血液檢測病毒抗原方法

⑴ 乙肝兩對半中表面抗原用什麼方法

舉個例子，乙肝病毒就相當於一個剛走樹上掉下來的板栗，周身都是刺，但裡面只有一個板栗。
這時候，外邊的刺，就相當於乙肝病毒的表面抗原，裡面的板栗就是乙肝病毒的遺傳物質DNA。

乙肝病毒表面抗原的檢測方法，是利用抗原抗體的高度特異性進行檢測，就是在外部一模版上固定上乙肝病毒表面抗體，然後將受檢者的血液加入模版中，如果受檢者血液裡面有乙肝病毒存在，那麼就會有乙肝病毒的表面抗原結合到表面抗體上，從而使其固定在模版上，然後通過方法測定檢測出。具體方法很多，不同方法實際原理還是有差距，所以靈敏度、精確度都不同。

要消除乙肝病毒表面抗原，那就只能清除體內的乙肝病毒。有乙肝病毒存在，就存在乙肝病毒表面抗原。現在還沒有什麼特效葯，只能期待自愈。不過自愈率倒是較高的。

⑵ 國家為什麼要採取抗原檢測作為補充抗原的檢測方法是什麼

根據抗原和抗體的不同性質和反應條件的不同，抗原抗體反應呈現不同的形式，顆粒抗原呈現凝集反應。可溶性抗原呈沉澱反應；與補體結合時，細菌抗原呈溶菌反應，而紅細胞抗原呈溶血反應。毒素抗原顯示中和反應等。可溶性抗原與相應抗體結合產生的沉澱反應，可溶性抗原與相應抗體結合產生的凝集反應，抗原抗體結合激活的補體引起的細胞裂解反應，病毒與相應抗體結合引起的中和反應，免疫標記的抗原抗體反應。

具體方法是:第一步是在大腸桿菌中表達目的基因的蛋白質；第二步，免疫注射表達蛋白的動物，產生相應的抗體，並提取抗體(一抗)；步驟3，從轉基因生物中提取蛋白質並進行凝膠電泳；第四步，將凝膠中的蛋白質轉移到硝酸纖維素膜上；第五步，將抗體(一抗)與硝酸纖維素膜上的蛋白雜交，然後抗體(一抗)會與目的基因表達的蛋白(抗原)特異性結合。因為這種抗原抗體結合不出現條帶，所以加入了一種叫做二抗的抗體，它可以和一抗結合，二抗有一個特殊的標記。如果目標基因表達蛋白質，結果為陽性。

⑶ 植物病毒檢測的血清學技術都有哪些

植物病毒的外殼是一種核蛋白，在蛋白的表面帶有抗原決定簇，當植物病毒進入動物體內時，即可產生與抗原相應的抗體，這種帶有抗體的血清即為抗血清。相應的抗原抗體之間可產生專化性的結合，即抗體只能與其相應的抗原結合並產生一定的反應，此即血清反應。這種反應在植物體外也能進行，根據這種反應可以測定兩種病毒間的關系。因而，血清學檢測成為植物病毒的重要鑒定技術。常見的血清反應主要有以下幾種：

中和反應：使含有植物病毒的汁液與相應抗血清中的抗體充分結合，當抗體過量時，可將所有植物病毒抗原全部吸收掉，此時因植物病毒汁液中已沒有病毒粒子存在而失去侵染性。此即為中和反應，不僅可對植物病毒進行定性，還可用於定量測定。

沉澱反應：將一系列稀釋度的抗原（病毒）和一系列稀釋的抗體（抗血清）分別混合，在兩者稀釋比例適宜范圍內可出現沉澱物，此即為沉澱反應。此類反應如：微量沉澱反應，瓊脂雙擴散反應，及免疫電泳等，都是在植物病毒檢驗中最常見的血清學技術。

凝集反應：把病毒的抗體先吸於一種與免疫無關的顆粒表面，然後使其與相應的抗原結合而出現的凝集，即為凝集反應。常用於吸附抗體的顆粒有皂土、乳膠、炭末、血細胞、A蛋白等。

抗體標記：對抗體用熒光素、酶或同位素等進行標記，然後通過對標記物的檢測追蹤抗原，常用的有酶聯免疫吸附、熒光免疫、同位素免疫實驗等，這類檢測技術靈敏度極高，適於對微量抗原的檢測。

