Ⅰ 山莨菪麝香膏微生物方法驗證怎麼做檢驗銅綠假單孢菌和金黃色葡萄球
葡萄球菌屬的微生物學檢驗方法與原理
1.標本採集:根據葡萄球菌感染所致的疾病不同,可採集膿汁、滲出液、傷口分泌物、血液、尿液、糞便、痰液以及脊髓液等。
2.檢驗方法及鑒定(1)直接鏡檢:無菌取膿汁、痰、滲出物和腦脊液(離心後取沉渣)塗片,經革蘭染色後鏡檢,如為革蘭陽性球菌呈葡萄狀排列可初步報告為:"找到革蘭陽性葡萄狀排列球菌,疑為葡萄球菌".(2)分離培養:血液標本(靜脈血約5ml)注入50ml葡萄糖肉湯或含硫酸鎂肉湯增菌培養,迅速搖勻,以防凝固,置35℃,一般於24h後開始觀察有無細菌生長,若均勻混濁,溶血及膠腖狀生長,則接種於血瓊脂,進一步鑒定,若無細菌生長,於48~72h後自行觀察(一般以7天為限),並接種血瓊脂,以確定有無細菌生長。血液標本也可注入商品血培養瓶培養。
膿汁、尿道分泌物、腦脊液離心沉澱物,通常可直接接種血瓊脂。35℃18~24h培養,可見直徑2~3mm,產生不同色素的菌落。金黃色葡萄球菌在菌落周圍有透明的溶血環。
尿液標本,必要時作細菌菌落計數。
糞便、嘔吐物應接種高鹽卵黃或高鹽甘露醇瓊脂平板,經35℃18~24h培養,可形成細小菌落,48h後形成典型菌落。
(3)鑒定試驗1)觸酶試驗:細菌產生的過氧化氫酶催化雙氧水生成水和氧氣,產生氣泡。方法:取營養瓊脂上的菌落置於潔凈試管內或潔凈玻片上,滴加3%H202溶液數滴,觀察結果,如立即(1min內)有大量氣泡產生為陽性,不產生或氣泡量少為陰性。葡萄球菌屬為觸酶陽性。
2)血漿凝固酶試驗:血漿凝固酶是金黃色葡萄球菌所產生的一種與其致病力有關的侵襲性酶,分游離型和結合型兩種。其作用是使血漿中的纖維蛋白在菌體表面沉積和凝固以阻礙吞噬細胞的吞噬。可分別用試管法和玻片法檢測。玻片法用於粗篩,若玻片法為可疑或陰性結果,還需用試管法確證。使用的血漿為EDTA抗凝兔血漿。有商品化乳膠凝集試驗。
3)甘露醇發酵試驗。
4)新生黴素敏感試驗:凝固酶陰性的葡萄球菌的鑒別,採用新生黴素敏感試驗。一般新生黴素耐葯者多為腐生葡萄球菌,敏感者為表皮葡萄球菌。
5)同時進行體外葯物敏感試驗:對苯唑西林的敏感性測試是必須的,由此可將葡萄球菌分為苯唑西林敏感的葡萄球菌(MSS)和苯唑西林耐葯的葡萄球菌(MRS)。同時還有必要測試β-內醯胺酶以及對萬古黴素的敏感性。
金黃色葡萄球菌:觸酶試驗陽性、血漿凝固酶試驗陽性、甘露醇發酵試驗陽性、對新生黴素敏感。
表皮葡萄球菌:觸酶試驗陽性、血漿凝固酶試驗陰性、對新生黴素敏感。
腐生葡萄球菌:觸酶試驗陽性、血漿凝固酶試驗陰性、對新生黴素耐葯。
報告:檢出"XXX葡萄球菌"(4)耐葯性檢測:檢測耐甲氧西林的金葡菌(MRSA),耐甲氧西林的表葡菌(MRSE),耐萬古黴素的金黃色葡萄球菌(VRSA),耐萬古黴素的表皮葡萄球菌(VRSE)。NCCLS/CLSI推薦用頭孢西丁紙片法檢測mecA基因介導對苯唑西林耐葯的葡萄球菌。
(5)臨床意義:葡萄球菌感染的特點是感染部位組織的化膿、壞死和膿腫形成。金黃色葡萄球菌、表皮葡萄球菌和腐生葡萄球菌是引起臨床感染最常見的葡萄球菌。
1)金黃葡萄球菌常引起癤、癰、外科傷口、創傷的局部化膿性感染,播散人血後可引起深部組織的化膿性感染。此外,其產生的腸毒素可引起食物中毒,表現為急性胃腸炎。主要致病物質有血漿凝固酶、葡萄球菌溶血素、殺白細胞素、腸毒素、表皮溶解毒素和毒性休克綜合征毒素等。
2)表皮葡萄球菌是存在於皮膚的正常棲居菌,由於各種導管植入和人造組織的使用,該菌已成為醫院感染的重要病原菌,它是導致血培養污染的常見細菌之一。
3)腐生葡萄球菌是導致尿路感染的常見病原菌之一。
