計算機如果中病毒了,那麼我們要怎麼樣去檢測呢?下面由我給你做出詳細的計算機病毒檢測 方法 介紹!希望對你有幫助!
計算機病毒檢測方法一:
計算機病毒檢測 1.手工檢測
手工檢測是指通過一些軟體工具(DEBUG.COM、PCTOOLS.EXE、NU.COM、SYSINFO.EXE等提供的功能) 進行病毒的檢測。這種方法比較復雜,需要檢測者熟悉機器指令和 操作系統 ,因而無法普及。
它的基本過程是利用一些工具軟體,對易遭病毒攻擊和修改的內存及磁碟的有關部分進行檢查,通過和正常情況下的狀態進行對比分析,來判斷是否被病毒感染。這種方法檢測病毒,費時費力,但可以剖析新病毒,檢測識別未知病毒,可以檢測一些自動檢測工具不認識的新病毒。
計算機病毒檢測 2.自動檢測
自動檢測是指通過一些診斷軟體來判讀一個系統或一個軟盤是否有毒的方法。自動檢測則比較簡單,一般用戶都可以進行,但需要較好的診斷軟體。
這種方法可方便地檢測大量的病毒,但是,自動檢測工具只能識別已知病毒,而且自動檢測工具的發展總是滯後於病毒的發展,所以檢測工具總是對相對數量的未知病毒不能識別。
就兩種方法相比較而言,手工檢測方法操作難度大,技術復雜,它需要操作人員有一定的軟體分析 經驗 以及對操作系統有一個深入的了解。而自動檢測方法操作簡單、使用方便,適合於一般的計算機用戶學習使用;但是
由於計算機病毒的種類較多,程序復雜,再加上不斷地出現病毒的變種,所以自動檢測方法不可能檢測所有未知的病毒。在出現一種新型的病毒時,如果現有的各種檢測工具無法檢測這種病毒,則只能用手工方法進行病毒的檢測。其實,自動檢測也是在手工檢測成功的基礎上把手工檢測方法程序化後所得的。
因此,手工檢測病毒是最基本、最有力的工具。
病毒感染正常文件或系統會引起各種變化,從這些變化中找出某些本質性的變化,作為診斷病毒的判據。廣泛使用的主要檢測病毒方法有:比較法、搜索法、分析法、感染實驗法、軟體模擬法、行為檢測法。
計算機病毒檢測方法二:
提早發現病毒對計算機的防護是很重要的。早發現,早處置,可以減少損失。現在介紹幾種檢測病毒的方法,雖然方法不盡相同,但各具所長。 特徵代碼法、校驗和法、行為監測法、軟體模擬法,
病毒特徵代碼檢測法
特徵代碼檢測是目前較為普遍的病毒檢測方法,是通過檢測工具(反病毒軟體)置入已知病毒特徵代碼來檢測病毒,但對從未見過的新病毒,卻無法檢測。在技術上需要不斷更新程序版本,升級病毒特徵代碼。
文件校驗和法
將計算出系統正常文件內容的校驗和進行保存。並定期檢查文件的校驗和與原來保存的校驗和是否一致,從而發現文件是否感染病毒,這種方法叫文件校驗和法。它既可發現已知病毒又可發現未知病毒,能觀測文件的細微變化。
但是這種方法常常誤報警,原因是病毒感染並非文件內容改變的惟一的非他性,還有可能是正常程序引起的。文件校驗和法不是最好的方法,它會影響文件的運行速度。不能識別病毒名稱、不能對付隱蔽型病毒。
行為特徵監測法
利用病毒的特有行為特徵性來監測病毒的方法,稱為行為監測法。通過對病毒長期觀察,研究、識別出病毒行為共同性和特殊性。當系統運行時,監視其行為,如果有病毒行為,會立即發出警報。行為特徵監測法可以發現未知病毒、能相當准確地預報未知的多數病毒。但可能導致誤報、不能識別病毒名稱。
軟體模擬法由此演繹為虛擬機上進行的查毒,啟發式查毒技術等,是相對成熟的技術。
❷ 常見病毒的培養方法 及其具體的過程!