現將在植物檢疫中常用的幾種血清學技術介紹於下。

1.微量沉澱反應

在溶有抗原的溶液內按適當比例加入抗血清時，抗原與抗體互相結合而沉澱。其方法如下：

（1）用蠟筆在培養皿底部各劃8條橫豎線形成方格。

（2）取兩排小試驗管，每排7～8個，一排用於抗原，一排用於抗血清，每試管中加0.2ml的緩沖液。

（3）制備1mg/ml純化病毒原液，在抗原稀釋排中加0.2ml原液於第一試管，用1ml的移液管再從中吸0.2ml移至第二管，然後再移0.2ml於第三管，一直移到最後一管，各管的稀釋度分別為原液的1/2至1/128。

（4）在小試管中加1.5ml含0.025%防腐劑NaN3的緩沖液，在緩沖液內混入0.1ml未稀釋的抗血清，制備出1/16稀釋度的抗血清作為原液；在第二排的第一試管中加0.2ml的原液，混合後移0.2ml至第二管，如此一直到最後一管，制備出1/32～1/2048的稀釋系列的抗血清。

（5）用微量移液管從抗血清最高稀釋度（1/2048）開始，在培養皿的第七橫排的每個方格滴加1滴，同樣將1/1024稀釋度的抗血清加到第六橫排，這樣將板上所有的方格均滴加各種稀釋度的抗血清。

（6）用另一移液管從最稀的抗原液開始，在第七縱排每方格內滴加1滴，按同樣方法在第一至第七縱排各方格內滴加各種稀釋度的抗原。在所有第八橫排和縱排的方格內滴一滴緩沖液做對照。隨後在反應液滴上復蓋一層液體石蠟油防止蒸發。

（7）將制備好的培養皿在室溫濕潤環境下孵育2h後，在暗室用雙目解剖鏡觀察，然後在普通冰箱內過夜，第二天繼續觀察結果，此時沉澱已清晰可見。

以最濃的沉澱為四，以下逐漸減弱的梯度分別記為三、二、一，以三為抗原最大稀釋度和產生沉澱的最小血清用量，作為抗原抗體最適比例

微量沉澱技術測定抗原抗體最適反應濃度表

（8）實際測定時，用最適稀釋度的抗血清與其相應的抗原和異種抗原進行反應，或用最適稀釋度的抗原與其相應的抗血清和異種抗血清進行反應，均可觀察它們間的血清學關系。如表0-4-2所示，

微量沉澱技術測定多種抗原間血清學關系表

各供試抗原的稀釋度為1.56mg/ml，與1/4至1/1024的不同稀釋度的抗血清反應結果表明，第一、二、五、六、七橫排的抗原與抗血清的相應抗原是相同的，第三、四兩排抗原與抗血清的相應抗原雖然不同，但有一定親緣關系，第八、十排抗原則與抗血清的相應抗原有遠緣關系或無血清學關系，第九排的抗原則完全無關。

2.瓊脂雙擴散試驗

瓊脂凝膠的含水量極高，允許分子質量20萬u以下的大分子物質自由通過，絕大多數的抗原和抗體分子質量都在20萬u以下，在瓊脂凝膠中的運動所受阻力甚小，可自由擴散，免疫雙擴散就是應用這一原理，在一塊瓊脂凝膠板上打幾個小孔，分別置入抗原及其相應抗體，抗原與抗體分別向凝膠中擴散，形成濃度梯度，在抗原抗體濃度最適比例處，形成肉眼可見的抗原抗體結合物的沉澱帶，帶的大小形狀數量和密度決定於所測試的抗原抗體的特性。本法適於檢測植物粗汁液、澄清液和高度純化的抗原。試驗時需設置健康植物汁液及標准抗原作為陰性和陽性對照。本法的特點是可同時檢測一種抗原對多種抗體，或一種抗體對多種抗原間的血清學關系，對病毒的鑒別極為方便。缺點是靈敏度較低，抗血清用量大，檢測時間長。具體檢測技術如下：

（1）稱取瓊脂加入適當的緩沖液中，用水浴或微波爐加熱至瓊脂溶解，按0.1%加疊氮化鈉。置培養皿或玻璃平板於水平檯面，當瓊脂冷卻至60℃時，倒適當量於板上厚2mm（50mm*9mm的板需9ml，100mm*13mm的板需26ml）。靜置至凝固。

（2）將模式圖置於板下，用打孔器打孔，挑除孔中瓊脂，孔的排列有多種形式，常用的排列，由一個中央孔和周圍六個孔組成，孔的直徑7mm，周圍孔與中央孔的距離為3～4mm。

