交叉反應率計算方法

⑴ 放射免疫分析簡介

目錄

• 1 拼音
• 2 英文參考
• 3 概述
• 4 放射免疫分析的基本原理
• 4.1 標記物
• 4.2 標記方法
• 4.3 標記物的鑒定
• 4.4 抗血清的檢定
• 5 放射免疫分析的測定方法
• 5.1 抗原抗體反應
• 5.2 B、F分離技術
• 5.3 放射性強度的測定
• 6 放射免疫分析在醫學檢驗中的應用

1 拼音

fàng shè miǎn yì fēn xī

2 英文參考

radioimmunoassay，RIA

3 概述

放射免疫分析（radioimmunoassay，RIA）是以放射性核素為標記物的標記免疫分析法，用於定量測定受檢標本中的抗原。最初建立的方法模式是以核素標記的抗原與受檢標本中抗原競爭的測定模式，為區別於前者，稱為免疫放射分析（immunoradiometricassay，IRMA）。兩種方法均在醫學檢驗中得到了廣泛應用。

放射免疫分析是由Yalow和Berson於1960年創建的標記免疫分析技術。由於標記物放射性核素的檢測靈敏性，本法的靈敏度高達ng甚至pg水平。簡森基測定的准確性良好，ng量的回收率接近100％。本法特別適用於微量蛋白質、激素和多肽的定量測定。

4 放射免疫分析的基本原理

放射免疫分析的基本原理是標記抗原（Ag*）和非標記抗原（Ag）對特異性抗體（Ab）的競爭結合反應。它的反應式為：

在這一反應系統中，作為試劑的標記抗原和抗體的量是固定的。抗體春局的量一般取用能結合40％～50％的標記抗原，而受檢標本中的非標記抗原是變化的。根據標本中抗原量的不同，得到不同的反應結果。

假設受檢標本中不含抗原時的反應條件為：

4（Ag*）＋2（Ab）→2（Ag*Ab）＋2（Ag*）（2）

在標本中存在抗原時，舉例如下：

4（Ag*）＋4（Ag）＋（2Ab）→

1（Ag*Ab）＋3（Ag*）＋1（AgAb）＋3（Ag）（3）

當標記抗原、非標記抗原和特異性抗體三者同時存在於一個反應系統時，由於標記抗原和非標記抗原對特異性抗體具有相同的結合力，因此兩者相互競爭結合特異性抗體。由於標記抗原與特異性抗體的量是固定的，故標記抗原抗體復合物形成的量就隨著非標記抗原的量而改變。非標記抗原量增加，相應地結合較多的抗體，從而抑制標記抗原對抗體的結合，使標記抗原抗體復合物相應減少，游離的標記抗原相應增加，亦即抗原抗體攔謹復合物中的放射性強度與受檢標本中抗原的濃度呈反比（圖161）。若將抗原抗體復合物與游離標記抗原分開，分別測定其放射性強度，就可算性結合態的標記抗原（B）與游離態的標記抗原（F）的比值（B/F），或算出其結合率[B/（B＋F）]，這與標本中的抗量呈函數關系。用一系列不同劑量的標准抗原進行反應，計算相應的B/F，可以繪制出一條劑量反應曲線（圖162）。受檢標本在同樣條件下進行測定，計算B/F值，即可在劑量反應曲線上查出標本中抗原的含量。

圖161 放射免疫分析原理示意圖

圖162 劑量反應曲線

4.1 （一）標記物

標記用的核素有放射γ射線和β射線兩大類。前者主要為131I、125I、57Cr和60Co；後者有14C、3H和32P。放射性核素的選擇首先考慮比活性。例如125I比活性的理論值是64.38×104GBq/g（1.74×104Ci/g），有較長半衰期的14C最大比活性是166.5GBq/g（4.5Ci/g）。兩者相比，1mol125I或14C結合到抗原上，125I的敏感度約比14C大3900倍。又因為125I有合適的半衰期，低能量的γ射線易於標記，因而125I是目前常用的RIA標記物。