我見過的有雞胚胎法。
病毒研究的發展常常與病毒培養和檢測方法的進步有密切的關系,特別在脊椎動物病毒方面,小鼠和雞胚接種、組織培養、超速離心、凝膠電泳、電子顯微鏡和免疫測定等技術,對病毒學的發展具有深刻的影響。
噬菌體的培養和檢測方法最為簡單。將噬菌體接種到易感細菌的肉湯培養物中,經18~24小時後,混濁的培養物重新透明,此時細菌被裂解,大量噬菌體被釋放到肉湯中,再經除菌過濾,即為粗製噬菌體。為了測定其中噬菌體的數量,將粗製噬菌體稀釋到每一接種量含100個左右,與過量的細菌混合,然後鋪種於瓊脂平皿上,在溫箱中培養過夜,細菌繁殖成乳白色襯底,被噬菌體裂解的區域則在此襯底上表現為圓形的透明斑,稱為噬斑。噬斑數代表該接種量中有活力的噬菌體數量。如果挑出單個噬斑來培養,就能獲得由單個噬菌體所繁殖的後代,達到分離純化的目的。
動物病毒(見脊椎動物病毒)的培養可在自然宿主、實驗動物、雞胚或細胞培養中進行,以死亡、發病或病變等作為病毒繁殖的直接指標,或以血細胞凝集、抗原測定等作為間接指標。收獲發病動物的組織磨成懸液或有病變的細胞培養液,即為粗製病毒。測定活病毒數量可採用空斑法,其原理與噬斑法相同,但以易感的動物單層細胞代替細菌,在接種適當稀釋的病毒後,用含有培養液和中性紅的瓊脂覆蓋,使病毒感染局限在小面積內形成病變區,襯底的健康細胞被中性紅染成紅色,病變區不染色而顯示為空斑。
至今植物病毒的培養和檢測大都是在整株植物上進行的。從搗碎的病葉汁中制備病毒,常用枯斑法檢測。用手指蘸上混有金剛砂的稀釋病毒在植物葉片上軒輕磨擦,經一定時間後出現單個分開的圓形壞死或退綠斑點,稱為枯斑。
除了利用病毒的致病性定量檢測病毒外,還可應用物理方法,如在電子顯微鏡下計數病毒顆粒,或用紫外分光光度計測定提純病毒的蛋白和核酸量,這些方法所測得的數據包括了有感染性和無感染性的病毒粒。
應用電子顯微鏡不但能看清病毒粒的大小、形態,還可以分辨其表面的蛋白亞單位和內部的核殼等超微結構。
❸ 生物學的主要研究方法都有哪些
生物學家對於生命現象的研究通常採用觀察和實驗的方法,通常這兩種方法是一起使用的。
1、 觀察是按生物的物理性狀來描述生物的狀況。通常是先對其外形及行為進行觀察和描述,再把生物體解剖藉助光學儀器對其內部結構進行觀察。觀察是多種多樣的,有個體的觀察也有群體的觀察;有靜態的觀察也有動態的觀察;有相同種類的觀察也有不同種類的對比觀察。
2、 實驗是人為地改變一些條件來觀測生物的變化和反應,以探究生命內在的因果關系,是認識生命活動的方法。
實驗方法是人為地干預、控制所研究的對象,並通過這種干預和控制所造成的效應來研究對象的某種屬性。17世紀前後生物學中出現了最早的一批生物學實驗,如英國生理學家威廉·哈維關於血液循環的實驗,揚·巴普蒂斯塔·范·海爾蒙特關於柳樹生長的實驗等。
到了19世紀,物理學、化學比較成熟了,生物學實驗就有了堅實的基礎,因而首先是生理學,然後是細菌學和生物化學相繼成為明確的實驗性的學科。19世紀80年代,實驗方法進一步被應用到了胚胎學,細胞學和遺傳學等學科。
系統的方法:
系統科學源自對還原論、機械論反省提出的有機體、綜合哲學,從克洛德·貝爾納與沃爾特·布拉福德·坎農揭示生物的穩態現象、諾伯特·維納與威廉·羅斯·艾什比的控制論到卡爾·路德維希·馮·貝塔郎非的一般系統論。
最早建立的是系統心理學,系統生態學、系統生理學等先後建立與發展,20世紀70-80年代系統論與生物學、系統生物學等概念發表。
從克勞德·香農的資訊理論到伊利亞·普里高津的耗散結構理論,將生命看作自組織化系統。細胞生物學、生化與分子生物學發展,曼弗雷德·艾根提出細胞、分子水平探討的超循環(化學)理論。
