞、以及酸鹼破壞來證明該展開條件能分離檢測出雜質。
7.展開距離
測定時一定要採用25cm、長薄層板,展開距離應盡可能長一些,以使雜質與主成分盡量分離。如用短板,易造成臨近主斑點的雜質斑點「躲進」主斑點中。但同時又應注意,距離拉大,斑點分散,會損失最低檢出限,降低靈敏度,故應綜合考慮。
8.其它的因素
展開溫度應盡量控制在20~25℃之間,尤其在冬季,應注意環境的溫度,如太低,將嚴重影響展開效果。另層析缸的蓋兒,應塗抹凡士林油,以保證整個試驗過程中,層析缸的密封,避免展開劑揮發;並應在展開前,預先傾入展開劑,以使層析缸內的空氣飽和,達到最佳的展開效果。薄層板由於有自製、市售,質量不一也應注意。
二.討論
1. 質量標准中的系統適用性試驗,最好能將最難分離的雜質訂入系統適用性試驗用溶液的配製,將此雜質的濃度配製為主成分濃度的1%,或0.5%,或0.2%(依據雜質限度而定)進行試驗,驗證分離度後,再進行樣品的測定,以確保試驗的准確進行。
2. 質量標准中,應配製系列濃度的對照溶液(即梯度對照),以對雜質有「半定量」的概念,這可更好地評價雜質存在的情況;並應規定雜質的個數及最大雜質斑點的限度,使質量標准更完善、科學。經查閱,中國葯典薄層色譜法測定有關物質的有70個品種,僅有2個品種採用了梯度對照,絕大部分品種僅是制定了對照溶液,均未規定雜質個數,和最大雜質斑點限度,如有若干個雜質斑點也無法判定;而英國葯典和美國葯典則幾乎每個品種均採用梯度對照,並規定雜質個數和最大雜質斑點限度,這一點值得學習和推廣。
3. 錯誤的一種誤區,認為HPLC法完全替代了TLC法,這是不正確的,一定要做到相互補充、相互論證、相互參考才是最客觀、最科學的!
本文是在參閱了日本《分析方法驗證》一書和大量日本國內新葯申報資料中質量研究部
分的內容所寫而成。

⑦ 液相色譜怎麼選擇檢測方法

簡單說9個字「出得來」、「分得開」、「跑得快」
出得來:所要檢測的物質要能被檢測到。要針對物質的特性要考慮檢測器的選用及參數設定,以及流動洗脫力的強弱。
分得開:所有的檢測組份要能完全分離,之間不相互干擾。要考慮流動相溶劑的選擇;比例的優化;流動相PH的控制,是否要加離子對試劑;色譜柱的選型等凡是影響色譜分離因素都要考慮到。以進行優化。
跑得快:在滿足可檢測性與完全分離的條件下,進一步優化各項條件,以達到快速檢測,降低分析運行時間,提高檢測效率。
你所說的「10——90,
5——35,60——100,45——95等」應該是指的梯度洗脫吧?

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