(6)治療原則:由於耐葯菌株日益增多,治療葡萄球菌感染時,應根據體外葯敏試驗選擇抗菌素。如果是危、急、重症感染,應首先經驗選葯,如萬古黴素等,待體外敏感試驗結果回報後,再調整用葯,針對治療。
1、快速測試片技術法
快速測試片是指以紙片、紙膜、膠片等作為培養基載體,將特定的培養基和顯色物質附著在上面,通過微生物在上面的生長、顯色來測定食品中微生物的方法。
細菌總數檢測紙片的研製始於 20 世紀 80 年代,其主要優點是簡便、實用、經濟、操作性強。近年來以濾紙和美國某公司的 Petrifilm 為載體的測試片已開始被廣泛應用。
2、生物電化學方法
生物電化學方法是指通過電極測定微生物產生或消耗的電荷,從而提供分析信號的方法。微生物在滋生代謝過程中,培養基的電化學性質如電流、電位、電阻和電導等會發生變化,所以可以通過檢測分析這些電化學參量的變化來實現對微生物的快速測定。
常見的有:阻抗分析法、電位分析法、電流分析法等。生物電化學方法具有測量快速、直觀、操作簡單、測量設備成本低和信號的可控性等特點。
3、微菌落技術
微菌落是指細菌生長繁殖早期在固相載體上所形成的只能藉助於顯微鏡觀察的微小菌落。微菌落技術具有快速、經濟、實用的特點,其研究始於 20 世紀50年代,定量測定技術從 20 世紀 70 年代開始,國外已有報道將該法應用於水、食品中細菌總數的快速檢測。
4、氣相色譜法
氣相色譜應用到微生物的檢測中,主要是依據不同微生物的化學組成或其產生的代謝產物各異,利用上述色譜檢測可直接分析各種體液中的細菌代謝產物、細胞中的脂肪酸、蛋白質、氨基酸、多肽、多糖等,以確定病原微生物的特異性化學標志成分,協助病原診斷和檢測。
5、高效液相色譜法
利用高效液相色譜檢測可分析各種體液中的細菌代謝產物、病原微生物等,以確定病原微生物的特異性化學標志成分,協助病原診斷和檢測。
Ⅲ 食品微生物檢驗內容與檢測技術方法
食品微生物檢驗內容與檢測技術方法
近年來,世界各地出現了諸多嚴重的食品安全事故,由於食品微生物污染而造成的質量事故嚴重威脅著人們的身體健康,如何做好食品微生物檢驗,確保食品質量安全,就需要社會各界共同努力。根據國際和國內衛生組織的相關規定和要求,所有的食品生產廠商都要對食品的質量進行嚴格的檢驗,對於生產出來食品的菌落種類、細菌數量、大腸菌群、沙門氏菌、金黃色葡萄球菌等進行檢測,必須達到要求的合格標准才能進入市場進行出售。下面是我為大家帶來的食品微生物檢驗內容與檢測技術方法的知識,歡迎閱讀。
需要注意的問題
一是工作人員及活動規定。必須保證參加檢測的人員具有相應的資格,並通過相關的考試後,持證上崗才能開展相關活動。同時要求工作人員不僅需要具有高超的專業技術,還應該有良好的職業道德修養,盡可能降低人為問題的制約。檢測過程需要按照相關的活動規范和流程進行,使用無菌設備認真地進行抽樣活動,採用先進技術獲取相關信息。二是存放裝置。若想檢測過程順利進行,除了確保實驗室有必要的設施外,還應該重點考慮裝置存放的條件和要求。三是裝置和葯品的配置。在各項裝置進行安裝時應該對氣溫進行調節,確保其安穩,對裝置氣溫穩定性合乎規定要用的具體時間詳細記錄。同時在規定的時間內對各種裝置進行消毒處理,並通過感應設備對其運作狀態進行監測。對於葯品的配置,培養基往往在121℃下採用高壓濕熱滅菌法滅菌15分鍾;較為敏感的'培養基一般採用膜過濾法。四是樣本的處理。在樣本收集過程中,需要確保抽樣活動是在無菌環境下展開的,有效避免了樣本被污染。在樣本輸送時,應該防止樣本受到光線的影響而出現污染現象,抽樣之後就應該及時將其送至測試場地。一般樣本輸送時間要控制在3h內,如果無法及時送到,要確保在近乎之前的氣溫時將其完整的存放。
食品微生物檢驗內容