4.2 （二）標記方法

標記125I的方法可分兩大類，即直接標記法和間接標記法。

直接標記法是將125I直接結合於蛋白質側鏈殘基的酪氨酸上。此法優點是操作簡便，為125I和蛋白質的單一步驟的結合反應，它能使較多的125I結合在蛋白質上，故標記物具有高度比放射性。但此法只能用於標記含酪氨酸的化合物。此外，含酪氨酸的殘基如具有蛋白質的特異性和生物活性，則該活性易因標記而受損傷。

間接標記法（又稱連接法）是以125I標記在載體上，純化後再與蛋白質結合。由於操作較復雜，標記蛋白質的比放射性顯著低於直接法。但此法可標記缺乏酪氨酸的肽類及某些蛋白質。如直接法標記引起蛋白質酪氨酸結構改變而損傷其免疫及生物活性時，也可採用間接法。它的標記反應較為溫和，可以避免因蛋白質直接加入125I液引起的生物活性的喪失。下面介紹最常用的氯胺T直接標記法。

氯胺T是對甲苯磺基醯胺的N氯衍生物的鈉鹽，在水溶液中逐漸分解形成次氯酸，是一種氧化劑。在偏堿溶液中（pH7.5），氯胺T將125I的I－氧化為I+，I+取代蛋白質酪氨酸苯環的氫，形成二碘酪氨酸。反應式如下：

放射性碘標記率的高低與抗原（蛋白質或多肽）分子中酪氨酸的含量及分子中酪氨酸的暴露程度有關，當分子中含有較多的酪氨酸，又暴露在外時，則標記率就高。

標記方法：將純化抗原和125I加入小試管底部，然後將新鮮配製的氯胺T快速沖入，混勻振盪數十秒～2min後加入偏重亞硫酸鈉終止反應。再加入KI溶液稀釋。然後在葡聚糖G柱上分離，逐管收集。分別用井型閃爍計數器測定放射性強度（脈沖數/min,cpm），前部為標記抗原峰，後部為游離125I峰。在標記抗原峰試管內加等量1％白蛋白作穩定劑，此即為標記抗原液。

4.3 （三）標記物的鑒定

1．放射性游離碘的含量用三氯醋酸（預先在受鑒定樣品中加入牛血清白蛋白）將所有蛋白質沉澱，分別測定沉澱物和上清液的cpm值。一般要求游離碘在總放射性碘的5％以下。標記抗原在貯存過久後，會出現標記物的脫碘，如游離碘超過5％則應重新純化去除這部分游離碘。

2．免疫活性標記時總有部分抗原活性損失，但應盡量避免。檢查方法是用小量的標記抗原加過量的抗體，反應後分離B和F，分別測定放射性，算出BT％。此值應在80％以上，該值越大，表示抗原損傷越少。

3．放射性比度標記抗原必須有足夠的放射性比度。比度或比放射性是指單位重量抗原的放射強度。標記抗原的比放射性用mCi/mg（或mCi/mmol）表示。比度越高，測定越敏感。標記抗原的比度計算是根據放射性碘的利用率（或標記率）：

如：5μghGH用2mCiNa125I進行標記，標記率為40％，則

4.4 （四）抗血清的檢定

含有特異性抗體的抗血清是放射免疫分析的主要試劑，常以抗原免疫小動物誘發產生多克隆抗體而得。抗血清的質量直接影響分析的靈敏度和特異性。抗血清質量的指標主要有親和常數、交叉反應率和滴度。

1．親和常數親和常數（affinityconstant）常用K值表示。它反映抗體與相應抗原的結合能力。K值的單位為mol/L，即表示1mol抗體稀釋至若干L溶液中時，與相應的抗原結合率達到50％。抗血清K值越大，放射免疫分析的靈敏度、精密和准確度越佳。抗血清的K值達到109～1012mol/L才適合用於放射免疫分析。