（3）用緩沖液或生理食鹽水在小試管中稀釋抗原，在周圍孔中加最適稀釋度的抗原，在中央孔中加最適稀釋度的抗血清。外圍孔中加倍比稀釋系列的抗原，中央孔加倍比稀釋系列的抗血清，產生緻密狹窄的沉澱線的組合為最適濃度。

（4）將培養皿在保濕環境下進行孵育，次日在暗背景下觀察沉澱線出現情況。在印有排列模式團的紙上，圖記沉澱線的形式，沉澱線圖形可用照相或染色保留。

（5）結果的判斷：根據沉澱線的形狀分析抗原與抗體，及抗原互相間的關系。

對長形病毒進行瓊脂雙擴散檢測時，可在瓊凝膠介質中加入十二烷基磺酸鈉（SDS），此劑為一種陽離子表面活性劑，可將病毒裂解成具有抗原活性的可擴散的片斷利於檢測。

3.對流免疫電泳

在以瓊脂凝膠為介質的情況下，免疫球蛋白帶有微弱負電荷不能抵消電滲作用，故在電泳時向負極遷移，而一般抗原蛋白帶有較強的負電荷，抵消電滲後仍向正極遷移。依此設計的對流免疫電泳是將瓊脂電泳與免疫沉澱相結合的方法，將抗原病毒放在瓊脂凝膠靠近陰極一側，抗體放在靠近陽極一側，在直流電場中，抗原遷向正極，免疫球蛋白遷向負極，相遇後形成免疫沉澱線。具體技術如下：

（1）凝膠床的制備。取定量瓊脂粉用蒸餾水浸泡2～3d，每日換水1～2次，用硼酸緩沖液配成1%～1.2%的瓊脂液，加0.1%疊氮化鈉。將玻璃放在水平台上用吸管將緩沖液瓊脂注到板面，製成2mm厚的凝膠床並打孔。

（2）將制好的凝膠床放在電泳槽內，加緩沖液（用配製瓊脂凝膠的緩沖液稀釋1倍）離床面2～4cm，在瓊脂板陰極一端孔中加入抗原，在靠陽極一端孔中加入特異性抗血清，在瓊脂床的兩端用兩層紗布使瓊脂板與電泳槽中的緩沖液相連，進行電泳。

（3）進行電泳時，電壓、電流和時間，根據緩沖液離子強度、電泳床大小和抗原性質而有所不同。只要不使病毒抗原變性，盡量保持較高的電壓，如電流超過2mA，電泳應在低溫下進行。

（4）電泳完畢後，將電泳板放在黑色背景處觀察，也可將電泳完畢的瓊脂凝膠板先浸在生理食鹽水中30min，然後放在苦味酸溶液中20min，可將背景染成黃色，沉澱為白色，便於觀察。

免疫電泳與瓊脂雙擴散相比有三個優點，快速、靈敏並可用於在瓊脂中擴散慢的長形病毒。

4.乳膠凝集試驗及A蛋白乳膠凝集試驗

用特異性抗血清提純的免疫球蛋白，將其吸附在乳膠粒子上，制備抗體免疫球蛋白致敏乳膠。當與相應的抗原相遇時即可產生凝集反應。這是一種靈敏度高特異性強的血清學技術，但是每次都要特異性抗血清提取抗體γ球蛋白，制備手續繁雜不便應用，如直接用抗血清致敏乳膠則顯著影響效果。其後Querfurth（1979）發現A蛋白可吸附免疫球蛋白且不影響與相應抗原結合。這樣就可先使A蛋白與乳膠粒子結合，再與抗血清中的免疫球蛋白結合，形成A蛋白-乳膠-免疫球蛋白的復合體。這種乳膠凝集試驗可簡化致敏免疫球蛋白的過程，而獲得同樣效果。具體做法如下。

（1）免疫球蛋白致敏乳膠的制備。

將特異抗血清用33%飽和硫酸鹽析法提取球蛋白，懸浮於0.05mol/L、pH7.2的Tris-HCl（含0.02%PVP）緩沖液內，取10%空白乳膠稀釋15倍後與等量適宜濃度的球蛋白液混合，置室溫2h後移入冰箱內過夜。經低速離心（7000r/min，20min）取沉澱懸浮於緩沖液內，經反復離心洗滌2次後將最後沉澱物懸浮於緩沖液內即可得抗體球蛋白的致敏乳膠。