一是檢驗食品污染程度指示菌。細菌總數即菌落總數,是食品和生活飲用水檢樣處理後,在特定培養條件下,所得1g或者1mc檢樣中所含有的細菌菌落個數,這就是判斷食品和生活飲用水污染程度的關鍵指標。大腸菌群系是在37℃下培養24h的一群發酵乳糖、產氣、產配以及需氧或者厭氧的革蘭氏染色陰性無芽胞桿菌。這種菌群主要來源於人和牲畜的糞便,因此,可以用糞便的污染指標菌對食品的衛生質量進行評價。二是檢測食品中治病菌。在食品微生物相關檢驗標准中已經明確規定某些微生物的數量,因此在對食品污染程度指示菌檢測的同時,還應該對一些治病菌進行測定,如沙門氏菌、金黃色葡萄球菌等。
食品微生物檢測技術方法
很長時間以來,開展的此項檢測活動,是按照瓊脂平板的措施來進行的,通常要兩到三天的時間才可以完成。最近,許多的專家和組織都不斷地對工藝以及措施進行深化分析,獲取了非常高的成就,對許多措施進行了改進,切實提升了檢測的精準性以及安穩性特徵,而且獲取了許多全新的工藝,具體有如下的措施:
1.採用電阻抗法。具體的講,它是指細菌繁衍的時候,將會使培養基中的火分電惰性物質如碳水化合物、蛋白質和脂類等,代謝為具有電活性的小分子物質,其能增加培養基的導電性,進而導致阻抗出現改變,因此,可以通過檢測培養基的電阻抗變化情況來判定細菌在培養基中的生長繁殖特性,即可檢測出相應的細菌。
2.採用快速酶觸反應及代謝產物的檢測。細菌在生長繁殖過程中可合成和釋放某些特異性的酶,所以根據其特性來選用相對應的底物和指示劑,而且合理的記載信息。
3.採用分子生物學技術。它涵蓋兩項內容:1)核酸探針技術。結合鹼基互補相關的概念,使用獨特的措施來對物體進行標注。2)聚合酶鏈式反應(PCR)技術。其原理為通過加熱使雙鏈DNA經裂解成兩條單鏈,成為引物和DNA聚合酶的模板;接下來把氣溫變低,使寡聚核苷酸引物與DNA分子上的互補序列退火。通常狀態中,當退火的氣溫非常高的話,它的擴增特性就十分的優秀。
4.採用免疫學方法檢測細菌抗原和抗體的技術。具體有三項措施:1)熒光抗體檢測技術(IFA),它又有兩種,分別是直接的以及間接地。其中第一種是直接在樣本上滴加已知特異性熒游標記的抗血清,然後對其清洗,進而獲取信息。而後一種措施是在檢樣上滴加已知細菌特異性抗血清,等到發生反映之後再仔細地清洗,再加入熒游標記的抗體後在熒光顯微鏡下觀察結果。2)免疫酶技術(EIA),其是將抗原、抗體特異性反應和酶的高效催化作用原理結合,此法非常的獨特,而且功效非常好。通過共價結合將酶與抗原或抗體結合,形成酶標抗原或抗體,或通過免疫方法使酶與抗酶抗體結合,形成酶抗體復合物。3)免疫磁珠分離法(IMS),即應用抗體包被的免疫磁珠,用一個磁場裝置收集鐵珠。
5.採用儀器法。1)微型全自動熒光酶標分析儀(Mini-VIDAS),其主要採用具有優異的敏感性和特異性的酶聯熒光技術(ELFA),得到的熒光和抗原的比例是一種順向的關系。2)全自動微生物分析系統(Vietk-AMS)。它能夠一次對非常多的樣本開展分析,而且檢測的時間不需要非常久,通常在兩到三個小時即可,此法的效率非常好,同時也將成為檢測行業全行的發展趨勢。
;Ⅳ 純化水的微生物驗證大家是怎麼做的
首先:只做菌落總數和總大腸菌群兩項。
其次:當總大腸菌群產酸產氣時,根據需要做耐熱大腸菌群,和大腸埃希氏菌檢測。
在做大腸檢測時,有多管發酵法、濾膜法、酶底物法三種方法,可根據實驗室實際情況選擇具體方法。
標准參照「GB/T 5750.12-2006 生活飲用水標准檢驗方法 微生物指標」
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Ⅳ 無菌檢驗方法驗證
無菌檢查 方法 是為了檢查葯典要求無菌的制劑及其他製品是否無菌而建立的試驗方法!至於無菌檢查具體有哪些驗證方法呢?下面就隨我一起來了解下吧!