2．交叉反應率放射免疫分析測定的物質有些具有極為類似的結構，例如甲狀腺素的T3、T4，雌激素中的雌二醇、雌三醇等。針對一種抗原的抗血清往往對於其類似物會發生交叉反應。因此交叉反應率反映抗血清的特異性，交叉反應率過大將影響分析方法的准確性。交叉反應率的測定方法為用與抗血清相應抗原及其類似物用同法進行測定，觀察置換零標准管50％時的量。以T3抗血清為例，置換零標准50％T3為1ng，其類似物T4則需200ng，則其交叉反應率為：1/200＝0.5％。

3．滴度滴度系指將血清稀釋時能與抗原發生反應的最高稀釋度。它反映抗血清中有效抗體的濃度。在放射免疫分析中滴度為在無受檢抗原存在時，結合50％標記抗原時抗血清的稀釋度。

5 放射免疫分析的測定方法

用放射免疫分析進行測定時分三個步驟，即抗原抗體的競爭抑制反應、B和F的分離及放射性的測量。

5.1 （一）抗原抗體反應

將抗原（標准品和受檢標本）、標記抗原和抗血清按順序定量加入小試管中，在一定的溫度下進行反應一定時間，使競爭抑制反應達到平衡。不同質量的抗體和不同含量的抗原對溫育的溫度和時間有不同的要求。如受檢標本抗原含量較高，抗血清的親和常數較大，可選擇較高的溫度（15～37℃）進行較短時間的溫育，反之應在低溫（4℃）作較長時間的溫育，形成的抗原抗體復合物較為牢固。

5.2 （二）B、F分離技術

在RIA反應中，標記抗原和特異性抗體的含量極微，形成的標記抗原抗體復合物（B）不能自行沉澱，因此需用一種合適的沉澱劑使它徹底沉澱，以完成與游離標記抗原（F）的分離。另外對小分子量的抗原也可採取吸附法使B與F分離。

1．第二抗體沉澱法這是RIA中最常用的一種沉澱方法。將產生特異性抗體（第一抗體）的動物（例如兔）的IgG免疫另一種動物（例如羊），製得羊抗兔IgG血清（第二抗體）。由於在本反應系統中採用第一、第二兩種抗體，故稱為雙抗體法。在抗原與特異性抗體反應後加入第二抗體，形成由抗原－第一抗體－第二抗體組成的雙抗體復合物。但因第一抗體濃度甚低，其復合物亦極少，無法進行離心分離，為此在分離時加入一定量的與一抗同種動物的血清或IgG，使之與第二抗體形成可見的沉澱物，與上述抗原的雙抗體復合物形成共沉澱。經離心即可使含有結合態抗原（B）的沉澱物沉澱，與上清液中的游離標記抗原（F）分離。

將第二抗體結合在顆粒狀的固相載體之上即成為固相第二抗體。利用固相第二抗體分離B、F，操作簡便、快速。

2．聚乙二醇（PEG）沉澱法最近各種RIA反應系統逐漸採用了PEG溶液代替第二抗體作沉澱劑。PEG沉澱劑的主要優點是制備方便，沉澱完全。缺點是非常特異性結合率比用第二抗體為高，且溫度高於30℃時沉澱物容易復溶。

3．PR試劑法是一種將雙抗體與PEG二法相結合的方法。此法保持了兩者的優點，節省了兩者的用量，而且分離快速、簡便。

4．活性炭吸附法小分子游離抗原或半抗原被活性炭吸附，大分子復合物留在溶液中。如在活性炭表面塗上一層葡聚糖，使它表面具有一定孔徑的網眼，效果更好。在抗原與特異性抗體反應後，加入葡聚糖－活性炭。放置5～10min，使游離抗原吸附在活性炭顆粒上，離心使顆粒沉澱，上清液中含有結合的標記抗原。此法適用於測定類固醇激素，強心糖苷和各種葯物，因為它們是相對非極性的，又比抗原抗體復合物小，易被活性炭吸附。

5.3 （三）放射性強度的測定

B、F分離後，即可進行放射性強度測定。測量儀器有兩類，液體閃爍計數儀（β射線，如3H、32P、14C等）和晶體閃爍計數儀（β射線，如125、131I、57Cr等）。