(3)病毒學研究常用方法擴展閱讀:
研究領域
生物學家從很多面向研究生物,因此產生很多研究領域。例如:
1、 面向原子和分子:分子生物學、生物化學、結構生物學。
2、 面向細胞:細胞生物學、微生物學、病毒學。
3、 面向多細胞:生理學、發育生物學、組織學。
4、 面向宏觀:生態學、演化生物學。
生物學本身不斷的快速發展,與其他學科的關聯整合也越來越多。一大原因是分子生物學在近代突飛猛進,終於導致人類基因序列定序基本完成。
由此,為了解讀巨大數量的基因信息,促成了基因組學。為了探究基因和蛋白質的交互作用,開創出蛋白質組學。這些新的研究領域幫助解決疾病、糧食、環境生態等問題。其眾多的研究信息和積累海量研究數據則需要新的電腦演算法來處理。
❹ 如何利用電鏡技術測定病毒粒體的特徵
隨著科學的發展,電鏡已成為一種綜合的分析儀器,在植物病毒的診斷和鑒定中發揮著重要作用。植物病毒學上用得較多的是透射電鏡。
1 透射電鏡的成像原理
顯微鏡的解析度與其使用光源的波長呈負相關,即波長越短分辨本領越大。可見光的波長范圍為0.4~0.7μm,它決定了光鏡的分辨極限為0.2μm,有效放大倍數不能超過2000倍。電鏡用的光源為電子槍產生的高速電子束,其波長比可見光短十萬倍以上,因而大大地提高了解析度。電鏡解析度接近0.lnm,有效放大倍數在百萬倍以上。
在電子顯微鏡下可觀察病毒粒體外形、大小以及在寄主細胞中的位置等。植物病毒粒子常見的有球形、長桿狀、線形和彈狀。
2 制樣技術
樣品處理技術多種多樣,適用於不同的材料和觀察目的。如金屬投影和復型技術,主要用於病毒或其他大分子的表面結構和大小觀察;冰凍蝕刻用於細胞化學、生物膜等研究;另外還有放射自顯影電鏡技術、免疫電鏡技術等。而植物病毒學上廣泛應用的是負染技術和超薄切片技術。負染制樣操作簡單,所需時間少;而超薄切片制樣方法操作復雜,所需時間長,但這種方法可以觀察到病毒粒子在組織中的情況。
2.1 負染技術
負染是相對正染而言的。是指在樣品的周圍包被高電子密度的染料,背景呈深色,而樣品呈白色,反襯出樣品的輪廓。病毒負染後能很清楚地看到其大小和細微結構。此法簡便、易行、快速,為病毒診斷提供了一種可靠手段。現在鑒定病毒,一般先用病汁液做負染觀察,根據看到的病毒的大小和形狀等,能為進一步研究提供許多有用信息,如採用什麼方法提純、病毒的分類地位如何等。其中有六個病毒屬的形態特徵非常典型,幾乎可以憑此特徵就能確定它們屬於哪個病毒科、屬,見表1。
表1 六個典型特徵病毒屬
pH調節用1mol/L HCl或1mol/L NaOH,而鉬酸銨用醋酸銨調,甲酸鈾用氫氧化銨調。
強大電子束的轟擊,是造成病毒變形和失去結構細節的另一重要原因,觀察時要採用盡量低亮度光斑,動作迅速,以減少轟擊時間。Forvmor膜等在電子束照射下,容易漂移,這樣病毒會被拉長或拉寬,因此,在測量病毒顆粒大小等精確觀察時,最好使用碳膜,或在Forvmor膜上加噴一層碳膜。
(5)病毒粒體大小測量 目前病毒學工作者已經注意到,同一病毒的大小不一樣,有些甚至相差甚遠。這可能是由於不同分離物或不同株系本身就不同,但大部分可能是由於實驗誤差或方法上的差別造成的。測量病毒大小,一般不宜提純病毒,而要用病株粗提液。因為病毒在提純過程中的形態結構,會由於提純過程中離子環境等的變化和物理因素的影響發生而變化。染色要用兩種以上染料,測量病毒顆粒的數量要盡量多,尤其是線狀病毒容易斷裂,數量應在100個以上。
2.2 超薄切片技術
根據電鏡成像原理可知,用於電鏡觀察樣品其厚度要求在數十納米,而通常單個細胞的厚度在數十微米,比要求厚度大100倍,而徒手切片或用於光鏡的切片機,其切片厚度一般在單個細胞水平,所以電鏡觀察必須做超薄切片。