無菌檢驗方法驗證
無菌檢查方法驗證一般分為前驗證和再驗證兩種。
前驗證,也稱預驗證,指在無菌分析方法正式使用前,按照預定驗證方案進行的驗證。如果沒有充分的理由,任何檢查方法必須進行前驗證。
再驗證,指某一檢查方法經過驗證並在使用一段時間後進行的,旨在證實已驗證狀態沒有發生飄移而進行的重新驗證及對檢查方法進行修訂、改變時進行的驗證。
通常一個無菌產品的檢查流程為:首先基於產品的劑型、溶解度等性質,按照葯典的要求確定是否需要進行前處理;然後根據產品的特性是否有抑菌性,確定是否需要增加去除產品抑菌性的方法;最後驗證整個檢查方法中用到的一切及試驗過程中的每一個環節包括樣品的預處理方式、檢查過程、培養條件等均不影響樣品中微生物的生長。
前處理方法直接影響後續步驟的效果和重現性,應是驗證的重點。
供試品中抑菌活性的去除是當前驗證工作的重點,尤其強調應充分驗證供試品本身對微生物生長的影響。
(一)具體的驗證方法如下:
1. 菌種的選擇
無菌檢查方法驗證中通常選擇以下6種試驗中常用的控制菌的標准菌株,它們分別代表不同類型的菌種:枯草芽孢桿菌 [CMCC(B)63 501]代表葯品中常見的污染菌——芽孢桿菌、金黃色葡萄球菌 [CMCC(B)26 003]代表革蘭陽性菌、生孢梭菌 [CMCC(B)64 941]代表厭氧菌、大腸埃希菌 [CMCC(B)44 102]代表革蘭陰性菌、白色念珠菌 [CMCC(F)98 001]代表酵母菌、黑麴黴菌 [CMCC(F)98 003]代表黴菌。
2. 菌液的制備
接種金黃色葡萄球菌、大腸埃希菌、枯草芽孢桿菌的新鮮培養物至營養肉湯培養基中或營養瓊脂培養基上,接種生孢梭菌的新鮮培養物至硫乙醇酸鹽流體培養基中,30~35 ℃培養18~24h;接種白色念珠菌的新鮮培養物至改良馬丁培養基中或改良馬丁瓊脂培養基上,23~28℃培養24~48h,上述培養物用0.9%無菌氯化鈉溶液製成每1ml含菌數小於100cfu的菌懸液。接種黑麴黴的新鮮培養物至改良馬丁瓊脂斜面培養基上,23~28 ℃培養5~7天,加入3~5ml含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的0.9%無菌氯化鈉溶液,將孢子洗脫。然後,採用適宜的方法吸出孢子懸液至無菌試管內,用含0.05%(ml/ml)聚山梨酯80的0.9%無菌氯化鈉溶液製成每1ml含孢子數小於100cfu的孢子懸液。
3. 樣品的前處理
無菌產品中每個成分應該是均勻的,因此只要確定在驗證的方法中,按所需的總接種量即可,而不必像樣品日常檢測中按規定的容器數取樣。
如果制備樣品時需要使用溶解劑、稀釋劑、助溶劑、破乳劑等溶劑,需要確保這些溶劑是有效的,並且其使用對微生物生長無影響;或者制備過程中需要對樣品進行加熱助溶、離心等操作時,需要確保加熱的溫度、離心速度和離心時間等對微生物生長或分布無影響。 不需前處理的樣品免做。
(二)消除樣品抑菌性的方法
無抑菌性樣品的驗證方法:依據產品溶解性和微生物限度選擇合適的中性稀釋劑溶解和稀釋,用直接接種法驗證,常用中性稀釋液或淋洗液。
對於具有抑菌性樣品的驗證方法,首先確定樣品的抑菌作用(抑細菌、真菌試驗驗證),選擇敏感標准菌株對供試品抑菌活性去除效果檢查(陽性菌回收試驗)。 常用的消除樣品抑菌活性的方法如下:
1. 稀釋法:利用降低供試品的相對濃度,將樣品稀釋至最低抑菌濃度下進行。如:取規定量的樣品溶液至較大量的培養基中,使單位體積內的樣品含量減少,至不含抑菌作用。
2. 薄膜過濾法:利用體積差異分離,通過薄膜過濾,微生物被截於濾膜,培養薄膜觀察有無微生物生長。通常薄膜孔徑應不大於0.45μm,直徑一般為50?mm,若採用其他直徑的濾膜,沖洗量應進行相應的調整。濾器和濾膜在使用前採用適宜的方法進行滅菌。使用時應保證濾膜在過濾前後的完整性。水溶性供試液過濾前先將少量的沖洗液過濾以潤濕濾膜。油類供試液其濾膜和濾器在使用前應充分乾燥。 供試液經過濾膜過濾後,若需要用沖洗液沖洗濾膜,每張濾膜每次沖洗量為100?ml。總沖洗量不得超過1000ml。