（2）A蛋白乳膠致敏抗體的制備。

將市售A蛋白溶於0.1mol/L、pH8.2的甘氨酸緩沖液內，製成A蛋白溶液，與等量稀釋15倍的空白乳膠液混合，置室溫3h，移入冰箱過夜。低速離心（7000r/min20min）後將沉澱懸浮於甘氨酸緩沖液，反復離心洗滌2次，沉澱懸浮於甘氨酸緩沖液制備A蛋白乳膠溶液，與等量適宜稀釋度的抗血清混合，置室溫下3h後移入冰箱過夜。再反復離心洗滌2次，最後將沉澱懸浮於與抗血清等等量的甘氨酸緩沖液內，即可得A蛋白乳膠致敏抗體。

（3）檢測法。

用0.05mol/L、pH7.2的Tris-HCl緩沖液（含0.02%PVP，0.02%NaN3）按等倍比稀釋抗原，製成20、40、80、160、320、640、1280的系列濃度，在一潔凈玻璃板上，用筆畫好方格，每格加2滴不同稀釋度的抗原，然後再加1滴乳膠致敏抗體（或A蛋白乳膠致敏抗體）用微量血液振盪器以120r/min振盪混合後，用肉眼或10～25倍解剖鏡觀察結果。同時設空白乳膠液和健汁液對照。

陽性反應表現有明顯的絮狀或顆粒狀凝集物，背景清明透亮，陰性反應則仍為均勻的牛乳狀液。也可用濁度計檢測其凝集度。

此法受健康植株蛋白的干擾較小，適於直接采自病株的澄清液，不但適合球狀病毒，對桿菌狀病毒，棒狀病毒，線狀病毒也適用，並有較高的靈敏度。但對效價低的抗血清或含有乳狀膠體的植物不適用。

5.酶聯免疫吸附試驗

酶聯免疫吸附試驗是一種固相吸附和免疫酶技術相結合的方法，將抗原或抗體包被在固相支持物上，使免疫反應在固體表面進行，並藉助標記在抗體上的酶與底物所產生的顏色，檢測相應的抗原。此法靈敏度高，特異性強，快速簡便極適宜植物檢疫應用。常用的檢測方法有以下幾種：

（1）直接法。

將待測樣品抗原（病毒）加入聚乙烯多孔板內，保溫後洗滌，使附著於壁上的抗原與加入的酶標抗體γ球蛋白反應，洗滌後保留與抗原結合的酶標γ球蛋白，加入酶的底物，用分光光度計進行檢測。

（2）間接法。

先用抗兔球蛋白山羊抗體與酶結合制備酶標記抗體，將待檢抗原包被於固相載體，經過孵育洗滌，加入特異性兔抗血清，孵育洗滌後加羊抗兔酶標記抗體，孵育洗滌後加入底物，觀察結果。

（3）雙抗體夾心法。

先將特異抗體免疫球蛋白包被於固相載體，保溫洗滌後，加待測抗原，使與吸附於載體上的抗體反應，保溫洗滌後再加入特異抗體的酶標記物，最後加底物觀察反應結果。

（4）A蛋白酶聯法。

將A蛋白用pH9.6的甘氨酸緩沖液稀釋後包被微板，加入特異性抗血清，使其與已固定在微板上的A蛋白結合，再加入待測抗原使其與特異性抗體反應，再加入特異性抗體，使其與抗原反應，再加酶標記A蛋白，最後加酶的底物測其光密度值。

（5）異種動物雙抗體夾心法。

先將第一抗體（兔血清抗體）包被微量反應板，加待測抗原後，加適宜濃度的第二抗體（鼠腹水抗體），再加入市售羊抗鼠酶標記物，最後加底物觀察反應，一般8h即可得出結果。此法保持了雙抗體夾心法快速准確靈敏度高的特點，對球狀病毒、桿狀病毒、線狀病毒、棒狀病毒均可應用。抗體不必純化可直接使用（但未純化的抗血清需先選擇其最適工作濃度），使用市售酶標記物，可省去制備酶標記抗體的復雜手續，還可克服間接法非特異性反應干擾大的弱點。

（6）生物素抗生物素酶聯法。

生物素具有很強的親和力，是抗原抗體反應的1萬倍，兩者一旦結合就難以離解，且不受酸鹼變性劑蛋白溶解酶及有機溶劑的影響，具有高度穩定性，生物素一經活化可與蛋白質呈偶聯結合，即一個大分子可結合多個生物素分子，生物素又可大量結合在酶標記物上，使酶標記物成為多價，而抗生物素本身又是一個多價分子，每一亞基均可結合一個生物素分子，因此，這種方法可產生多級放大，使靈敏度提高10倍以上，並降低非特異性反應，把酶聯免疫吸附技術又提高一步。具體方法如下：