超薄切片一般程序為:取材—固定—脫水—包埋—切片—染色—電鏡觀察。
(1)取材 取材要求典型、迅速,機械損傷小。材料切成1mm3大小,離體後1min之內進入固定液。應取不同寄主材料、同一寄主的不同組織和不同接種時期的樣品。
(2)固定 是用物理的或化學的方法迅速將細胞殺死,並且盡可能地使保存和固定細胞內各種結構、生物大分子生活時的狀態和位置。電鏡中常用的固定方法是化學固定。常用四氧化鋨、戊二醛、高錳酸鉀或重鉻酸鉀等固定劑。在病毒學中一般採用2%~3%戊二醛—1%~2%四氧化鋨(用0.2mol/LPBS,pH7.2配製)雙固定法,這樣細胞中的多種成分,如蛋白質、脂類、多糖、核酸等,大部分都能固定下來。戊二醛固定12~24h,四氧化鋨固定2~4h。戊二醛遇到鋨酸會形成沉澱,因此戊二醛固定後一定要用緩沖液充分清洗後再進行四氧化鋨固定。固定在超薄切片中很關鍵,固定液的種類、濃度、pH、滲透壓、離子組成、固定時間、溫度和方式都與固定的質量密切相關。因此,整個固定過程應該在4℃下進行。固定劑一定要用緩沖液配製。固定好的材料,電鏡下細胞內各種膜系統應該完整,沒有斷裂,雙層膜要基本平行,細胞質呈精細顆粒狀,沒有空白。固定後緩沖液要充分清洗後再進行下面的步驟。
(3)脫水 常用的包埋劑是疏水的,因此包埋前要用既親水又親脂的乙醇或丙酮進行脫水。從低濃度到高濃度的脫水劑脫水,最後用絕對無水的脫水劑脫水。
(4)包埋 包埋的目的是增強樣品的機械強度,使樣品具有一定的機械形狀,適於切片機工作;另一個重要作用是進一步固定細胞結構。包埋劑種類很多,有水溶性的,也有脂溶性的。常用的是Epon812等環氧樹脂。包埋過程中發生的化學反應,叫聚合過程。聚合過程中實際上發生了兩類反應,一類是環氧樹脂末端環氧基之間在胺類化合物(如DMP-30)催化下,化合生成長鏈;另一類是樹脂中間的羥基和交聯劑(也稱固定劑)的酸酐發生反應,生成橫向連橋,加固了樹脂分子之間的聯系。為了增強樹脂聚合形成的包埋塊的切割性能,常加入一些增塑劑,如樹脂、催化劑、固化劑。
(5)切片 准確、熟練地掌握切片機操作技術,包埋塊軟硬適度,修塊好,就能切出要求質量的片子來。這里技巧很重要。
(6)超薄切片的染色 也叫電鏡技術的正染色。觀察內容不一樣,採用染色方法不同,病毒內含體和細胞病理學研究則常用醋酸雙氧鈾—檸檬酸鉛染色法。切片在1%~2%醋酸雙氧鈾中染色20min,用50%乙醇沖洗後用檸檬酸鉛染色30min,0.01mol/L NaOH沖洗。染色的關鍵是要防止醋酸鈾和檸檬酸鉛生成沉澱。防止污染的主要措施是防止CO2和檸檬酸鉛反應。如用剛制備出的蒸餾水配製染料和沖洗劑,染色時在小室中進行,小室中放入吸收CO2的固體NaOH,防止人呼吸時CO2進入小室中,戴口罩等。染色和沖洗完畢,切片自然乾燥後就可以電鏡觀察。
電子顯微鏡的出現及各種電鏡技術的發展,為植物病毒的直接觀察起到了巨大的推動作用,使檢疫工作人員能得到受病毒感染的病毒粒子電鏡照片以作為直接證據。但電鏡觀察結果需要和其他方法的檢測結果相結合,才能確定病毒的分類地位。這是因為許多病毒都有類似的形態和結構。由於一些植物汁液中病毒濃度過低,在進行常規的電鏡觀察檢測中,很難發現病毒粒子,這樣就要求對一些植物病毒進行分離和提純,以便進行有效的電鏡觀察和其他理化檢測。病毒的分離和提純主要是採用差速離心、PEG沉澱的方法,進一步的純化則採用密度梯度離心和柱層析法。為了直接檢測植物體內的帶毒情況,常採用植物組織的超薄切片和電鏡觀察進行。超薄切片的電鏡觀察可以直接用於對植物組織內部的病毒形態、內含體形態、病毒所在的部位、受感染的植物組織發生的病理學變化等進行檢查。