3. 化學中和法:利用化學(生物)專屬性滅活,常用中和劑或滅活方法有:對氨基苯甲酸、卵磷脂、聚山梨酯-80等。對化學中和劑不敏感的樣品,用酶中和,如β -內醯胺酶。
4. 聯合使用:將以上兩種或幾種方法組合運用,以消除樣品的抑菌性。適用於抑菌作用較強的中西葯制劑。
5. 其次按照以下要求制備3組樣品:
樣品組:選擇以上適當的方法中和樣品,加入少量驗證微生物(接種量少於100cfu)。
對照組:0.1%蛋白腖或pH7.0無菌氯化鈉-蛋白腖緩沖液,加少量微生物(接種量少於100cfu)。
陽性對照組:將試驗菌株直接接種於培養基中(接種量少於100cfu)。
6. 最後結果分析如下:
樣品組與對照組微生物生長數量相似,表明中和劑的中和方式有效消除了樣品的抑菌性(即有效性),如果對照組與陽性對照組的微生物數量相似,表明樣品預處理、消除樣品抑菌性的方法、檢測程序和培養條件等均不影響微生物生長(即無毒性)。樣品如無抑菌性,省去對照組試驗,樣品組與陽性對照組直接比較。樣品組微生物生長數量不及陽性對照組微生物生長數量,表明樣品的預處理、試驗用器具材料、培養條件等方面存在對微生物生長不利的因素。
(三) 為考查驗證方法的穩定性和重現性,驗證至少需3個不同批次的同類樣品,分別進行3次驗證試驗。
無菌檢查方法驗證試驗設計
薄膜過濾法:按照葯典的要求取每種培養基規定接種的樣品總量按薄膜過濾法過濾、沖洗,在最後一次的沖洗液中加入小於100cfu的試驗菌,過濾。取出濾膜接種至硫乙醇酸鹽流體培養或改良馬丁培養基中,或將培養基加至濾桶內。另取一裝有同體積培養基的容器,加入等量試驗菌,作為對照。按照葯典的要求的溫度和時間進行培養。
直接接種法:取符合直接接種法培養基用量要求的硫乙醇酸鹽流體培養基8管,分別接入小於100cfu的金黃色葡萄球菌、大腸埃希菌、枯草芽孢桿菌、生孢梭菌各2管;取符合直接接種法培養基用量要求的改良馬丁培養基4管,分別接入小於100?cfu的白色念珠菌、黑麴黴各2管。其中1管接入每支培養基規定的供試品接種量,另1管作為對照,按照葯典的要求的溫度和時間進行培養。
結果判斷
同對照管比較,如含供試品各容器中的試驗菌均生長良好,則說明驗證通過;如含供試品的任一容器中的試驗菌生長微弱、緩慢或不生長,驗證失敗,應採用增加沖洗量、增加培養基的用量、使用中和劑和滅活劑、更換濾膜等方法,消除供試品的抑菌作用,重新進行驗證。
無菌檢查的常見方法首先要檢查方法驗證方案設計的科學性和完整性,是否有與葯典方法相悖的地方,尤其是產品本身的抑菌性,檢查方法的選擇,是直接接種法還是薄膜過濾法等。
無菌檢查方法驗證的硬體是否具備及是否已經進行了相關的確認。如使用黑麴黴菌是否具有生物安全櫃並進行確認,無菌室的確認及日常監測,培養箱的型號及數量和進行確認的情況等,智能集菌器、全封閉無菌試驗過濾培養器的型號、性能,濾膜是否符合規定等。
驗證中各個環節有關數據的真實性,如產品本身抑菌性試驗數據,菌種回收率和培養基適用性和靈敏度檢查數據,菌種的傳代、銷毀和使用記錄,無菌檢查操作記錄、培養記錄等。
無菌檢查中偏差的處理是否真的找到了根本原因,是否在沒有確切的原因前就對樣品重新檢查並依據新的檢查結果放行產品。
驗證的方法與無菌檢查操作規程和無菌檢查記錄是否完全一致,如操作步驟、檢查方法、檢查環境、試驗耗材均需與實際檢查操作規程及驗證過程完全相符。
為了考查驗證方法的穩定性和重現性,驗證時是否至少採用了3個不同批次的同類樣品,分別進行了3次驗證試驗。
使用新的濾膜或過濾器(不同廠家或批號、型號)是否重新進行樣品試驗組、蛋白腖對照組和陽性對照組的驗證確認。
除非樣品不能採用過濾的方法(難溶解),企業是否採用全封閉的薄膜過濾法。
菌液的保存條件和保存期限是否符合葯典的要求,對於黑麴黴孢子懸液是否有驗證的資料。
無菌檢查的注意事項
培養基的適用性檢查包括培養基的無菌性檢查和培養基的靈敏度檢查。
中國葯典附錄中規定的檢驗數量不包括陽性對照用樣品量,雖然附錄另處有專門說明,仍然容易忽略。