先將第一特異抗體（兔抗體或鼠腹水抗體）包被在固相載體，加待檢抗原，加第二特異性抗體（鼠腹水抗體或兔抗體），再加入相應生物素化（羊抗鼠或羊抗兔）免疫球蛋白，再加抗生物素酶結合物，最後加入底物觀察O.D.值。

（7）膜上斑點酶聯法。

先用軟鉛筆在一張適宜大小的硝酸纖維素膜上劃好邊長1cm的方格網，把纖維素膜浸入TBS緩沖液漂洗30min，然後將膜放在兩張濾紙之間，在室溫下風干，用移液器將抗原抽提液滴在各方格中央，室溫下風干，用TBS-T緩沖液（含0.5%Tween的TBS液）洗膜5min，取出後放在濾紙上至膜表面水滴消失，然後浸入封閉液（含1%牛血清蛋白，和2%聚乙烯吡咯烷酮的TBS-T液），在37℃下保溫1h，取出晾乾後，浸在用封閉液稀釋的第一抗體溶液，在37℃下保溫1h，用TBS-T液洗膜10次，每5min換液一次。將膜浸入稀釋度1/200的酶聯球蛋白，室溫保溫1h，用上法洗膜後，用鹼性磷酸酯酶緩沖液沖洗兩次，每次10min，將膜浸入酶底物溶液內，室溫下避光5～15min，顯色完全後棄去底物液，用終止液（10mmol/LTris-HCl，pH7.5，5mmol/LEDTA）洗膜30min，置膜於濾紙內徹底風干後觀察結果。

此法可克服塑料板的不足，只用目測就可對結果定性，不需要復雜的儀器，所需抗原抗體量均很少，靈敏度比常規酶聯法高10倍以上，適合大量抗原的檢測。

6.免疫電鏡

電鏡檢測可快速確定病毒粒子的形狀，是鑒定病毒不可缺少的技術，但有的樣品濃度很低，用普通的電鏡技術不易觀察，如將病毒粒子包被後，抗體可把病毒粒子捕捉成聚集物便於觀察。同時還可從病毒粒子與抗體的結合情況，觀察兩者間的血清學關系。通常使用的有以下幾種方法：

（1）葉片浸沾血清技術。

把一滴稀釋的抗血清，滴在有膜的銅網上，將葉片的新鮮切口浸入血清滴中1～2s，置於室溫下5～10min，使血清與相應的病毒聚集並裝飾起來，再進行負染檢鏡。

（2）Derrick氏法。

把火棉膠膜銅網在24℃下，置於按1∶10比例稀釋於Tris緩沖液的抗血清內，然後將銅網用緩沖液沖洗後使用。把病毒的粗提液稀釋於含HCl的Tris緩沖液內，將已用血清包被的銅網浮於0.1ml的病毒稀釋液內1h（24℃），先用Tris-HCl液再用水沖洗，然後乾燥噴鍍。

（3）聚集法。

把抗血清用磷酸緩沖液稀釋到1/100的濃度，取10μl滴於載玻片，將切成2mm見方的病葉在血清滴中壓碎，在濕室中保濕15min，用鑷子持有膜銅網蘸取液滴，用20倍磷酸緩沖液沖洗後，再用蒸餾水洗，最後用5滴醋酸氧鈾染色觀察。

（4）修飾法。

取2mm見方的病葉在載玻片上的10μl蒸餾水中壓碎，持有膜銅網沾此液滴，將病毒粒子吸附於銅網上，然後將銅網用20滴的磷酸緩沖液沖洗，吸去水分後加1滴稀釋成1/100的抗血清，在濕室中保濕15min後，將銅網用20滴磷酸緩沖液和30滴蒸餾水沖洗，最後用醋酸氧鈾染色檢鏡。

（5）誘捕修飾法。

先將銅網用稀釋1/10或1/100的特異性抗血清包被，再把病毒樣品滴於銅網，保濕15min，用緩沖液及蒸餾水沖洗吸干，再加1滴稀釋成1/100的特異性抗血清，孵育15min後，用緩沖液和蒸餾水沖洗，吸干染色檢鏡。

（6）羊抗兔血清誘捕修飾法。

在誘捕修飾法未染色以前，再加1滴稀釋1/20的羊抗兔血清，孵育15min，洗滌後染色鏡檢。此法因病毒粒子外殼包被有兩層血清，明顯加粗，在2000倍的低倍電鏡下即可清晰地看到病毒粒子。