計數單位是探測器輸出的電脈沖數，單位為cpm（計數/分），也可用cps（計數/秒）表示。如果知道這個測量系統的效率，還可算出放射源的強度，即dpm（衰變/分）或dps（衰變/秒）。

每次測定均需作標准曲線圖，以標准抗原的不同濃度為橫坐標，以在測定中得到的相應放射性強度為縱坐標作圖（圖163）。放射性強度可任選B或F，亦可用計算值B/（B＋F）、B/F和B/B0。標本應作雙份測定，取其平均值，在製作的標准曲線圖上查出相應的受檢抗原濃度。

圖163 放射免疫分析標准曲線示例

6 放射免疫分析在醫學檢驗中的應用

⑵ 一文了解抗體滴度/效價、交叉反應、特異性、親和力檢測方法

抗體在醫療應用前需對其關鍵特性，如滴度/效價、交叉反應、特異性及親和力進行精確檢測。針對可溶性抗原產生的抗體，常用方法包括放射免疫分析(RIA)、免疫放射分析(IRMA)、酶免疫分析(EIA)、熒光免疫分析(FIA)和化學發光免疫分析(CLIA)等。

在檢測過程中，這些技術涉及的參數包括：總信號強度(T)、游離標記抗原(B)和結合標記抗原(F)的信號強度，以及非特異性結合和標准結合率(Bo%)。滴度/效價可通過配製不同稀釋度樣本，測量標記抗原-抗體復合物的信號比例(B/F)來確定，稀釋倍數越大，抗體滴度越高。

交叉反應研究的是抗體對不同抗原的識別能力，無交叉反應抗體僅與免疫原的特定決定簇結合，而有交叉反應抗體則可能與相似抗原決定簇結合。交叉反應率(C%)通過比較待鑒定抗原和免疫原的ED50濃度來評估，C%越小，抗體特異性越高。

抗體特異性關乎其與抗原的匹配度，高度特異抗體能精確識別一個抗原決定簇。親和力則衡量抗體與抗原結合的強度和穩定性，可用親和常數(Ka)表示，Ka值越大，結合越穩定。對於多價抗體，其總的親和力(avidity)應大於單價抗體的總和，反映結合的全面性和牢固性。

⑶ 己烯雌酚在哪有得買

己烯雌酚(diethylstibestrol,DES)是一種人工合成的雌激素,在促進動物蛋白質的合成代謝、提高動物日增重和減少脂肪等方面效果明顯，但研究發現DES是一種致癌物質,能夠在動物源性食品如肝
臟、肌肉、蛋、奶中殘留,並通過食物鏈危害人體健康。因此世界各國規定食品動物養殖中不得以任何途徑和方式使用DES養殖動物及動物性食品中不得檢出
DES。本試劑盒是應用ELISA技術研發的葯物殘留檢測產品，能經濟、快速地檢測出動物組織、飼料、奶粉、牛奶等樣品中己烯雌酚的殘留量。

三方圓 檢測原理:

本試劑盒是利用競爭ELISA方法，在酶標板微孔上預包被己烯雌酚蛋白偶聯物。檢測時，加入標准品或樣品溶液及抗己烯雌酚抗體，偶聯物與抗原競爭性與抗己烯雌酚抗體結合，形成抗原抗體復合物;加入酶標二抗後，用TMB底物顯色;加入反應終止液後在450nm波長酶標儀下進行檢測，樣品中的己烯雌酚濃度與吸收光強度成反比。

詳細技術指標：
樣品檢測限：

動物組織——1ppb

飼料————5ppb

奶粉————1ppb

牛奶————1ppb

標准區線范圍：0.1~8.1ppb

回收率：75%~110%

交叉反應率：

己烯雌酚——-——-100%

試劑盒吸光度板內誤差小於7%，板間誤差小於10%

產品組成:

酶標板 96T

己烯雌酚高濃度標准品8.1ppm 1ml/瓶

己烯雌酚抗試劑 8ml

己烯雌酚酶標物 12ml

底物液A液 6ml

底物液B液 6ml

終止液 6ml

濃縮洗滌液(10×) 40ml

己烯雌酚濃縮標准品/樣品稀釋液 40ml