無菌檢查時應強調“檢驗數量”,主要是保證試驗結果的代表性,而陽性對照試驗和驗證時僅須滿足“檢驗量”總量要求即可,以保證試驗結果的可靠性,驗證試驗可以由此減少大量的樣品;工作菌株的傳代次數不得超過5代,以防止過度的傳代增加菌種變異的風險。這里“代”的定義是指,活的培養物接種到微生物生長的新鮮培養基中培養,任何亞培養的形式均被認為是轉種或傳代一次。
菌液加入,按規定應在最後一次沖洗液中加入陽性菌液,主要是考慮過濾器的有效性。過濾器的有效性應由提供企業控制,用戶可採用適當方法抽查(如檢查陽性菌液通過濾筒的流出液)。
實驗室菌種的處理和保存的程序應標准化,以盡可能減少菌種污染和變異。
試驗時菌懸液並不是只要活的菌體就行,而是要保持旺盛的生命力,所以菌懸液存放時間不能太長。
菌液制備後若在室溫下放置,應在2?h內使用,若保存在2~8℃,可在24?h內使用。黑麴黴孢子懸液可保存在2~8℃,在驗證過的貯存期內使用。
薄膜過濾法採用大樣品量集菌的方法,具有代表性,不易漏檢,儀器操作相對簡單。該系統是全封閉過濾系統,避免了操作過程中外源性微生物的污染,對試驗結果的可信性影響較小。因此無菌試驗採用薄膜過濾法還是直接接種法並不依賴於驗證結果,而是取決於樣品的特性,如能採用過濾的方法均應採用薄膜過濾法檢查。
若樣品含有抑菌成分,當採用薄膜過濾法時,應先將供試液稀釋後在過濾,這樣可以減少濾膜對樣品的吸附,減少沖洗量,進而減少微生物的損失或傷害。
無菌檢查應作為穩定性考察的項目進行,以便對產品有效期的制定和合理的確定儲存條件提供重要的依據。
看了無菌檢驗方法驗證的人還看:
1. 生物工程實習報告
2. 保健食品標識規定
4. 無形資產的評估方法
Ⅵ 微生物生長的幾種檢測方法
一、生長量測定法
1.1體積測量法:又稱測菌絲濃度法。
通過測定一定體積培養液中所含菌絲的量來反映微生物的生長狀況。方法是,取一定量的待測培養液(如10毫升)放在有刻度的離心管中,設定一定的離心時間(如5分鍾)和轉速(如5000rpm),離心後,倒出上清夜,測出上清夜體積為v,則菌絲濃度為(10-v)/10。菌絲濃度測定法是大規模工業發酵生產上微生物生長的一個重要監測指標。這種方法比較粗放,簡便,快速,但需要設定一致的處理條件,否則偏差很大,由於離心沉澱物中夾雜有一些固體營養物,結果會有一定偏差。
1.2稱乾重法:
可用離心或過濾法測定。一般乾重為濕重的10-20%。在離心法中,將一定體積待測培養液倒入離心管中,設定一定的離心時間和轉速,進行離心,並用清水離心洗滌1-5次,進行乾燥。乾燥可用烘箱在105℃或100℃下烘乾,或採用紅外線烘乾,也可在80℃或40℃下真空乾燥,乾燥後稱重。如用過濾法,絲狀真菌可用濾紙過濾,細菌可用醋酸纖維膜等濾膜過濾,過濾後用少量水洗滌,在40℃下進行真空乾燥。稱乾重發法較為煩瑣,通常獲取的微生物產品為菌體時,常採用這種方法,如活性乾酵母(activitydryyeast,ADY),一些以微生物菌體為活性物質的飼料和肥料。
1.3比濁法:
微生物的生長引起培養物混濁度的增高。通過紫外分光光度計測定一定波長下的吸光值,判斷微生物的生長狀況。對某一培養物內的菌體生長作定時跟蹤時,可採用一種特製的有側臂的三角燒瓶。將側臂插入光電比色計的比色座孔中,即可隨時測定其生長情況,而不必取菌液。該法主要用於發酵工業菌體生長監測。如我所使用UNICO公司的紫外-可見分光光度計,在波長600nm處用比色管定時測定發酵液的吸光光度值OD600,以此監控E.Coli的生長及誘導時間。
1.4菌絲長度測量法:
對於絲狀真菌和一些放線菌,可以在培養基上測定一定時間內菌絲生長的長度,或是利用一隻一端開口並帶有刻度的細玻璃管,到入合適的培養基,卧放,在開口的一端接種微生物,一段時間後記錄其菌絲生長長度,藉此衡量絲狀微生物的生長
二、微生物計數法
2.1血球計數板法:
血球計數板是一種有特別結構刻度和厚度的厚玻璃片,玻片上有四條溝和兩條嵴,中央有一短橫溝和兩個平台,兩嵴的表比兩平台的表面高0.1mm,每個平台上刻有不同規格的格網,中央0.1mm2面積上刻有400個小方格。通過油鏡觀察,統計一定大格內微生物的數量,即可算出1毫升菌液中所含的菌體數。這種方法簡便,直觀,快捷,但只適宜於單細胞狀態的微生物或絲狀微生物所產生的孢子進行計數,並且所得結果是包括死細胞在內的總菌數。
2.2染色計數法:
為了彌補一些微生物在油鏡下不易觀察計數,而直接用血球計數板法又無法區分死細胞和活細胞的不足,人們發明了染色計數法。藉助不同的染料對菌體進行適當的染色,可以更方便的在顯微鏡下進行活菌計數。如酵母活細胞計數可用美藍染色液,染色後在顯微鏡下觀察,活細胞為無色,而死細胞為藍色。
2.3比例計數法:
將已知顆粒(如黴菌孢子或紅細胞)濃度的液體與一待測細胞濃度的菌液按一定比例均勻混合,在顯微鏡視野中數出各自的數目,即可得未知菌液的細胞濃度。這種計數方法比較粗放。並且需要配製已知顆粒濃度的懸液做標准。
2.4液體稀釋法:
對未知菌樣做連續十倍系列稀釋,根據估計數,從最適宜的三個連續的10倍稀釋液中各取5毫升試樣,接種1毫升到3組共15隻裝培養液的試管中,經培養後記錄每個稀釋度出現生長的試管數,然後查最大或然數表MPN(mostprobablynumber)得出菌樣的含菌數,根據樣品稀釋倍數計算出活菌含量。該法常用於食品中微生物的檢測,例如飲用水和牛奶的微生物限量檢查。
2.5平板菌落計數法:
這是一種最常用的活菌計數法。將待測菌液進行梯度稀釋,取一定
體積的稀釋菌液與合適的固體培養基在凝固前均勻混合,或將菌液塗布於已凝固的固體培養基平板上。保溫培養後,用平板上出現的菌落數乘以菌液稀釋度,即可算出原菌液的含菌數。一般以直徑9cm的平板上出現50-500個菌落為宜。但方法比較麻煩,操作者需有熟練的技術。平板菌落計數法不僅可以得出菌液中活菌的含菌數,而且同時將菌液中的細菌進行了一次分離培養,獲得了單克隆。
2.6試劑紙法:
在平板計數法的基礎上,發展了小型商品化產品以供快速計數用。形式有小型厚濾紙片,瓊脂片等。在濾紙和瓊脂片中吸有合適的培養基,其中加入活性指示劑2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC,無色)待蘸取測試菌液後置密封包裝袋中培養。短期培養後在濾紙上出現一定密度的玫瑰色微小菌落與標准紙色板上圖譜比較即可估算出樣品的含菌量。試劑紙法計數快捷准確,相比而言避免了平板計數法的人為操作誤差。
2.7膜過濾法:
用特殊的濾膜過濾一定體積的含菌樣品,經丫叮橙染色,在紫外顯微鏡下觀察細胞的熒光,活細胞會發橙色熒光,而死細胞則發綠色熒光。
2.8生理指標法:
微生物的生長伴隨著一系列生理指標發生變化,例如酸鹼度,發酵液中的含氮量,含糖量,產氣量等,與生長量相平行的'生理指標很多,它們可作為生長測定的相對值。
2.9測定含氮量:
大多數細菌的含氮量為乾重的12.5%,酵母為7.5%,黴菌為6.0%。根據含氮量×6.25,即可測定粗蛋白的含量。含氮量的測定方法有很多,如用硫酸,過氯酸,碘酸,磷酸等消化法和Dumas測N2氣法。Dumas測N2氣法是將樣品與CuO混合,在CO2氣流中加熱後產生氮氣,收集在呼吸計中,用KOH吸去CO2後即可測出N2的量。
2.10測定含碳量:
將少量(乾重0.2-2.0mg)生物材料混入1毫升水或無機緩沖液中,用2毫升2%的K2Cr2O7溶液在1000C下加熱30分鍾後冷卻。加水稀釋至5毫升,在580nm的波長下讀取吸光光度值,即可推算出生長量。需用試劑做空白對照,用標准樣品做標准曲線。
2.11還原糖測定法:
還原糖通常是指單糖或寡糖,可以被微生(轉載於:mHg)的條件下才能生長,他們有完整的呼吸鏈,以分子氧為最終氫受體,具有超氧化物歧化酶(SOD)和過氧化氫酶。
兼性厭氧菌:它是以在有氧條件下的生長為主也可兼在厭氧條件下生長的微生物,有時也稱「兼性好氧菌」。