（7）A蛋白誘捕修飾法。

在福爾馬膜的銅網上滴1滴50mg/ml的A蛋白液，孵育後洗去多餘的A蛋白，再包被稀釋100倍的特異性抗血清，滴加抗原，再滴加特異性抗血清，最後染色鏡檢。此法比一般誘捕修飾法靈敏度高，能捕捉更多病毒粒子。

⑷ 各種新冠病毒的檢測方式，哪種最為准確

各種新冠病毒的檢測方式，肛拭子是最准確的。

新冠病毒出現之後，醫院很快就推出了檢測的方式，而其中全球使用最多的檢測方式主要有三種。其中有兩種是主流的檢測方式，那就是鼻拭子或者咽拭子。主要是通過把一個長長的棉簽深入到呼吸道之中，然後取樣進行檢測。因為新冠病毒在呼吸道停留的時間是比較久的，檢測到樣品的機會就更大，檢測結果也就比較准確。

在做新冠病毒檢測的時候，很多人會頻繁的清理喉嚨，或者嚼口香糖，希望保持口腔的清潔，但是這完全沒有必要，頻繁的吞咽反而會讓新冠病毒停留時間變短，存在檢測不到病毒的可能性。因此在做新冠病毒的檢測之前，最好不要喝水、不要清嗓子、不要抽煙、不要嚼口香糖，佩戴好口罩，等待進行檢測即可。檢測的過程是非常快速的，一般幾秒鍾就可以完成，所以不要對於長棉簽有太大的恐懼感，不然反而會耽誤檢測的進度。

⑸ 血站是用什麼方法檢測HIV抗體的

HIV-抗體檢測方法
常見檢測方法
目前作為診斷手段使用的檢測主要包括抗HIV病毒抗體檢測、病毒培養、核酸檢測和抗原檢測。其中對病毒抗體的檢測是最常規使用的方法，這不但是由於這類檢測特異性、敏感性較高，方法相對簡便、成熟，更重要的原因是HIV抗體在病毒感染後除早期短暫的」窗口期」外的整個生命期間長期穩定地存在並可被檢測到。在一些特殊情況下，當抗體檢測無法滿足HIV感染診斷的需要時，病毒分離及測定、核酸檢測、抗原檢測可作為輔助手段使用，這包括對非典型血清學反應樣品的診斷、HIV感染的窗口期診斷、新生兒早期診斷和對特殊樣品的診斷。 一、 酶聯免疫吸附試驗（ELISA）
目前應用的ELISA法有8種之多。它們的特異性和敏感性超過99%。
二、 顆粒凝集法（PA）
PA為快速、簡便的一種篩選方法。如屬陽性，應經WB證實。PA不需任何特殊儀器，其結果用肉眼可判別。全過程僅需5分鍾。缺點有假陽性，且價格昂貴。
三、快速試劑
(一)人類免疫缺陷病毒(HIV)1+2型抗體診斷試劑(膠體硒法)
雅培人類免疫缺陷病毒抗體診斷試劑(膠體硒法)是用於體外，肉眼觀察，定性的免疫分析，檢測血清或血漿中的HIV-1和HIV-2抗體，用於幫助受感染個體的HIV-1和HIV-2抗體。本品僅用於無償獻血員現場初篩及臨床緊急情況的使用，本品檢測陽性者，需進行進一步篩查確認。
(二)InstantCHEKTM-HIVl+2金標快速診斷試劑
InstantCHEKTM-HIV1+2是一種快速、簡單、靈敏的檢驗方法， 用以檢測艾滋病病毒(HIV-1和HIV-2)的抗體。該方法適用於初篩檢測，凡由該試劑測定為陽性者，需用另一種方法檢測如ELISA或用蛋白印記法確定。
四、HIV-抗體確認實驗
免疫印跡試驗（WB）、條帶免疫試驗（LIATEK HIVⅢ）、放射免疫沉澱試驗（RIPA）及免疫熒光試驗（IFA）。國內常用的確認試驗方法是WB。
(一_免疫印跡實驗(westernblot，WB)是廣泛用於許多傳染病診斷的實驗方法，就HIV的病原學診斷而言，它是首選的用以確認HIV抗體的確認實驗方法，WB的檢測結果常常被作為鑒別其他檢驗方法優劣的「金標准」。
確認試驗流程:
有HIV-1/2混合型和單一的HIV-1或HIV-2型。先用HIV-1/2混合型試劑進行檢測，如果呈陰性反應，則報告HIV抗體陰性；如果呈陽性反應，則報告HIV-1抗體陽性；如果不滿足陽性標准，則判為HIV抗體檢測結果不確定。如果出現HIV-2型的特異性指示條帶，需用HIV-2型免疫印跡試劑再做HIV-2的抗體確認試驗，呈陰性反應，報告HIV-2抗體陰性；呈陽性反應則報告HIV-2抗體血清學陽性,並將樣品送國家參比實驗室進行核酸序列分析，
WB的敏感性一般不低於初篩實驗，但它的特異性很高，這主要是基於HIV不同抗原組分的分離以及濃縮和純化，能夠檢測針對不同抗原成分的抗體，因而能夠用WB方法鑒別初篩實驗的准確性。從WB確認試驗結果看出，初篩試驗盡管選擇質量較好的試劑，如第三代ELISA，仍會有假陽性出現，必須通過確認試驗才能得出准確結果。
(二)免疫熒光實驗(IFA)
IFA法經濟、簡便、快速，曾被FDA推薦用於WB不確定樣品的診斷。但需要昂貴的熒光顯微鏡，需要受過良好訓練的技術人員、觀察和解釋結果易受主觀因素的影響，結果不宜長期保存，IFA不宜在一般的實驗室開展和應用。