微好氧菌:只能在嬌滴滴額氧分壓(1.33~3.Pa,正常大氣中的氧分壓為0.2bar)下才能正常生長的微生物。
耐氧菌:耐氧性厭氧菌的簡稱,是一類可在分子氧存在下進行發酵性厭氧生活的厭氧菌。
厭氧菌:有一般厭氧菌與嚴格厭氧菌(專性厭氧菌)之分。
超氧陰離子自由基:活性氧的形式之一,因有奇數電子,故帶負電荷;它既有分子性質,又有離子性質;其性質極不穩定,化學反應力極強,在細胞內可破壞各種重要生物大分子和膜結構,還可形成其他活性氧化物,故對生物體極其有害。
超氧化物歧化酶(SOD):保護好氧菌免受超氧化物陰離子自由基的毒害的酶。按SOD分子中所含金屬輔基的不同分三類:1、含Cu、Zn的SOD,存在於幾乎所有真核生物的細胞質中;2、含Fe的SOD,主要存在原核生物中;3、含Mn的SOD,主要存在於真核生物的線粒體中。SOD除可清除超氧陰離子自由基外,還發現在防治人體衰老、治療自身免疫性疾病、抗癌、防白內障、治療放射病和肺氣腫以及解除苯中毒等方面有一系列療效。
PRAS培養基:用嚴格厭氧方法配置、分裝、滅菌後的厭氧菌培養基,稱為預還原無氧滅菌培養基,即PRAS培養基。
厭氧罐:培養厭氧菌的裝置。
亨蓋特滾管技術:一種集制備高純氮、以氮驅氧和全過程實現無氧操作、無氧培養、無氧檢測於一體,用於研究嚴格厭氧菌的技術和裝置。
厭氧手套箱:一種用於無氧操作和培養嚴格厭氧菌的箱形密閉裝置。
搖瓶培養:一般將三角瓶內培養液的瓶口用8層紗布包紮,以利通氣和防止雜菌污染,同時減少瓶內裝液量,把它放在往復式或旋轉式搖床上作有節奏的震盪,以達到提高溶氧量的目的。
曲:是一類用麩皮、米糠等疏鬆的固體營養料接種、培養微生物而製成的含氧活菌產品。
曲法培養:將麩皮、碎麥或豆餅等固態基質經蒸煮和自然接種後,薄薄地鋪在培養容器表面,使微生物即可獲得充足的氧氣,又有利於散發熱量,對真菌來說,還有利於產生大量孢子。
通風曲:一種機械化程度和生產效率都較高的現代大規模製曲技術,在我國醬油釀造業中廣泛應用。
污染:有害微生物通過氣流、水流、接觸和人工接種等方式,傳播到合適的基質或生物對象上而造成種種危害。
巴氏消毒法:有發過微生物學家巴斯德用於果酒消毒,故名。這是一種專用於牛奶、啤酒、果酒或醬油等不宜進行高溫滅菌的也太風味食品或調料的低溫消毒方法(一般在60-85度下處理30min至15s)。有兩種方法:1、低溫維持法;2、高溫瞬時法。
間歇滅菌法:適用於不耐熱的培養基滅菌。方法是:講帶滅菌的培養基放在80-100度下蒸煮15-60min,以殺滅其中所有的微生物營養體,然後放至室溫37度下保溫過
夜,誘使其中殘存的芽孢發芽,第二天再以同樣方法蒸煮和保溫過夜,如此重復3天即可在較低的滅菌溫度下同樣達到徹底滅菌的效果。
連續加壓蒸氣滅菌法:讓培養基在管道的流動過程中快速升溫、維持和冷卻,然後流進發酵罐。
梅拉特反應:高溫滅菌時,培養基中得氨基化合物(氨基酸、肽、蛋白質)的游離氨基與羧基化合物(糖類)的羰基間發生復雜的化學反應,導致培養基褐變同時,還降低了有關營養物成分,故應設法避免。
石炭酸系數:一定時期內,被試葯劑能殺死全部供試菌的最高稀釋度與達到同效果的石炭酸的最高稀釋度之比。
抗生素:一類有微生物或其他生物生命活動過程中合成的此生代謝產物或其人工衍生物,他們在很低濃度時就能一直或干擾他種生物的生命活力,因而可用作有兩的化學治療劑。
抗代謝葯物:一類在化學結構上與細胞內必要代謝物的結構相似,並可干擾正常代謝活動的化學物質。3種作用:1、與正常代謝物一起共同競爭酶的活性中心,從而使微生物正常代謝所需要的重要物質無法正常合成,例如磺胺類;2、「假冒」正常代謝物,使微生物合成出無法正常生理活動的假產物,如8-重氮鳥嘌呤取代鳥嘌呤而合成的核苷酸就會產生無正常功能的RNA;3、某些抗代謝葯物與某一生化合成途徑的終產物結構類似,可通過反饋調節破壞正常代謝調節機制,例如,6-巰基腺嘌呤可抑制腺嘌呤核苷酸的合成。
選擇毒力:大於病原菌具高度毒力而對其宿主基本無毒的化學物質來抑制宿主體內病源微生物的生長繁殖,藉以達到治療該宿主傳染病的一種措施。