⑹ 艾滋病檢測方法，艾滋病檢測方法都有哪些

常用，通過免疫的方法檢測，即通過一個機器來自動檢測這種抗體；通過尿液、唾液、口腔粘膜等分泌液檢測（一）抗體檢測主要有酶聯免疫吸附試驗（ELISA）和免疫熒光試驗（IFA）。ELISA用去污劑裂解HⅣ或感染細胞液提取物作抗原，IFA用感染細胞塗片作抗原進行抗體檢測，如果發現陽性標本應重復一次。為防止假陽性，可做Westernblot（WB，蛋白印跡法）進一步確證。
WB法是用聚丙烯醯胺凝膠電泳將HⅣ蛋白進行分離，再經傳移電泳將不同蛋白條

帶轉移於硝酸纖維膜上，加入病人血清孵育後，用抗人球蛋白酶標抗體染色，就能測出針對不同結構蛋白抗體，如抗gp120、gp41、P24抗體，特異性較高。
快速檢測法，也稱為金標法，也是抗體檢測的一種方法，根據免疫層析法的原理，用於HⅣ抗體檢測的定性檢測。
（二）抗原檢測
用ELISA檢測P24抗原，在HⅣ感染早期尚未出現抗體時，血中就有該抗原存在.由於P24量太少，陽性率通常較低。現有用解離免疫復合物法或濃縮P24抗原，來提高敏感性。
（三）核酸檢測
用PCR法檢測HⅣ基因，具有快速、高效、敏感和特異等優點，目前該法已被應用於HⅣ感染早期診斷及艾滋病的研究中。
（四）病毒分離
常用方法為共培養法，即用正常人外周血液分離單個核細胞，加PHA刺激並培養後，加入病人單個核細胞診斷及艾滋病的研究中。
（五）檢測試紙檢測
艾滋病檢測試紙條是使用膠體金免疫層析科技研發的新一代檢測試劑。它可檢測血清或血漿標本中的HⅣ-1/2特有性抗體。所有操作時間若是15分鍾，動作簡便、迅速、准確、自帶質

控對照、無需所有附加葯劑。適合個人檢測，也適合各大醫院，疾控中心檢測。

⑺ 新冠抗原檢測，在家該怎麼做

眾所周知，全國的疫情還是十分嚴重的，所以不管是去到哪個地方或者孩子上學都是需要做到核酸檢測的。但是隨著相應的防控工作出現，也出來了新冠抗原檢測。這個檢測是可以直接居家做的，不過一定要按照相應的過程以及步驟。

三、結語

其實在疫情期間，很多人都有著恐慌的心理，因此一定要注意自己的行為舉止，如果自己不太會做的話，也可以選擇核酸檢測，畢竟要安全准確一些。同時也要注意自己的身體狀況，一旦出現感冒、發燒、咳嗽、流鼻涕的症狀，就要及時的去醫院的發熱門診，進行查看。

⑻ 艾滋病抗體的檢查方法

艾滋病病毒抗體檢測
艾滋病病毒抗體檢測：檢測血液中的艾滋病病毒抗體是目前最常用的檢測艾滋病病毒感染的實驗室方法，一般要經過兩個步驟：首先做初篩試驗，如果為陽性，再做確認試驗，確認試驗陽性才可診斷為艾滋病病毒感染。
常用的方法有：
1病原檢測病原檢測主要指用病毒分離培養、電鏡形態觀察、病毒抗原檢測和基因測定等方法從宿主標本中直接檢測病毒或病毒基因。由於前兩種方法難度大，且需要特殊設備和專業技術人員。因此僅抗原檢測和RT-PCR(反轉錄－PCR)可用於臨床診斷。
2 抗體檢測血清中HIV抗體是判斷HIV感染的間接指標。根據其主要的適用范圍，可將現有HIV抗體檢測方法分為篩檢試驗和確證試驗。
3 確證試劑篩檢實驗陽性血清的確證最常用的是Western blot（WB），由於該法相對窗口期較長，靈敏度稍差，而且成本高昂，因此只適合作為確證實驗。隨著第三代和第四代HIV診斷試劑靈敏度的提高，WB已越來越滿足不了對其作為確證實驗的要求。FDA批準的另一類篩檢確證試劑是-免疫熒光-試驗（IFA）。IFA比WB的成本低，而且操作也相對簡單，整個過程在1-1.5小時內即可結束。此法的主要缺點是需要昂貴的熒光檢測儀和有經驗的專業人員來觀察評判結果，而且實驗結果無法長期保存。現在FDA推薦在向WB不能確定的供血員發布最終結果時以IFA的陰性或陽性為准，但不作為血液合格的標准。
4篩檢試驗篩檢試驗主要用於對供血員進行篩查，因此要求操作簡便，成本低廉，而且靈敏、特異。目前世界上主要的篩檢方法仍然是ELISA，還有少數的顆粒凝集試劑和快速ELISA試劑。ELISA有很高的靈敏度和特異性，操作簡單，僅需要實驗室配備酶標儀和洗板機即可應用，特別適合於試驗室大規模篩檢使用。顆粒凝集實驗是另一種操作簡單方便，成本低廉的檢測方法，該方法結果可通過肉眼判定，靈敏度很高，特別適合發展中國家或大量篩選供血員時使用，缺點是必須使用新鮮樣品，特異性較差。80年代後期發展起來的斑點印跡檢測（Dot-blot assay）是一種快速ELISA（Rapid ELISA）方法，這種方法操作極為簡便，過程短暫，整個過程多數在5-10分鍾內甚至3分鍾內即可結束，但該法比ELISA和顆粒凝集試劑昂貴得多。金免疫測定是以膠體金為標記物，以硝酸纖維素膜為載體的固相免疫測定，分為滲濾和層析兩種形式。用於HIV抗體檢體金試紙條屬於金免疫層析，且大多數為間接法及雙抗原夾心法，兩種方法各有優缺點，但都簡單而快速，數分鍾即可得出結論，不需儀器設備，操作人員不需特殊訓練，試劑穩定，適用於單份測定等。

⑼ 病毒感染的血清學診斷方法

常用的血清學方法有中和試驗、補體結合試驗、血凝抑制試驗等傳統的方法，以及應用免疫學標記技術發展的酶聯免疫吸附試驗（ELISA）、放射免疫試驗（RIA）及免疫熒光試驗（IF）等特異、靈敏的微量血清學方法。
1.中和試驗（NT）是指病毒在活體內或細胞培養中，被特異性抗體中和而失去感染性的一種試驗。它既可用來檢查患病後或人工免疫後機體血清中抗體的增長情況，也可用來鑒定病毒或研究其抗原結構。中和抗體特異性高、持續時間較長，因此流行病學調查也常用此指征。
2.血凝抑制試驗許多病毒能凝集雞、豚鼠、人等的紅細胞，稱為血凝現象。這種現象能被相應抗體所抑制，稱血凝抑制試驗。其原理是相應抗體與病毒結合後，阻抑了病毒表面的血凝素與紅細胞的結合。
3.酶聯免疫吸附試驗（ELISA）、放射免疫試驗（RIA）及免疫熒光試驗（IF）參見第八節細菌感染的血清學診斷方法的介紹。
4.蛋白印跡試驗（Westernblot，WB）用於檢測HIV抗體，是HIV感染的確認試驗。應用WB也可檢測病毒抗原，但一般不常用。
5.檢測病毒核酸的分子生物學試驗檢測患者血清等標本或病毒培養物中病毒基因或核酸片段的技術有多種：①病毒核酸擴增試驗即聚合酶鏈反應（PCR）；②核酸雜交技術，包括點雜交、原位雜交、DNA-DNA印跡雜交（Southernblot）及RNA-DNA印跡雜交（Northernblot）等；③基因晶元技術（genechip）；④病毒基因測序等。目前，分子生物學技術日益廣泛地應用於對病毒及其感染的檢測和研究中。